CN101641106A - 抗-tsg101抗体及其用于治疗病毒感染的用途 - Google Patents

Abstract

本发明提供与TSG101的C端区结合的抗体。本发明还提供使用TSG101抗体治疗包括HIV和埃博拉病毒感染在内的病毒感染的方法。

Description

抗-TSG101抗体及其用于治疗病毒感染的用途

相关申请的交叉引用

本申请根据35U.S.C.§119(e)，要求2006年11月15日提交的美国临时申请No.60/858,922的优先权，其公开的内容以引用的方式全部引入。该申请涉及2007年11月13日提交的美国专利申请号11/939,122，也以引用的方式引入本文。USSN 11/939,122针对制备和用途，尤其是针对涉及病毒出芽的蛋白质家族(本文中称为护送蛋白)的抗体。TSG101是该家族中的一员。其具有独特的重要性。

技术领域

本发明涉及结合TSG101蛋白并抑制或减少病毒制造的抗体。本发明还涉及使用TSG101抗体以治疗包括HIV感染在内的病毒感染的方法。本发明进而还涉及使用TSG101抗体检测被病毒感染的细胞的方法。

背景技术

病原体与宿主细胞的相互作用在诸如AIDS等病毒性疾病的发病机理中发挥关键作用。对于典型的病毒感染，病毒通过细胞表面受体附着于宿主细胞，与宿主细胞膜融合，穿过细胞膜，病毒颗粒脱壳，利用宿主蛋白合成机制合成并组装病毒蛋白，并通过宿主输出机制由宿主细胞释放。病毒与宿主细胞之间的相互作用决定了病毒发病机制的后果，包括从消除病毒到寄生或致命感染。例如，HIV采用各种策略富有成效地感染人类细胞。逆转录病毒，通过附着宿主开始其生命周期，初始靶是CD4+T协助细胞，并通过特定受体获得进入。在细胞中，RNA基因组“反”转录为其互补DNA，然后穿梭至细胞核以将其整合到宿主基因组中。该整合的“前病毒”随后指导新的病毒RNA和蛋白质的制造，这些物质自组装并随即作为成熟的、感染性的病毒体由细胞“出芽”，包封在质膜中。同所有的病毒一样，HIV是寄生物，不能催化驱动出芽过程的膜分裂事件。替代性地，新生病毒征用细胞的膜分拣机制从而完成感染的该最后阶段。这种宿主和病毒的相互作用已经在携带有具有缺陷的细胞表面受体(CCR5)并完全耐受HIV感染的个体中得到良好证明，说明了宿主基因和遗传途径在病毒发病机制中的重要作用。

肿瘤易感基因101(TSG101，Li等，1996，Cell 85，319-29)在细胞生长(Zhong等，1998，Cancer Res.58，2669-702；Oh等，2002，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99，5430-5；Krempler等，2002，J.Biol.Chem.277，43216-23；Wagner等，2003，Mol.Cell Biol.23，150-62；Li等，1996，Cell85，319-29)、细胞蛋白质交流(Babst等，2000，Traffic 1，248-58；Bishop等，2002，J.Cell Biol.157，91-101)和p53的降解(Li等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98，1619-24；Ruland等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA98，1859-64；Moyret-Lalle等，2001，Cancer Res.61，486-8)中发挥重要作用。TSG101在该最后阶段也是公认的关键角色，抑制细胞TSG101能够阻挡HIV的出芽过程。TSG101与其他细胞因子一同作用，由此在HIV病毒的出芽或传播中起到关键作用。先前显示协调病毒组装和出芽的HIV Gag蛋白以高亲和性结合TSG101，该Gag/TSG101的相互作用对于有效的HIV病毒组装和出芽是必需的，而破坏Gag/TSG101的相互作用能够抑制HIV病毒出芽，并明显限制了HIV病毒的传播。

包膜病毒组装的组装最终步骤需要使出芽颗粒与细胞膜分离。Gag，20中的三个独特的功能域，即，HIV-1中的PTAP(Gottlinger等，1991，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88，3195-9；Huang等，1995，J.Virol.69，6810-8)；RSV中的PPPY(Parent等，1995，J.Virol.69，5455-60)，MuLV中的PPPY(Yuan等，1999，Embo.J.18，4700-10)和M-PMV中的PPPY(Yasuda等，1998，J.Virol.72，4095-103)；以及EIAV中的YXXL(Puffer等，1997，J.Virol.71，6541-6)已经在不同的逆转录病毒中被识别，它们是该功能所必需的且被称为后域(late domain)或L域(Wills等，1991，Aids 5，639-54)。在HIV-1中，L域包含PTAP基序，并且是有效释放HIV-1所必需的(例如参见，Wills等，1994，J.Virol.68，6605-6618；Gottlinger等，1991，Proc.Natl.Acad Sci.USA 88，3195-3199；Huang等，1995，J.Virol.69，6810-6818)。HIV-1p6的L域，尤其是PTAP基序，结合细胞蛋白TSG101，并使其进入病毒组装的位置以促进病毒出芽(VerPlank等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，98：7724-7729；Garrus等，2001，Cell 107：55-65；Martin-Serrano等，2001，NatureMedicine 7：1313-19；Pornillos等，2002，EMBO J.21：2397-2406；Demirov等，2002，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99：955-960；PCT公开WO02/072790；美国专利申请号US 2002/0177207)。TSG101的UEV域结合PTAP基序和单泛素(Pornillos等，2002，Embo J.21，2397-406；Pornillos等，2002，Nat.Struct.Boil.9，812-7)，其也涉及HIV-1出芽(Patnaik等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13069-74；Schubert等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13057-62；Strack等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13063-8)。细胞TSG101的缺失(Garrus等，2001，Cell 107：55-65)或TSG101的截短形式的过度表达抑制HIV-1的释放(Demirov等，2002，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99：955-960)。在一定环境下，TSG101甚至可取代HIV-1的L域从而促进病毒释放(Martin-Serrano等，2001，Nature Medicine 7：1313-19)。

在酵母中，Tsg101直系同源Vps23已表现出与Vps28和Vps37相互作用并形成被命名为ESCRT-I的蛋白复合物，其对于胞内蛋白分拣到多泡体途径中极为关键(Katzmann等，Cell 106，145-55)。猜测该细胞内的多泡体形成类似HIV-1在质膜的释放(Garrus等，2001，Cell 107：55-65；Patnaik等，2000，Proc.Natl.Sci.USA 97，13069-74)。在哺乳动物细胞中，TSG101与Vps28相互作用以形成类似ESCRT-I的复合物(Babst等，2000，Traffic 1，248-58；Bishop等，2002，J.Cell Biol.157，91-101；Bishop等，2001，J.Biol.Chem.276，11735-42)，不过Vps37的哺乳动物同系物仍未被确定。

近期的研究(Blower等，2003，AIDS Rev.5：113-25；Valdiserri等，2003，Nat.Med.9：881-6)估计世界上多达四千两百万人已经感染了HIV。这种疾病已经夺去了超过3百万人的生命。尽管高度有效的具有针对性的联合疗法的出现已经减缓了工业化国家的AIDS的进展，但AIDS的流行在发展中国家导致“人类发展的大灾难”，尤其是在非洲，已经有超过两千一百万的非洲人被感染。仅在南非，死亡人数预计到2015年将达到1千万。相关统计预告了在亚太区域的类似危机，根据美国的评估已经有超过7百万的HIV感染个体。AIDS流行的影响远远超过临床，其缺乏资源来治疗增多的近期感染的患者(在南非接近20％的成年人口被感染)。HIV感染及身患重病的AIDS患者的治疗给非洲和其他发展中国家已经负担过重的医疗保健系统不断施加压力。更为糟糕的是，目前对于HIV的治疗尽管在减少病毒负荷量方面取得了初期成功，但是这些治疗已经开始丧失其功效，因为耐药性HIV毒株在新感染的个体中正日益增多的被分离出来。HIV疾病诊治策略的进一步复杂化对于目前的抗逆转录病毒治疗方案是有害的，其规模导致医生对于作出开始和维持治疗的决定日益复杂。确定用于治疗HIV疾病的新的治疗模式，尤其是那些具有有希望减缓耐药性发展的作用机制的模式，确实是对于制药业的全球性挑战。

许多病毒也是高度可变的。依赖于直接靶向这类病毒的方法和组合物通常并不足以治疗由此类病毒造成的感染。例如，HIV-1就是这种高度可变的病毒，在HIV-1感染期间，被感染个体中产生的抗体不能提供永久的保护效果，部分原因在于快速出现的逃避中和变体(Thali等，1992，J.Acquired Immune Deficiency Syndromes 5：591-599)。用于治疗HIV-1感染个体的当前疗法主要关注于涉及HIV-1感染的两个独特阶段的病毒酶，这两个阶段是病毒基因组的复制和病毒蛋白的成熟。由于病毒频繁地变异，尽管药物取得了初期的治疗效果，耐受抗病毒抑制剂的毒株仍发展迅速。在一个近期的研究中，新近感染耐药型HIV毒株的个体的百分比在五年的时间内增加了六倍(Little等，2002，N.Engl.J.Med.347：385-94)。此外，联合疗法，当前用逆转录酶和蛋白酶的抑制剂攻击HIV的标准治疗导致发展出耐受多种药物的HIV毒株。针对新型HIV类目标的抗逆转录病毒药物尽管具有相当大的价值，但仍没有解决该日益关键的问题。例如，耐受最新加入抗HIV医疗设备的

(enfuvirtide)的HIV毒株已由患者分离出来。因此，尽管其具有抗病毒效力和新型作用机制，但耐药性仍可能削弱类似

的病毒融合抑制剂的治疗潜能。因而需要开发新的疗法和预防措施以抗击诸如HIV感染等病毒感染。

本文中对参考的讨论或引用不应当被理解为认可该参考是本发明的现有技术。

发明内容

本发明提供与人TSG101的终端区结合的抗体和使用该抗体治疗病毒感染的方法。本发明还提供使用抗-TSG101抗体治疗病毒感染的方法和组合物。

在一个方案中，本发明提供与由SEQ ID NO：3构成的TSG101的C端区结合的单克隆抗体。在一个实施方式中，所述抗体是包括多肽的单克隆抗体，所述多肽包含在SEQ ID NO：19、22、25或28中所述的氨基酸序列。

在另一个实施方式中，所述单克隆抗体是抗体D1和3G1。

在另一个实施方式中，所述抗体是包含选自SEQ ID NO：30-41的氨基酸序列的人源化抗体。

在优选的实施方式中，所述人源化抗体包含SEQ ID NO：31-35中所述的氨基酸序列或SEQ ID NOS：36-41中所述的氨基酸序列。

本发明的另一个方案涉及用于治疗受试对象包膜病毒感染的方法。该方法包括向受试对象施用有效量的本发明的抗-TSG101抗体。

在一个实施方式中，包膜病毒是人体免疫缺陷病毒、马尔堡(Marburg)病毒或埃博拉(Ebola)病毒。

本发明的又一个方案涉及用于治疗人体免疫缺陷病毒、马尔堡病毒和埃博拉病毒感染的药物组合物。所述组合物包含有效量的本发明的抗TSG101病毒；和药学上可接受的载体。

附图说明

图1描述了人TSG101蛋白的390个氨基酸序列(SEQ ID NO：1)。(GenBank登录号：U82130.1/GI：1772663)。

图2描述了抗TSG101抗体对MLV病毒制造的影响。左上图：未经抗体治疗的phoenix协助细胞(阳性对照)显示出有效的逆转录病毒的制造，和N2A靶细胞的感染；左中图：兔IgG无影响；左下图：抗N端TSG101的兔抗体具有小于20％的抑制的作用；右上图：抗C端TSG101的兔抗体显著抑制逆转录病毒的制造，和N2A靶细胞的感染(50％～70％的抑制率)；右中图：抗C端抗体和抗N端抗体的混合物给出了与单独的抗C端抗体相类似的结果；右下图：未被病毒感染的N2a细胞仅仅显示了最小的背景染色。

图3A～E显示了病毒释放过程中GFP-TSG101定位至细胞表面。GFP-TSG101转染24小时后的具有活跃病毒释放的phoenix协助细胞的活体共焦图像。图3A显示了四个细胞的亮视场图像；图3B～E是同一视场的不同区段的活体共焦荧光图像；白色箭头指向GFP-TSG101的细胞表面定位。

图4显示HIV出芽过程中的TSG101的细胞表面定位。H9ΔBgl细胞(CD4+人T淋巴细胞，携带HIV病毒整合)活跃制造，并释放具有带缺陷的包膜蛋白的HIV病毒粒子(该HIV病毒的非感染形式不会感染其他细胞，因此特别用于研究病毒释放)。不携带HIV的亲代H9细胞用作对照。H9ΔBgl和H9细胞均由2％的低聚甲醛于室温固定10分钟(该表面固定不会穿透细胞)。抗-TSG101抗体用两种细胞系温育20分钟，并用荧光标记的二抗检测。顶图：荧光图像；底图：亮视场图像。

图5显示了IV出芽过程中TSG101的细胞表面定位的FACS曲线图。H9ΔBgl和H9细胞均由2％的低聚甲醛于室温固定10分钟(该表面固定不会穿透细胞)。抗-TSG101抗体用两种细胞系温育20分钟，并用荧光标记的二抗检测。顶图：H9ΔBgl细胞，85％的染色细胞为表面TSG101阳性；底图：H9对照细胞，小于1％的染色细胞为表面TSG101阳性。

图6显示了抗-TSG101抗体对HIV-1制造的抑制。道1和5，模拟转染；道2和6，pNL4-3和对照抗体(兔IgG)；道3和7，pNL4-3和抗-TSG101抗体“B”；道4和8，pNL4-3和抗-TSG101抗体“E”。

图7显示了抗体对HIV由H9ΔBgl细胞释放的抑制。HIV制造的H9ΔBgl细胞用抗-TSG101抗体“E”在不同浓度下温育，48小时后，收集病毒上清液，并用HIV p24 ELISA试剂盒分析。显示了三个独立试验(每个试验均为三重测定)的平均值。在80μg/ml时观察到抗体对病毒释放的明显抑制(*P＜0.05)。

图8显示了抗体对HIV感染性的抑制。制造HIV的Jurkat细胞(由野生型HIV-1感染)与40μg/ml的抗-TSG101抗体“E”温育。

图9A～B显示了埃博拉GP和VP40释放进入培养上清液。图9A显示了293T细胞由指示质粒转染，清除上清液的漂浮物，颗粒物通过20％的蔗糖由超速离心法球粒化。通过免疫印迹(IB)在细胞裂解物中和来自上清液的颗粒物中检测各种蛋白。图9B显示了来自单独由埃博拉GP转染或GP+VP40转染的细胞的上清液用抗-GP mAb免疫沉淀，并通过免疫印迹分析。下部图显示VP40在全部细胞裂解物中的表达。LgH：来自用于免疫沉淀的抗体的免疫球蛋白重链。

图10A～B显示了由EBOV GP和VP40产生的病毒样颗粒的电子显微镜分析。通过对由埃博拉GP+VP40转染的293T细胞的上清液进行超速离心法得到的颗粒用乙酸铀酰负染色以展示超微结构(图10A)，或由抗-Ebo-GP mAb染色随后用免疫金兔抗鼠Ab染色(图10B)，并用电子显微镜进行分析。

图11显示了VP40和TSG101在293T细胞中的结合。细胞由带Myc标签的TSG101全长(FL)或指示截断与VP40一同转染。48小时后，细胞裂解，并用抗Myc进行免疫沉淀。

图12显示了埃博拉VP40和TSG101的UEV域之间的结合的Far-Western分析。

图13显示了与TSG101相互作用的埃博拉VP40的SPR分析。

图14A～B显示了TSG101与埃博拉VLPs和灭活的埃博拉病毒的结合。图14中，293细胞由指示质粒转染，上清液用抗-GP mAb免疫沉淀，然后通过免疫印迹用右侧所示抗体分析。下部的三个图显示了转染蛋白在全部细胞裂解物中的表达。图14B中，5μg灭活的埃博拉病毒(iEBOV)用兔抗-TSG101抗体进行SDS-PAGE和蛋白质印迹分析。分子量标记和TSG101的位置被示出。

图15显示了抗-TSG101抗体对埃博拉病毒在Hela细胞中的释放的抑制结果。

图16是显示以来自腹水的纯化IgG形式的单克隆抗体池PE-8的抗-HIV活性的图。

图17是显示以杂交瘤上清液形式的单克隆抗体池PE-8的具有代表性的亚克隆的抗-HIV活性的图。

图18是显示以来自腹水的纯化IgG形式的单克隆抗体池PE-8的亚克隆之一的抗-HIV活性的图。

图19是显示TSG101显性负突变体对耐药性HIV毒株的抑制的图。

图20是显示单克隆抗体池PE-8对耐药性HIV毒株pL-10R的抑制的图。

图21是显示单克隆抗体池PE-8对耐药性HIV毒株p1617-1的抑制的图。

图22A和22B分别是显示对感染后3天和7天的外周血单核细胞中的HIV制造的抑制的图。

图23是克隆D1重链的可变区和小鼠IgG重链的可变区之间的比对。

图24是克隆D1轻链的可变区和小鼠IgG轻链的可变区之间的比对。

图25是克隆3G1重链的可变区和小鼠IgG重链的可变区之间的比对。

图26是克隆3G1轻链的可变区和小鼠IgG轻链的可变区之间的比对。

图27是显示抗-TSG101单克隆抗体保护小鼠免受EBOV感染的图。

图28是由该领域的其他研究者确定为依赖或涉及TSG101的一些方面的病毒的部分清单。

图29是根据本发明的人抗TSG101抗体的制备的示意性描述。

图30用图表表现了由免疫荧光检测到的噬菌体候选物与感染细胞的结合。

图31用图表表现了通过相同的TSG101抗体与被不同病毒感染的不同细胞类型的结合。

图32展示了通过染色的TSG101抗体与RSV感染细胞的结合，以及不存在与对照的结合。

图33以条线图的形式表现了本发明的TSG101抗体通过ADCC杀死被感染细胞的能力。

图34以条线图的形式表现了本发明的TSG101抗体杀死病毒感染的细胞并由此直接抑制病毒感染的能力，而与先天宿主防御机制无关。

具体实施方式

本发明提供使用与TSG101结合的抗体以抑制或减少病毒制造的方法。本发明还提供使用TSG101抗体以治疗病毒感染的方法。本发明还提供通过针对被感染细胞表面上的TSG101，例如输送治疗和/或诊断剂至这样的感染细胞来治疗病毒感染的方法和组合物。

治疗的合理设计需要对HIV发病机理的深入理解。近来的研究显示宿主蛋白，TSG101，在诸如HIV和埃博拉病毒等各种病毒的发病机理中起到至关重要的作用。特别是，TSG101参与病毒体从被感染细胞中逃出或出芽的过程，因此代表了用于抗病毒药物发现的新目标。构成包膜RNA病毒由感染细胞的组装和释放的基础的是病毒与宿主蛋白之间的紧密协调(Perez等，2001，Immunity 15(5)：687-90；Freed，2002，J.Virol.76(10)：4679-87；Pornillos等，2002，Trends Cell Biol.12(12)：569-79)。尽管许多控制感染最后阶段的蛋白：蛋白和蛋白：膜的相互反应尚未确定，但是细胞TSG101蛋白已经出现成为关键角色(Garrus等，2001，Cell 107：55-65；Carter 2002；Pornillos等，2002，Trends CellBiol.12(12)：569-79；Pornillos等，2002，Nat.Struct.Biol.9，812-7)。遗传、生物化学和微观分析显示TSG101与多种包膜RNA病毒(包括逆转录病毒、棒状病毒和丝状病毒族系的成员)相互作用。

尽管它们存在相当显著的进化趋异，不过许多包膜RNA病毒采用相似的策略来完成感染的最后阶段(Martin-Serrano等，2001，NatureMedicine 7：1313-19；Freed，2002，J.Virol.76(10)：4679-87)。对于人体免疫缺陷病毒类型1(HIV-1)、泡状口炎病毒(Vesicular StomatitisVirus)(VSV)、埃博拉病毒(Ebola)(EBOV)、马尔堡病毒(MarburgVirus)(MARV)和其他病毒特别重要的是后域或L域，唯一充当细胞途径以驱动病毒体组装和出芽的序列基序。具有L域活性的三个序列基序已经被表征为：PPxY、YxxL和PTAP(其中“x”表示任何氨基酸)。HIV-1出芽需要PTAP基序，存在于p6Gag蛋白的氨基端。棒状病毒，以VSV为典型代表，利用基质(M)蛋白中的PPxY基序。多个病毒家族的L域采用TSG101，对于内体膜筛分至关重要的细胞蛋白(VerPlank等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98：7724-7729；Pormnillos等，2002，Nat.Struct.Biol.9，821-7)。通过随机敲除筛选最初在哺乳动物细胞中被确定，TSG101是涉及膜转运、细胞周期调控、微管组装和蛋白降解的43KDa多功能蛋白(Li等，1996，Cell 85，319-29；Bishop等，2001，J.Biol.Chem.276：11735-42；Katzmann等，2001，Cell 106，145-55；Li等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98，1619-24)。TSG101的C端具有卷曲螺旋域和自动调节其细胞水平的域；而TSG101的氨基端经由在结构上和功能上与WW和SH3域类似的结合袋与多个病毒L域相互作用，其与泛素缀合(UBC)E2酶具有明显的同源性(Pornillos等，2002，Nat.Struct.Biol.9，812-7)。尽管TSG101的类似UBS的域强力结合泛素(核心为调节蛋白周转和分选的76个氨基酸蛋白)，但其仍然缺乏涉及目标蛋白泛素化的催化半胱氨酸残基(Hicke，2001，Cell 106，527-30)。

在真核细胞中，TSG101是ESCRTI(转运必需的胞内分选复合物)的成分，该复合物是还包含Vps28和Vps37的350kDa细胞质复合物(Katzmann等，2001，Cell 106，145-55；Bishop等，2002，J.Cell Biol.157，91-101)。目前正在研究这三种蛋白之间的相互作用，以及它们在膜转运中的各自的作用。TSG101的酵母同源物，Vp23，通过其对蛋白分选缺陷的功能互补而被鉴定(Babst等，2000，Traffic 1，248-58)。具有减少的TSG101水平的纤维原细胞和酵母Vp23无效的20个突变体均显示了胞内/MVB途径的缺陷。例如，通常进入MVB系统用于溶酶体降解的受体反而再循环至表面，导致细胞信号中的深度混乱。基于Katzmann等，最近的试验分析，他们认为，TSG101Nps23在初级内体表面结合泛素蛋白，并有助于它们进入MVB泡囊中(Katzmann等，2001，Cell 106，145-55)。

除了TSG101，具有WW域的细胞蛋白已经表现出域包膜RNA病毒的L域序列基序的相互作用(Harty等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13871-6；Kikonyogo等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98，11199-204)。例如，Far-Western结合分析法已经证明了哺乳动物泛素连接酶Nedd4，及其酵母同源物Rsp5的WW域与EBOV的VP40L域的特殊相互作用(Harty等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13871-6；Kikonyogo，at al.，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98，11199-204)。确实，迄今的数据指出了泛素在病毒出芽中的重要作用(Patnaik等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13069-74；Carter，2002，Trends Microbiol.10，203-5；Myers等，2002，J.Virol.76，11226-35)。在Nedd4和TSG101之间可能还存在构成相互作用。已经表明，HIV-1可能以完全不涉及胞内/MVB途径的方式利用Nedd4和TSG101从受感染细胞逃脱。毫无疑问，TSG101被广泛视为病毒所采用的用于驱动病毒释放的关键宿主因素。所提出的TSG101/MVB连接部分基于MVB形成的生物物理学过程，其已知包括胞内脂双层远离细胞质趋向内腔的内陷(Patnaik等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13069-74；；Jasenosky等，2001，J.Virol.75，5205-14)。包膜RNA病毒面对相似的拓扑参数：病毒在膜的内叶上组装之后，双层必须朝向胞外环境外翻而再次远离细胞质。缺乏任何分裂其他的热力学稳定双层的催化能力，病毒显然采用胞内膜因子以进行辅助。TSG101与L域的相互作用由此可能提供新生病毒和驱动膜融合及出芽的胞内机制之间的重要关系。如上所述，TSG101是ESCRT-1的构成成分，其分选泛素化蛋白用于包含在MVB途径中。但是这种分选可能在受到HIV和相关的包膜RNA病毒感染的细胞中被破坏。也就是说，并非指引泛素蛋白进入MVB途径，TSG101及其胞内对应物而是指引质膜与其相关联的病毒体外翻，形成从质膜夹断的包膜泡囊。

驱动病毒组装和释放的分子决定体仍然是活跃的研究领域，虽然已经形成了一些常用结论。首先，病毒成熟过程中对于质膜的TSG101的再次征用是绝对必须的。支持核心TSG101角色的数据极具说服力：(i)TSG101 UBC域的过度表达反式显性地妨碍HIV-1 Gag表达细胞中VLP的形成(Demirov等，2002，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99，955-960)；(ii)经由RNA干涉的削弱TSG101表达减弱了HIV-1的出芽(Garrus等，2001，Cell 107，55-65)；和(iii)在上面两种情况中，电子显微分析证明病毒体通过膜柄而束缚于质膜，结构上类似于细胞表达L域缺陷病毒中存在的那些。如Martin-Serrano等，所示，防止TSG101结合丝状病毒VP40或HIV-1 p6Gag的L域点突变显著地减少病毒体由人细胞的释放，该效果与TSG101不能与病毒蛋白共同定位于脂质双层相一致(Martin-Serrano等，2001，Nature Medicine 7，1313-19)。相关试验证明，EBOV的L域能够取代p6Gag的L域，对于VLP的释放没有可辨别的影响，强调了包膜RNA病毒出芽机制的保守性。明显地，一旦TSG101定向地融合至HIV-1 Gag，则HIV-1的L域不是必要的。因此L域的首要责任是征用TSG101至质膜。TSG101与病毒的L域之间的这种相互作用代表了用于预防和治疗HIV、EBOV和MARV感染的新目标(Luban，2001，Nat.Med.7，1278-80；Senior，2001，Drug Discov.Today 6，1184-1186)。

发明人已经发现，抗-TSG101抗体可用于抑制或减少病毒感染。

抗-TSG101抗体

本发明包括含有特异性结合TSG101蛋白的结合位的抗体抑制或减少病毒感染的用途。该抗-TSG101抗体因而可用作广谱抗病毒剂。此处使用的术语“抗体”是指免疫球蛋白分子。在一个实施方式中，抗体结合TSG101蛋白的C端区。在优选的实施方式中，抗体结合包含在氨基酸区域QLRALMQKARKTAGLSDLY(SEQ ID NO：3)中的表位。在另一个优选的实施方式中，抗体是包含多肽的单克隆抗体，该多肽包含在SEQ ID NO：19、22、25或28中所述的氨基酸序列。在更为优选的实施方式中，单克隆抗体是D1和3G1。在另一个优选的实施方式中，抗体是包含选自SEQ ID NO：30-41的氨基酸序列的人源化抗体。在更为优选的实施方式中，人源化抗体包含SEQ ID NO：31-35中所述的氨基酸序列或SEQ ID NO：36-41中所述的氨基酸序列。

在另一个实施方式中，抗体结合TSG101蛋白的N端区。在优选的实施方式中，抗体结合包含在氨基酸区VRETVNVITLYKDLKPVL(SEQ ID NO：2)中的表位。

正如本文所使用的，“表位”是指抗原决定簇，即，在宿主中引起免疫应答或通过抗体连接的分子的区域。该区域可以但不必包括连续的氨基酸。术语表位在本领域中也称之为“抗原决定簇”。表位可包含具有空间构象的少至三个氨基酸，所述空间构象对于宿主的免疫系统而言是唯一的。通常，表位由至少五个这样的氨基酸构成，更常见由至少8～10个这样的氨基酸构成。确定这些氨基酸的空间构象的方法在本领域中是公知的。

本发明还预想了包含特异性结合TSG101蛋白的结合位的抗体片段的用途。免疫球蛋白分子的免疫活性片段的实例包括F(ab)和F(ab’)片段，其可通过用诸如胃蛋白酶或木瓜蛋白酶等酶处理抗体而产生。产生并表达抗体的免疫活性片段的方法的实例可在美国专利第5648237号中找到，其内容以引用的方式在此引入。

免疫球蛋白分子可由包括kappa、lambda、alpha、gamma、delta、epsilon和mu恒定区，以及无数免疫球蛋白可变区的基因编码。轻链分为kappa或lambda。轻链包括可变轻(V_L)区和恒定轻(C_L)区。重链分为gamma、mu、alpha、delta或epsilon，其依次分别定义免疫球蛋白类IgG、IgM、IgA、IgD和IgE。重链包括可变重(V_H)区、恒定重1(CH1)区、铰链区、恒定重2(CH2)区和恒定重3(CH3)区。IgG重链基于其序列变异进一步细分类，亚类被指定为IgG1、IgG2、IgG3和IgG4。

抗体可进一步分解为两对轻区和重区。一对V_L和V_H区各自包括一系列七个子区域：框架区1(FR1)、互补决定区1(CDR1)、框架区2(FR2)、互补决定区2(CDR2)、框架区3(FR3)、互补决定区3(CDR3)、框架区4(FR4)，它们构成抗体-抗原识别域。

嵌合抗体可通过使来自具有适宜的抗原特异性的单克隆抗体的基因与来自具有适宜的生物活性的第二人抗体接合在一起而生成。更具体地，嵌合抗体可通过使编码抗体可变区的基因与来自第二抗体分子的恒定区基因结合在一起而生成。该方法用于产生人源化单克隆抗体，其中互补决定区是小鼠的，框架区是人的，从而减少用该抗体治疗的人类患者的免疫应答的可能性(美国专利第4816567号、4816397号、5693762号、5585089号、5565332号和5821337号，其内容以引用的方式在此引入)。

适用于本发明的抗体可以由天然来源获得，或者通过杂交瘤、重组体或化学合成法制得，包括通过基因工程技术修饰恒定区的功能(美国专利第5624821号)。本发明的抗体可以是任何同工型，不过优选人IgG1。

抗体例如作为完整的免疫球蛋白存在，或者分裂为许多通过各种肽酶如木瓜蛋白酶或胃蛋白酶消化而生成的良好表征的片段。在铰链区的二硫键以下，胃蛋白酶消化抗体从而生成抗体的F(ab)’2片段，其是由通过二硫键连接至VH-CHI的轻链从而构成的Fab的二聚物。F(ab)’2可在温和的条件下被还原以使铰链区中的二硫键断裂，由此将F(ab)’2二聚物转换为Fab’单体。Fab’单体基本上是具有部分铰链区的Fab。参见Paul，ed.，1993，Fundamental Immunology，Third Edition(NewYork：Raven Press)，对于表位、抗体和抗体片段的详细描述。本领域的技术人员将认识到这样的Fab’片段可以通过化学方法或使用重组RNA技术而重新合成。因此，此处使用的术语抗体片段包括通过修饰整个抗体而产生的抗体片段或是重新合成的抗体片段。

本文使用的抗体还可以是单链抗体(scFv)，其通常包括由通过多肽连接融合至重链的可变区的轻链的可变区构成的融合多肽。

本发明还包括抗-TSG101抗体的多克隆族群抑制或减少病毒感染的用途。正如本文使用的，本发明的抗-TSG101抗体的多克隆族群是指抗-TSG101抗体的族群，其包括多种不同的各自具有不同的结合特异性的抗-TSG101抗体。在一个实施方式中，抗-TSG101抗体的族群包括与TSG101蛋白的C端区结合的抗体。在优选的实施方式中，抗-TSG101抗体的族群包括与一个或更多个包含在氨基酸区QLRALMQKARKTAGLSDLY(SEQ ID NO：3)中的表位结合的抗体。在另一个实施方式中，抗-TSG101抗体的族群包括与TSG101蛋白的N端区结合的抗体。在具体的实施方式中，抗-TSG101抗体的族群包括与一个或更多个包含在氨基酸区VRETVNVITLYKDLKPVL(SEQ IDNO：2)中的表位结合的抗体。

优选地，多种多克隆族群的抗-TSG101抗体包括针对不同的TSG101蛋白的表位的特异性。在优选的实施方式中，多克隆族群中的至少90％、75％、50％、20％、10％、5％或1％的抗-TSG101抗体靶向所需表位。在其他优选的实施方式中，多克隆族群中的任何单抗-TSG101抗体的比例不超过该族群的90％、50％或10％。多克隆族群包括至少2种不同的具有不同特异性的抗-TSG101抗体。更优选地，多克隆族群包括至少10种不同的抗-TSG101抗体。最优选地，包括至少100种不同的具有不同特异性的抗-TSG101抗体。

抗-TSG101抗体的制造

TSG101蛋白或其片段可用于培育结合TSG101蛋白的抗体。这样的抗体包括但不限于多克隆、单克隆、嵌合、单链、Fab片段和Fab表达库。在优选的实施方式中，使用合适的TSG101蛋白的C端片段培育抗C端TSG101抗体。这样的抗体可用于抑制病毒感染。

单克隆抗-TSG101抗体的制造

抗体可通过用TSG101蛋白或其片段作为免疫原使得合适的对象免疫来制备。通过标准技术可随时间监测免疫对象中的抗体效价，例如使用免疫多肽的酶联免疫吸附试验(ELISA)。需要时，抗体分子可由哺乳动物分离(例如来自血液)，并通过蛋白A色谱法等公知技术进一步纯化以获得IgG部分。在一个实施方式中，使用人TSG101蛋白的N端片段：VRETVNVITLYKDLKPVL(SEQ ID NO：2)培育多克隆抗-N端TSG101抗体(也称为抗-TSG101抗体“C”)。在另一个实施方式中，使用人TSG101蛋白的C端片段：QLRALMQKARKTAGLSDLY(SEQ ID NO：3)培育多克隆抗-C端TSG101抗体(也称为抗-TSG101抗体“E”)。在又一个实施方式中，使用人TSG101蛋白的C端片段(SEQ ID NO：3)培育单克隆抗-C端TSG101抗体(例如，池PE-8、mab D1和mab 3G1)。

在免疫后的合适的时间，例如，特异性抗体效价最高时，产生抗体的细胞可由受试对象获得，并通过标准技术制备单克隆抗体，例如最初由Kohler和Milstein描述的杂交瘤细胞技术(1975，Nature 256：495-497)，Cole等，的EBV-杂交瘤技术(1985，Monoclonal Antibodies andCancer Therpy，Alan R.Liss，Inc.，pp.77-96)或三体杂交瘤技术。用于产生杂交瘤的技术是公知的(参见Current Protocols in Immunology，1994，John Wiley & Sons，Inc.，New York，NY)。制造本发明的单克隆抗体的杂交瘤细胞通过例如使用标准的ELISA试验筛选用于与所关注的多肽结合的抗体的杂交瘤培养上清液而检测。

单克隆抗体由基本上同种的抗体族群获得，即，包括该族群的各抗体是相同的，除了存在于少量中的可能自然发生的突变之外。因此，修饰语“单克隆”表示抗体的特征为不是不同抗体混合物。例如，单克隆抗体可使用首先由Kohler等，描述的杂交瘤方法(1975，Nature 256：495-497)制得，或通过重组DNA法(美国专利第4816567号)制得。本文使用的术语“单克隆抗体”还表示该抗体是免疫球蛋白。

在产生单克隆抗体的杂交瘤方法中，小鼠或其他适宜的宿主动物如仓鼠如上所述被免疫从而产生制造或能够制造将能特异性结合免疫用蛋白的抗体的淋巴细胞(例如参见美国专利第5914112号，其内容以引用的方式在此引入)。

另外一种方式，淋巴细胞可以在体外免疫。然后使用合适的融合剂(如聚乙二醇)使淋巴细胞与骨髓瘤细胞融合，以形成杂交瘤细胞(Goding，Monoclonal  Anitibodies：Principles and Practice，pp.59-103(Academic Press，1986))。由此制得的杂交瘤细胞接种并生长于合适的培养基中，该培养基优选含有一种或更多种抑制未融合的亲代骨髓瘤细胞的生长或存活的物质。例如，如果亲代骨髓瘤细胞缺乏酶-次黄嘌呤鸟嘌呤磷酸核糖转移酶(HGPRT或HPRT)，则用于杂交瘤的培养基通常将包含次黄嘌呤、氨喋呤和胸腺嘧啶(HAT培养基)，这些物质抑制缺乏HGPRT的细胞的生长。

优选的骨髓瘤细胞是有效的融合，通过所选的产生抗体的细胞支持稳定高水平的制造抗体，并且对诸如HAT培养基等培养基敏感的那些细胞。其中，优选的骨髓瘤细胞系是鼠科的骨髓瘤系，诸如得自可由Salk Institute Cell Distribution Center，San Diego，Calif USA得到的MOPC-21和MPC-11小鼠肿瘤，和可由American Type CultureCollection，Rockville，Md.USA得到的SP-2细胞。

人骨髓瘤细胞和小鼠-人异源骨髓瘤细胞细也被描述用于制造人单克隆抗体(Kozbor，1984，J.Immunol.，133：3001；Brodeur等，Monoclonal Antibody Production Techniques and Application，pp.51-63(Marcel Dekker，Inc.，New York，1987))。其中生长有杂交瘤细胞的培养基经检测用于针对抗原的单克隆抗体的制造。优选地，通过杂交瘤细胞制造的单克隆抗体的结合特异性通过免疫沉淀或通过体外结合试验，如放射性免疫测定(RIA)或酶联免疫吸附试验(ELISA)确定。单克隆抗体的结合亲和力例如可通过Munson等，1980，Anal.Biochem.，107，220的斯卡查德(Scatchard)分析确定。

杂交瘤细胞被确定产生所需特异性、亲和性和/或活性的抗体之后，克隆物可以通过有限稀释程序被亚克隆，并通过标准方法生长(Goding，Monoclonal Anitibodies：Principles and Practice，pp.59-103，Academic Press，1986)。用于该目的的合适的培养基例如包括D-MEM或PRMI-1640培养基。另外，杂交瘤细胞可以作为腹水瘤在动物的体内生长。亚克隆分泌的单克隆抗体通过蛋白A-琼脂糖凝胶、羟磷灰石色谱法、凝胶电泳、渗析或亲合色谱法等传统的免疫球蛋白纯化过程适宜地与培养基、腹水或血清分离。

作为制备分泌单克隆抗体的杂交瘤的另一种选择，针对TSG101蛋白或其片段的单克隆抗体可以通过以TSG101蛋白或片段筛选重组体组合免疫球蛋白库(例如，抗体噬菌体展示库)而确定并分离。用于产生并筛选噬菌体展示库的试剂盒是市售品(例如，PharmaciaRecombinant Phage Antibody System，Catalog No.27-9400-01；和theStratagene antigen SurfZAP^TM Phage Display Kit，Catalog No.240612)。另外，特别是经检验可用于产生和筛查抗体展示库的方法和试剂的实例例如可在下列文献中找到：美国专利第5223409号和5514548号；PCT公开号WO 92/18619；PCT公开号WO 91/17271；PCT公开号WO92/20791；PCT公开号WO 92/15679；PCT公开号WO 93/01288；PCT公开号WO 92/01047；PCT公开号WO 92/09690；PCT公开号WO90/02809；Fuchs等，1991，Bio/Technology 9：1370-1372；Hay等，1992，Hum.Antibod.Hybridomas 3，81-85；Huse等，1989，Science 246，1275-1281；Griffiths等，1993，EMBO J.12，725-734。

该专利申请的代理人，Functional Genetics，Inc.，of Gaithersburg，Maryland得到了选择性针对受病毒感染的细胞上的TSG101的一组抗体。在简要介绍中，

 scFv库由匿名捐赠人分离并用于产生标准的噬菌体库。通过固定纯化的全长TSG101，或包含TSG101的不同区域的多肽，然后原位使用ELISA类格式分离与固定的TSG101结合的噬菌体来确定TSG101的免疫反应性。

如图29所示，经过多轮筛选后，得到的噬菌体类scFv候选物经筛查其结合唯一曝露在被病毒感染的细胞表面上的TSG101的能力。这些研究利用了标记细胞的流式细胞评估以提供与受感染细胞结合的噬菌体的客观分析。两种不同的病毒类型(HIV和流行性感冒)用于评估与受感染细胞表面上的TSG101结合的噬菌体。未被感染的细胞提供阴性对照。这些试验鉴别了在噬菌体中编码的scFv，其证明了与受病毒感染的细胞结合的能力。图30。

那些选择性识别受病毒感染的细胞表面的噬菌体编码的scFv候选物被修饰以将scFv设计成为全长IgG1抗体。得到的抗体然后使用与上述相同的标准进行筛选。得自CB8噬菌体的抗体提供具体实例。

作为对特异性的进一步说明。所有得到的抗体或噬菌体候选物被评估其与TSG101的不同区域结合的能力(使用以上详述的ELISA技术)。绝大多数的候选物，包括CB8在内，识别TSG101的C端区，而至少一个候选物识别UEV区域中的表位。

CB8抗体能够识别受病毒感染的细胞的表面。例如，CB8抗体选择性识别已经被流行性感冒病毒感染的人Hep2细胞。同样，这些抗体在识别被不同病毒感染的细胞时具有广谱性，正如相同的抗体识别已经被HIV感染的人MT4T淋巴细胞。图31。类似地，这些抗体选择性识别已经被病毒感染的非人细胞模型，包括被流行性感冒感染的犬科MDCK细胞和已经被埃博拉病毒感染的灵长类Vero细胞。

Functional Genetics，Inc.保存上述抗体C、D1、E、3G1和CB8的纯储藏物，并根据这些名称进行编号。制备这些抗体的保藏品，在布达佩斯条约条件下作为保藏品、、、于2007年11月15日保存于ATCC。直至这些保藏品的可用性能够被确认的时刻，这些抗体可根据布达佩斯条约中的关于生物材料的条款由Functional Genetics，Inc.得到，包括作为待申请专利的主题的抗体。

另外，可以使用通过使来自具有适宜的抗原特异性的小鼠抗体分子的基因与来自具有适宜的生物活性的人抗体分子的基因接合在一起的开发用于制造“嵌合抗体”的技术(Morrison等，1984，Proc.Natl.Acad.Sci.，81，6851-6855；Neuberger等，1984，Nature 312，604-608；Takeda等，1985，Nature，314，452-454)。嵌合抗体是不同部分来自不同动物种类的分子，例如具有来自鼠科mAb的可变区和人免疫球蛋白恒定区的分子(例如参见Cabilly等，美国专利第4816567号；和Boss等，美国专利第4816397号，其内容以引用的方式在此引入)。

人源化抗体是来自非人种类的抗体分子，具有一个或更多个来自非人种类的互补决定区(CDRs)和来自人免疫球蛋白分子的框架区(例如参见美国专利第5585089号，其内容以引用的方式在此引入)。这样的嵌合人源化单克隆抗体科通过本领域中已知的重组体DNA技术制造，例如使用在下列文献中描述的方法：PCT公开号WO 87/02671；欧洲专利申请184187；欧洲专利申请171496；欧洲专利申请173494；PCT公开好WO 86/01533；美国专利第4816567号和5225539号；欧洲专利申请125023；Better等，1988，Science 240：1041-1043；Liu等，1987，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84：3439-3443；Liu等，1987，J.Immunol.139：3521-3526；Sun等，1987，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84：214-218；Nishimura等，1987，Canc.Res.47：999-1005；Wood等，1985，Nature 314，446-449；Shaw等，1988，J.Natl.Cancer Inst.80，1553-1559；Morrison1985，Science 229：1202-1207；Oi等，1986，Bio/Techniques 4，214；Jones等，1986，Nature 321，552-525；Verhoeyan等，1988，Science 239，1534；和Beidler等，1988，J.Immunol.141，4053-4060。

互补决定区(CDR)嫁接是使抗体人源化的另一种方法。其涉及改造鼠科抗体以将全部抗原特异性和结合亲和性转换到人框架(Winter等美国专利第5225539号)。CDR嫁接的抗体已经成功地针对各种抗原而构造，例如，针对IL-2受体的抗体，如Queen等，1989(Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86，10029)中所述；针对细胞表面受体CAMPATH的抗体，如Riechmann等(1988，Nature，332，323)中所述；针对乙型肝炎的抗体，如Cole等，(1991，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88，2869)中所述；以及针对病毒抗原-呼吸道合胞病毒的抗体，如Tempest等(1991，Bio-Technology 9，267)中所述。生成CDR嫁接的抗体，其中鼠科单克隆抗体的CDR嫁接至人抗体。嫁接后，绝大多数抗体获益于在框架区中的其他氨基酸变化以维持亲和性，推测起来这是因为框架残基对于维持CDR构造是必需的，并且一部分框架残基已经被证明是抗原结合位的一部分。不过，为了保存框架区而不致引入任何抗原位，序列与已确立的种系序列对比，然后计算机建模。

完全的人抗体，例如CB8，对于治疗人类患者特别理想。这样的抗体可以通过使用转基因小鼠制造，其不能表达内源性免疫球蛋白重链和轻链基因，但可以表达人重链和轻链基因。转基因小鼠用TSG101蛋白以常规方式免疫。

针对TSG101蛋白的单克隆抗体可使用传统杂交瘤技术获得。得自转基因小鼠的人免疫球蛋白转基因在B细胞分化的过程中重排，随后经历类型转换和体细胞突变。因此，使用这样的技术，可以制得治疗有用的IgG、IgA和IgE抗体。对于用于制造人抗体的该技术的综述，参见Lonberg和Huszar(1995，Int.Rev.Immunol.13，65-93)。对于用于制造人抗体和人单克隆抗体的该技术以及用于制造这种抗体的方案的详细讨论，例如参见美国专利第5625126号；5633425号；5661016号；和5545806号。另外，也可聘用诸如Abgenix，Inc.(Freemoint，CA，例如参见美国专利第5985615号)和Medarex，Inc.(Princeton，NJ)等公司使用与上述技术类似的技术提供针对TSG101蛋白或其片段的人抗体。

识别并结合选择性表位的完全的人抗体可通过使用称作“定向选择”的技术产生。在该方法中，选择的非人单克隆抗体，如小鼠抗体，用于指导识别同一表位的完全的人抗体的选择(Jespers等，1994，Biotechnology 12，899-903)。

通过诸如亲合色谱法或免疫沉淀法等标准技术，预先存在的抗-TSG101抗体可用于分离病原体的其他抗原从而用作免疫原。此外，这样的抗体可用于检测蛋白(例如，细胞裂解物或细胞上清液中)从而评估TSG101蛋白的表达的丰度和模式。可以通过使抗体结合可探测物而更容易地进行检测。可探测物的实例包括各种酶、辅基、荧光物质、发光物质、生物发光物质和放射性物质。合适的酶的实例包括辣根过氧物酶、碱性磷酸酶、beta-半乳糖苷酶或乙酰胆碱酯酶；合适的辅基络合物的实例包括抗生蛋白链菌素/生物素和抗生物素蛋白/生物素；合适的荧光物质的实例包括伞形酮、荧光素、异硫氰酸荧光素、若丹明、二氯三嗪基胺荧光素、丹磺酰氯或藻红蛋白；发光物质的实例包括鲁米诺(luminol)；生物发光物质的实例包括荧光素酶、虫萤光素和发光蛋白质，合适的放射性物质的实例包括125I、131I、35S或3H。

多克隆抗-TSG101抗体的制造

抗-TSG101抗体可通过对合适的动物，如小鼠、兔和马进行免疫而制造，不过不限于这些动物。

包含TSG101蛋白或其片段的免疫制剂用于通过免疫合适的对象(如兔、山羊、小鼠或其他哺乳动物)制备抗体。适宜的免疫制剂例如可包含重组表达的或化学合成的TSG101肽或多肽。该制剂还可包含佐剂，如Freund’s完全或不完全佐剂，或者类似的免疫刺激剂。

适宜用作免疫原的TSG101蛋白的片段至少包含8个氨基酸，更优选10个氨基酸，进而更优选15个氨基酸长的TSG101蛋白的一部分。

本发明还提供嵌合的或融合的TSG101多肽用作免疫原。正如本文使用的，“嵌合的”或“融合的”TSG101多肽包括与异源多肽可操作连接的TSG101多肽的全部或一部分。在融合TSG101多肽中，术语“可操作连接的”表示TSG101多肽和异源多肽在框架内彼此融合。异源多肽可融合至TSG101多肽的N端或C端。

一个可用的融合TSG101多肽是GST融合TSG101多肽，其中TSG101多肽融合至GST序列的C端。该融合TSG101多肽有助于重组体TSG101多肽的纯化。

在另一个实施方式中，融合TSG101多肽在其N端包含异源信号序列，以致TSG101多肽可被分泌并纯化至较高的均质性，从而制造高亲和性抗体。例如，免疫原的原信号序列可被除去并由来自另一蛋白的信号序列取代。例如，杆状病毒包膜蛋白的gp67分泌序列可用作异源信号序列(Current Protocols in Molecular Biology，Ausubel等，eds.，John Wiley & Sons，1992)。真核异源信号序列的其他实例包括蜂毒肽和人胎盘碱性磷酸酶的分泌序列(Stratagene；La Jola，California)。在其他的实例中，可用的原核异源信号序列包括phoA分泌信号和蛋白A分泌信号(Pharmacia B iotech；Piscataway，New Jersey)。

在其他的实施方式中，融合TSG101多肽是免疫球蛋白融合蛋白，其中TSG101多肽的全部或一部分融合至来自免疫球蛋白蛋白家族的成员的序列。免疫球蛋白融合蛋白可用作免疫原以在受试对象中生成针对TSG101多肽的抗体。

嵌合及融合TSG101多肽可通过标准重组体DNA技术制造。在一个实施方式中，融合基因可通过包括自动DNA合成仪的传统技术合成。另外一种方式，基因片段的PCR扩增可使用锚定引物进行，该引物在两个连续基因片段之间产生互补突出物，其可随后退火并再次扩增以生成嵌合基因序列(例如，Ausubel等，supra)。此外，许多表达载体是已经编码融合域的市售品(例如，GST多肽)。编码免疫原的核酸可克隆成为这样的表达载体以使融合域在框架内与多肽连接。

TSG101免疫制剂随后用于免疫合适的动物。优选地，该动物是能够分泌人抗体的专门的转基因动物。非限制性实例包括转基因小鼠系，其可用于产生针对特定病原体的抗体的多克隆族群(Fishwild等，1996，Nature Biotechnology 14，845-851；Mendez等，1997，Nature Genetics 15，146-156)。在本发明的一个实施方式中，提供未重排的人免疫球蛋白基因的转基因小鼠由目标免疫原免疫。针对免疫制剂的有力的免疫应答在小鼠中引发之后，收集小鼠的血液，并由血浆或血清制得人IgG分子的纯化制剂。本领域中任何公知的方法可用于获得人IgG分子的纯化制剂，这些方法包括但不限于使用与合适的柱列阵结合的抗人IgG抗体的亲和柱色谱。抗人IgG抗体可由本领域中已知的任何来源获得，例如来自诸如Dako Corporation和ICN的商业来源。制得的IgG分子制剂包括IgG分子的多克隆族群，其以不同的亲和度结合一个或多个免疫原。优选地，制剂的基本部分是对一个或多个免疫原具有特异性的IgG分子。尽管描述了IgG分子的多克隆制剂，应当理解包含不同类型免疫球蛋白分子的任一种类型或任何组合的多克隆制剂也被构想并意图包含在本发明的范围之内。

针对TSG101蛋白的抗体族群可由噬菌体展示库制得。多克隆抗体可通过对噬菌体展示库进行亲和筛选获得，该展示库具有足够多的且各种不同的对TSG101蛋白或其片段具有特异性的族群。特别是经检验可用于产生和筛查抗体展示库的方法和试剂的实例例如可在下列文献中找到：美国专利第5223409号和5514548号；PCT公开号WO92/18619；PCT公开号WO 91/17271；PCT公开号WO 92/20791；PCT公开号WO 92/15679；PCT公开号WO 93/01288；PCT公开号WO92/01047；PCT公开号WO 92/09690；PCT公开号WO 90/02809；Fuchs等，1991，Bio/Technology 9：1370-1372；Hay等，1992，Hum.Antibod.Hybridomas 3，81-85；Huse等，1989，Science 246，1275-1281；Griffiths等，1993，EMBO J.12，725-734。噬菌体展示库允许从极多的特异性族群中选取所需的抗体。噬菌体展示库的另外的优点在于编码所选抗体的核酸可方便地获得，由此有助于随后的表达载体的构建。

在其他优选的实施方式中，针对TSG101蛋白或其片段的抗体族群可通过使用所选的展示抗体的全部收集物，而没有各成员的克隆分离体的方法制造，如美国专利第6057098号中所述，其内容以引用的方式在此引入。多克隆抗体如下获得：优选在展示多种抗体的展示库成员经富集之后，对噬菌体展示库进行亲和筛选，该展示库具有足够多的例如对于具有多个表位的抗原分子的全部特异性功能。编码所选展示抗体的核酸被切除，并使用合适的PCR引物进行扩增。核酸可通过凝胶电泳纯化，以使全长核酸被分离。各核酸然后插入适宜的表达载体中，由此获得具有不同插入物的表达载体族群。表达载体的族群随后在合适的宿主中被表达。

鉴别用于抑制病毒制造的抗-TSG101抗体

本发明提供用于鉴别可用于抑制或减少病毒出芽的抗-TSG101抗体的方法。在一个实施方式中，本发明提供使用逆转录病毒感染试验确定抗-TSG101抗体对于病毒感染的影响的方法。包括由长末端重复(LTR)启动子(pBMN-Z-INeo)表达的E.coli lacZ基因的鼠白血病病毒(MLV)衍生载体转染来自293细胞(Phoenix A，ATCC)的兼向性鼠白血病逆转录病毒包装细胞系。由Phoenix A辅助性细胞制得的逆转录病毒被收集并用于感染小鼠N2A细胞(ATCC)。MLV载体转染24小时后将抗-TSG101抗体加入293辅助性细胞中。TSG101抗体对病毒制造的效果通过病毒上清液对感染目标细胞(N2A)的效率确定。N2A细胞的感染随后通过3-半乳糖苷酶活性的细胞染色确定(阳性细胞染色为蓝色，如图2中的暗点所示)。

通常，转染前一天将phoenix A细胞接种在聚-D-赖氨酸涂覆的6孔板上。在12μl的Lipofectamine 2000(Invitrogen)的存在下4微克的pBMN-Z-I-Neo然后转染各孔。转染24小时后，培养基用1ml/孔的新鲜培养基(含有曲古菌素A(3μM)和5μg或10μg的适宜的抗-TSG101抗体)替换。24～48小时后，收集病毒上清液，用0.2μm的过滤器过滤，使1ml病毒上清液与1ml新鲜培养基(含有聚凝胺(10μg/ml))混合，然后用于感染N2a细胞的一个孔。感染48小时后，N2a细胞固定并用上述的X-Gal在13-Gal染色试剂盒(Invitrogen)中染色。结果由数字图像证明。优选地，减少病毒制造至少10％、20％、50％70％或90％的抗-TSG101抗体被鉴别。

在下列的示例性实施方式中，测试两个抗-TSG101抗体“C”和“E”的对于病毒感染的作用。兔IgG用作非特异性抗体对照。进行多于10个独立试验，代表性的结果显示在图2中。未经抗体处理的Phoenix辅助性细胞(阳性对照)显示了逆转录病毒的有效制造，和N2A目标细胞的感染(左上图)；兔IgG无作用(左中图)。抗-TSG101抗体“C”减少病毒制造约20％～60％(左下图)。抗-TSG101抗体“E”减少病毒制造约50％～70％(右上图)。抗-C端和抗-N端抗体的混合物给出与单独的抗-C端抗体的类似结果(右中图)。未被病毒感染的N2a细胞仅仅显示最小背景染色(右下图)。

在另一个实施方式中，可用来抑制或减少病毒出芽的抗-TSG101抗体基于其对于细胞表面TSG101的结合而鉴别，例如在HIV转染的人CD4+人T细胞系H9(命名为H9ΔBgl)中。H9ΔBgl细胞是包膜缺陷的HIV结构(删除HIV基因组的Bgl II片段)转染的人CD4+T淋巴细胞。稳定转染的H9ΔBgl细胞由于HIV的包膜缺陷所致而产生HIV的非传染形式，因此不能感染培养基中的其他H9ΔBgl细胞。在一个实施方式中，未转染的H9细胞用作对照。与H9ΔBgl结合但是不与H9细胞结合的抗-TSG101抗体被鉴别为可用于抑制或减少病毒出芽的抗体。

在优选的实施方式中，抗-TSG101抗体与HIV产生的细胞(例如H9ΔBgl)中的细胞表面TSG101以及对照的H9细胞的结合通过荧光活化细胞拣选(FACS)确定。在一个实施方式中，H9ΔBgl和H9细胞均被固定，用抗-TSG101抗体温育，然后用荧光标记的二抗染色。免疫染色细胞随后用FACS分析。

在另一个实施方式中，HIV-1病毒制造试验用于进一步检测TSG101对于逆转录病毒制造的抑制效果。HIV-1载体pNL4-3转染293T细胞。转染24小时后，抗-TSG101抗体与可选的非特异性对照抗体分别加入细胞培养基中。额外温育24小时后，提取细胞裂解物，收集细胞培养上清液，并例如通过蔗糖梯度纯化HIV-1病毒体。细胞裂解物和纯化病毒体均使用例如抗-HIV-1抗体(如抗-p55和/或抗-P24抗体)的蛋白质印迹进行分析。可鉴别出对于HIV-1病毒释放具有明显抑制(例如，蛋白质印迹的密度示踪超过40％、50％、60％、70％或80％的抑制)的抗-TSG101抗体

在其他实施方式中，抗-TSG101抗体对HIV释放的效果使用基于H9ΔBgl细胞的HIV释放试验评估。HIV由H9ΔBgl细胞的释放可通过细胞培养上清液的HIV p24 ELISA直接测定。在一个实施方式中，多个不同浓度的抗-TSG101抗体用H9ΔBgl细胞分别温育。在一个实施方式中，对照抗体(如，相同浓度的兔IgG)也用H9ΔBgl细胞分别温育。添加抗体48小时后，收集培养上清液用于HIV p24ELISA。抗-TSG101抗体对于抑制病毒释放的效果随后通过比较抗-TSG101抗体的数据和对应的对照抗体的数据进行确定。

在其他的实施方式中，确定抗-TSG101抗体对于释放病毒后的HIV感染性的效果。在一个实施方式中，在抗-TSG101抗体的存在下来自Jurkat细胞的HIV上清液用于感染MAGI细胞。兔IgG可用作对照。抗-TSG101抗体对于HIV感染性的效果通过与对照进行比较而确定。

抗-TSG101抗体治疗病毒感染的用途

TSG101抗体有效地抑制病毒制造。因此，本发明提供使用诸如抗-C端TSG101抗体等TSG101抗体治疗包括HIV感染在内的病毒感染的方法。

病毒感染

可通过使用本发明的抗-TSG101抗体治疗或预防的疾病或紊乱包括但不限于由下列病毒导致的疾病或紊乱：逆转录病毒、棒状病毒、或丝状病毒、甲型肝炎病毒、乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、流行性感冒、水痘病毒、腺病毒、I型单纯疱疹病毒(HSV-1)、II型单纯疱疹病毒(HSV-2)、牛瘟、鼻病毒、艾柯病毒、轮状病毒、呼吸道合胞病毒、乳头状瘤病毒、乳头多瘤空泡病毒、细胞巨化病毒、棘皮病毒、虫媒病毒、汉他病毒、柯萨奇病毒、腮腺炎病毒、麻疹病毒、风疹病毒、脊髓灰质炎病毒、I型人体免疫缺陷病毒(HIV-I)和II型人体免疫缺陷病毒(HIV-II)、任何小RNA病毒科、肠道病毒、嵌杯病毒科、任一种诺沃克样病毒、外衣病毒、甲病毒、黄病毒如登革热病毒、冠形病毒、狂犬病病毒、马尔堡病毒、埃博拉病毒、副流感病毒、正黏液病毒、布尼亚病毒、沙粒病毒、呼吸道肠道病毒、轮状病毒、环状病毒、人T细胞白血病病毒I型、人T细胞白血病病毒II型、猿免疫缺陷病毒、慢性病毒、多瘤病毒、细小病毒、爱波斯坦-巴尔病毒、人疱疹病毒-6、猕猴疱疹病毒1型(B病毒)和痘病毒。

可通过使用本发明的抗-TSG101抗体治疗或预防的其他疾病或紊乱包括但不限于由下列病毒导致的疾病或紊乱：流感病毒、人呼吸道合胞病毒、伪狂犬病病毒、II型伪狂犬病病毒、猪轮状病毒、猪细小病毒、牛病毒性腹泻病毒、新城病病毒h、猪流感(swing flu)病毒、猪流感病毒、口蹄疫病毒、猪霍乱病毒、猪流感(swing influenza)病毒、非洲猪热病病毒、牛传染性鼻气管炎病毒、传染性喉气管炎病毒、克罗斯病毒、新生犊牛腹泻病毒、委内瑞拉马脑炎病毒、潘塔托若病毒、鼠白血病病毒、小鼠乳癌病毒、马流感病毒或马疱疹病毒、牛呼吸道合胞体病毒或牛副流感病毒。

使用抗-TSG101抗体抑制病毒释放的方法

在一个实施方式中，本发明提供使用抗-TSG101抗体，优选为抗-C端TSG101抗体从而抑制或减少从被感染的哺乳动物细胞中的病毒出芽(如HIV-1出芽)的方法。在本发明的方法中，一种或更多种抗-TSG101抗体与被感染细胞接触。抗-TSG101抗体与被感染细胞表面上的TSG101蛋白结合。抗-TSG101抗体的结合抑制或减少病毒体从细胞中释放或出芽。

在另一个实施方式中，本发明还提供使用抗-TSG101抗体，优选是抗-C端TSG101抗体治疗哺乳动物(例如人)的由包膜病毒(如HIV-1)引起的感染的方法。在本发明的方法中，一种或更多种抗-TSG101抗体施用给被病毒感染的哺乳动物，例如人。施用后，抗-TSG101抗体与感染细胞表面的TSG101蛋白结合，并抑制病毒由感染细胞出芽。

在本发明的其他实施方式中，抗-TSG101抗体，优选是抗-C端TSG101抗体与一种或更多种其他的治疗用抗病毒药物组合使用。在这样的组合治疗中，可在施用治疗药物之前，施用的同时，或施用之后施用抗-TSG101抗体。施用抗-TSG101抗体与施用治疗药物之间的时间间隔可通过本领域技术人员熟悉的常规试验确定。

在其他的实施方式中，本发明提供使用抗-TSG101抗体，例如抗-C端TSG101抗体治疗病毒感染的方法，该抗体属于能够介导与抗-TSG101抗体结合的被感染细胞的胞解的同工型。在优选的实施方式中，抗-TSG101抗体属于通过激活效应细胞如巨噬细胞来结合生长因子受体并激活血清补体和/或介导抗体依赖性细胞毒素(ADCC)的同工型。在其他优选实施方式中，该同工型是IgG1、IgG2a、IgG3或IgM。

就此而言，作为对抗体类药物的活性的进一步说明，筛查抗体候选物选择性杀死被病毒感染的细胞的能力。为此，目标细胞用活体染料标记。这些细胞随后用病毒感染，并经历ADCC试验，使用来自正常捐献者的NK细胞作为效应细胞。这些研究证明CB8抗体强有力地选择性杀死了被病毒感染的细胞。图33。这些抗体相当有效，以下事实对此进行证实，即至少70％的受感染细胞可在CB8抗体的抗体浓度为125ng/mL和相对较低的效应因子与目标的比例(3∶1)的条件下被杀死。该对被病毒感染的细胞进行明显选择性地杀死已经由多种不同的目标细胞类型(Hep2、MT4、MDCK)、多种不同的捐献者(NK细胞)和多种不同的病毒(HIV、流行性感冒)进行了再现。

使用其他的TSG101抗体，本发明人已经证明，针对TSG101的抗体可直接抑制病毒感染，而与先天宿主防御机制(ADCC或CDC)无关。该发现与TSG101和病毒后域蛋白的相互作用对于许多不同病毒的传播是必不可少的这一证据(参见图34)相一致。这些结果引导本发明人预期以上列举的许多或全部抗体候选物具有通过阻断关键性的相互作用来直接抑制病毒感染的能力。

抗-TSG101抗体的剂量可通过本领域的技术人员熟悉的常规试验确定。施用抗-TSG101抗体的效果或益处可通过本领域中已知的任何方法评估。对于以上指出的任一种病毒，化合物可单独使用，或者与目前的医疗标准组合使用。通常，尽管可以预期施用的其他模式，不过IV或IM注射，或者持续的IV施用是优选的途径。剂量随哺乳动物的不同以及病毒的不同而变。给定目标和本发明的化合物，本领域的技术人员能充分利用常规方案从而确定对于特定的哺乳动物、特定的病毒和特定的施用模式的特定剂量。

使用抗-TSG101抗体用于输送治疗和/或诊断剂的用途

本发明提供使用抗-TSG101抗体用于输送治疗和/或诊断剂至病毒感染细胞的方法和组合物。

使用抗-TSG101抗体-药物配对物可靶向并杀死感染细胞。例如，抗-TSG101抗体可与诸如细胞毒素(如细胞生长抑制剂或放射性金属离子)等治疗部分结合。抗体-药物共轭物可通过本领域公知的方法制备(例如参见Immunoconjugates，Vogel，ed.1987；Targeted Drugs，Coldberg，ed.1983；Antibody Mediated Delivery Systems，Rodwell，ed.1988)。治疗药物，例如但不限于紫杉醇、细胞松弛素B、短杆菌肽D、溴化二氨乙苯啡啶、依米丁、丝裂霉素、依托泊甙、长春新碱、长春碱、秋水仙碱、阿霉素、道诺霉素、二羟基蒽二酮、米托蒽醌、光神霉素、放射菌素D、1-去氢睾酮、糖皮质激素、普鲁卡因、丁卡因、利多卡因、心得安和嘌呤霉素，以及这些物质的类似物或同系物，这些物质可以与本发明的抗-TSG101抗体结合。可与本发明的抗-TSG101抗体结合的其他治疗剂包括但不限于抗新陈代谢药物，如甲氨蝶呤、6-巯基嘌呤、6-硫鸟嘌呤、阿糖胞苷、5-氟尿嘧啶氮烯咪胺；烷化剂，如二氯甲基二乙胺、噻替哌(thioepa)苯丁酸氮芥、美法仑、亚硝(基)脲氮芥(BSNU)和洛莫司汀(CCNU)、(环磷酰胺)cyclothosphamide、白消安、溴甘露醇、链脲霉素、丝裂霉素C和顺铂(II)(DDP)；蒽环类，如道诺霉素(道诺霉素)和阿霉素；抗生素，如更生霉素(放线菌素)、博来霉素、光神霉素、蒽霉素(AMC)；和抗有丝分裂剂，如长春新碱和长春碱。可与本发明的抗-TSG101抗体结合的治疗剂还可以是具有所需生物活性的蛋白或多肽。这样的蛋白例如可包括毒素，如相思豆毒素、蓖麻毒A、假单胞菌外毒素，或白喉毒素。

药物分子可经由连接物与抗-TSG101抗体连接。任何适宜的连接物可用于制备这样的共轭物。在一些实施方式中，该连接物可以是允许药物分子以未被修饰的形式在目标位点由共轭物释放的连接物。

抗体还可用于诊断，例如作为临床测试程序的一部分监控病毒感染的进展，从而例如确定给出的治疗方案的功效。可通过使抗体与可检测物结合而便于检测。可检测物的实例包括各种酶、辅基、荧光物质、发光物质、生物发光物质、放射性物质、使用各种正电子发射X射线层析照相术的正电子放射的金属和非放射性顺磁性金属离子。用于能够与本发明的用作诊断物的抗体结合的金属离子则通常参见美国专利第4741900号。适宜的酶的实例包括辣根过氧物酶、碱性磷酸酶、beta-半乳糖苷酶或乙酰胆碱酯酶；合适的辅基络合物的实例包括抗生蛋白链菌素/生物素和抗生物素蛋白/生物素；合适的荧光物质的实例荧光蛋白如绿色荧光蛋白(GFP)、伞形酮、荧光素、异硫氰酸荧光素、若丹明、二氯三嗪基胺荧光素、丹磺酰氯或藻红蛋白；发光物质的实例包括鲁米诺；生物发光物质的实例包括荧光素酶、虫萤光素和发光蛋白质，合适的放射性物质的实例包括¹²⁵I、¹³¹I、¹¹¹In、¹⁷⁷Lu、⁹⁰Y或⁹⁹Tc。

用于使治疗部分与抗体结合的技术是公知的，例如参见Arnon等，“Monoclonal Antibodies For Immunotargeting Of Drugs In CancerTherapy”，in Monoclonal Antibodies And Cancer Therapy，Reisfeld等(eds.)，pp.243-56(Alan R.Liss，Inc.1985)；Hellstrom等，“Antibodies ForDrug Delivery”，in Controlled Drug Delivery(2^nd Ed.)，Robinson等(eds.)，pp.623-53(Marcel Dekker，Inc.1987)；Thorpe，“Antibody Carriers OfCytotoxic Agents In Cancer Therapy：A Review”，in MonoclonalAntibodies 84：Biological And Clinical Applications，Pinchera，et al，(ess.)，pp.475-506(1985)；”Analysis，Results，And Future Prospective Of TheTherapeutic Use Of Radiolabeled Antibody In Cancer Therapy”，inMonoclonal Antibodies For Cancer Detection And Therapy，Baldwin等(ess.)，pp.303-16(Academic Press 1985)和Thorpe等，“The PreparationAnd Cytotoxic Properties Of Antibody-Toxin Conjugates”，Immunol.Rev.62，119-58(1982)；每一篇的内容均以引用的方式在此引入。

作为选择，抗体可以结合第二抗体以形成如Segal的美国专利第4676980号中所述的抗体异源共轭物，其内容以引用的方式在此引入。

检测被病毒感染的细胞

针对TSG101蛋白，如TSG101蛋白的N端区或C端区的抗体或标记抗体还可用作病毒感染的诊断和预断，例如通过检测细胞表面上TSG101蛋白的存在而进行。这样的诊断方法还可用于检测TSG101基因表达水平的异常，或TSG101蛋白的结构和/或暂时的、组织的、细胞的或亚细胞定位的异常。

待分析的组织或细胞类型可包括已知的或受怀疑的、将被病毒感染的那些。此处采用的蛋白分离法例如可以是在Harlow和Lane(Harlow，E.和Lane，D.，1988，“Antibodies：A Laboratory Manual”，ColdSpring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，New York)中描述的那些方法，其内容以引用的方式在此引入。分离的细胞可来自细胞培养物或来自患者。提取自培养物的细胞的分析可能是必要的步骤以评估待用作细胞类基因治疗技术的一部分的细胞，或者另外，用于测试化合物对TSG101基因表达的效果。

用于检测TSG101片段或其保守变体或肽片段可能涉及免疫测定，其中TSG101片段或其保守变体或肽片段通过它们与抗-TSG101片段特异的抗体的相互作用而被检测。

例如，抗体，或抗体的片段(诸如以上描述的可用在本发明中的那些)可用于通过TSG101片段或其保守变体或肽片段在被感染细胞表面上的存在而定量或定性的检测被感染的细胞。这例如可通过与光镜检测、流式细胞检测或荧光检测结合的采用荧光标记的蛋白(见该部分下文)的免疫荧光技术完成。这样的技术尤其可用于病毒感染，其中TSG101片段在病毒出芽过程中被征用至细胞表面。

可用在本发明中的抗体(或其片段)另外还可在组织学上用于免疫荧光或免疫电镜以用于原位检测TSG101片段或其保守变体或肽片段。可通过由患者移取组织学样本，并将经标记的本发明的抗体应用其上从而实现原位检测。优选通过将经标记的抗体(或片段)覆盖于生物样品上而应用抗体(或其片段)。通过使用这样的步骤，不仅可以确定TSG101片段或保守变体或肽片段的存在，还可以确定在被检验组织中的分布。使用本发明，本领域的技术人员将容易地认识到，各种组织学方法的任一种(如染色过程)均可被修饰以完成该原位检测。

用于TSG101片段或其保守变体或肽片段的免疫测定通常包括在能够识别TSG101片段或其保守变体或肽片段的可检测的标记抗体的存在下温育样品，如生物流体、组织提取物、新鲜采集的细胞或已经在细胞培养基中温育的细胞的裂解物，然后通过本领域中公知的多种技术的任一种检测结合的抗体。

生物样品可与固相支持物或载体(如硝化纤维)，或其他能够固定细胞、细胞颗粒或可溶蛋白的固体支持物接触并固定于其上。支持物然后用合适的缓冲物洗涤，随后用可检测的经标记的TSG101蛋白特异性抗体处理。固相支持物然后可以由缓冲物第二次洗涤以除去未结合的抗体。固体支持物上的已结合的标记的量随后通过传统手段检测。

“固相支持物或载体”是指任何能够结合抗原或抗体的支持物。公知的支持物或载体包括玻璃、聚苯乙烯、聚丙烯、聚乙烯、葡聚糖、尼龙、淀粉酶、天然和改性纤维素、聚丙烯酰胺、辉长岩和磁铁矿。为了本发明的目的，载体的性质可以是在一定程度上可溶，也可以是不溶。支持材料实际上可具有任何可能的结构，只要偶联分子能够结合抗原或抗体即可。因此，支持物的结构可以是如小珠的球形，或为如试管内表面或棒的外表面的圆柱形。另外一种方式，表面可以是平滑的，例如片材、测试条等。优选的支持物包括聚苯乙烯珠。本领域的技术人员将获知许多其他合适的用于结合抗体或抗原的载体，或者将能够通过常规试验确定它们。

给出的许多抗-TSG101片段抗体的结合活性可根据公知方法确定。本领域的技术人员将能够通过采用常规试验而确定用于各种测量的有效且最佳的试验条件。

TSG101基因肽特异性抗体能够被可检测性地进行标记的方式之一是使其与酶连接，然后用在酶免疫测定中(EIA)(Voller，A.，“TheEnzyme Linked Immunosorbent Assay(ELISA)”，1978，DiagnosticHorizons 2：1-7，Microbiological Associates QuarterlyPublication，Walkersville，MD；VOller，A.等，1978，J.Clin.Pathol.31：507-520；Butler，J.E.，1981，Meth.Enzymol.73：482-523；Maggio，E.(ed.)，1980，Enzyme Immunoassay，CRC Press，Boca Raton，FL，；Ishikawa，E.等，(eds.)，1981，Enzyme Immunoassay，Kgaku Shoin，Tokyo)。与抗体结合的酶将以能够制得例如可通过分光光度、荧光或通过病毒手段而检测的化学部分的方式与合适的底物反应，优选是发色性底物。用于可检测性地标记抗体的酶包括但不限于苹果酸脱氢酶、葡萄球菌核酸酶、delta-5-类固醇异构酶、酵母醇脱氢酶、alpha-甘油磷酸、脱氢酶、磷酸丙糖异构酶、辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、天门冬醯胺酶、葡糖氧化酶、beta-半乳糖苷酶、核糖核酸酶、脲酶、过氧化氢酶、葡糖-6-磷酸脱氢酶、葡糖淀粉酶和乙酰胆碱酯酶。检测可以通过比色法完成，比色法采用酶的发色底物。也可以通过与类似制得的标准物相对比，目视比较底物的酶促反应程度从而完成检测。

检测还可以使用各种其他免疫测定的任一种完成。例如，通过放射性标记抗体或抗体片段，可以通过使用放射性免疫测定(RIA)检测TSG 101蛋白(例如参见Weitraub，B.，Principles of Radioimmunoassays，Seventh Training Course on Radioligand Assay Techniques，The EndocrineSociety，March，1986，其内容以引用的方式在此引入)。放射性同位素可通过使用伽玛计数器或闪烁计数器或通过自动射线照相术等手段检测。

还可以用荧光化合物标记抗体。荧光标记的抗体曝露于合适波长的光线时，随后可因荧光而被检测到其存在。最常用的荧光标记化合物是荧光异硫氰酸酯、若丹明、藻红蛋白、藻青蛋白、别藻蓝蛋白、邻苯二甲醛和荧光胺。

抗体还可以通过使用荧光放射金属如¹⁵²Eu，或其他镧系元素系列而被检测性标记。这些金属可使用诸如二乙三胺五乙酸(DTPA)或乙二胺四乙酸(EDTA)等金属螯合基团而与抗体连接。

抗体还可以通过使其与化学发光化合物结合而被检测性标记。随后通过检测在化学反应过程中出现的发光而测定化学发光标记的抗体的存在。特别有用的化学发光标记化合物的实例是鲁米诺、异鲁米诺、theromatic acridinium ester(theromatic吖啶酯)、咪唑、吖啶鎓盐和草酸酯。

同样，生物发光化合物可用于标记本发明的抗体。生物发光是在生物体系中发现的化学发光的一种，其中催化蛋白增大化学发光反应的效率。通过检测发光的存在而确定生物发光蛋白的存在。重要的标记用生物发光化合物是荧光素、荧光素酶和发光蛋白质。

病毒感染细胞的体外损耗

本发明提供在体外(或间接体内)从未被感染的组织和/或细胞消耗病毒感染的细胞的方法。例如，由哺乳动物获得的用于从未被感染的细胞体外消耗病毒感染细胞的组织可以是血液或血清或其他体液。特别是，本发明提供通过杀死病毒感染细胞或使其与未感染细胞分离而消耗它们的方法。在一个实施方式中，抗-TSG101抗体体外结合(例如，温育)由人等哺乳动物获得的组织和/或细胞。

在一个实施方式中，与固体基质结合的包含TSG101抗体(如，结合TSG101蛋白的N端区或C端区的抗体)的柱用于从生物样品，如血液或血清或其他体液，除去病毒感染细胞。

由组织体外消耗病毒感染细胞时使用的抗-TSG101抗体可以与检测标记(如各种酶、荧光物质、发光物质、生物发光物质和放射性物质)或治疗剂(如细胞抑制剂和杀细胞剂)结合，在“使用抗-TSG101抗体抑制病毒感染的方法”这一部分中公开了这些物质。

与可检测物结合的抗-TSG101抗体可用于通过本领域的技术人员已知的方法从未被感染的细胞分选出病毒感染细胞。在一个实施方式中，使用荧光活化细胞拣选术(FACS)分选出病毒感染细胞。荧光活化细胞拣选术(FACS)是基于颗粒的荧光性质分离颗粒(包括细胞)的公知方法(Kamarch，1987，Methods Enzymol.，151：150-165)。各颗粒中荧光部分的激光激发导致允许正负颗粒由混合物发生电磁分离的较小电荷。

在一个实施方式中，得自哺乳动物(如人)的细胞(如血细胞)用荧光标记的TSG101特异性抗体温育足够长的时间以使标记抗体与细胞结合。在可选的实施方式中，该细胞用TSG101特异性抗体温育，洗涤细胞，然后细胞用识别TSG101特异性抗体的第二标记抗体温育。根据这些实施方式，洗涤细胞并通过细胞分选仪处理，由此使得结合了待被分离的两个抗体的细胞与未结合两个抗体的杂交细胞分离。FACS分选的颗粒可以沉积在96孔板或384孔板的各孔中以促进分离。

在另一个实施方式中，磁珠可用于使病毒感染细胞与未被感染的细胞分离。病毒感染细胞可使用磁活化细胞分选(MACS)技术进行分选，该技术是基于颗粒与磁珠(0.5nm～100nm直径)结合的能力而分离颗粒的方法(Dynal，1995)。可以对磁性微球体进行各种有用的修饰，包括共价加成免疫特异性识别TSG101的抗体。然后施加磁场，以对所选磁珠进行物理处理。磁珠然后与允许结合的细胞混合。细胞随后通过磁场以分离出病毒感染细胞。

抗-TSG101抗体的剂量

剂量可以在进行常规测试时由医师确定。在施用给人之前，功效优选显示在动物模型中。可以使用任何用于本领域已知的感染性疾病的动物模型。

通常，对于抗体来说，优选剂量是0.1mg/kg体重～100mg/kg体重(通常为10mg/kg体重～20mg/kg体重)。如果抗体作用于脑，则50mg/kg～100mg/kg的剂量通常是适宜的。部分人抗体和完全人抗体在人体内通常具有比其他抗体更长的半衰期。因此，较低的剂量和较低频率的施用往往是可能的。诸如脂化等修饰可用于稳定抗体并提高摄取和组织穿透(例如进入脑)。在Cruikshank等，1997，J.Acquired ImmuneDeficiency Syndromes and Human Retrovirology 14：193中描述了脂化抗体的方法。

如本文所定义，抗-TSG101抗体的治疗有效量(即，有效剂量)为约0.001mg/kg体重～30mg/kg体重，优选约0.01mg/kg体重～25mg/kg体重，更优选约0.1mg/kg体重～20mg/kg体重，进而更优选约1mg/kg体重～10mg/kg体重、2mg/kg体重～9mg/kg体重、3mg/kg体重～8mg/kg体重、4mg/kg体重～7mg/kg体重或5mg/kg体重～6mg/kg体重。

熟练的技术人员应当理解某些因素可能影响有效治疗对象所需的剂量，这些因素包括但不限于疾病或紊乱的严重程度、先前的治疗、受试对象的整体健康状况和/或年龄以及现患的其他疾病。此外，用治疗有效量的抗-TSG101抗体治疗对象包括单一治疗，或优选包括一系列治疗。在优选例中，受试对象用大约0.1mg/kg体重～20mg/kg体重的抗-TSG101抗体，一周一次治疗约1～10周，优选2～8周，更优选约3～7周，进而更优选约4、5或6周。还应当理解治疗用的抗TSG-101抗体的有效剂量可在具体治疗过程中增加或减少。并且由本文所述的诊断测定的结果可导致剂量的变化并且是显而易见的。

应当理解抗-TSG101抗体的适宜剂量取决于普通医师、兽医或研究者的知识领域中的很多因素。抗-TSG101抗体的剂量例如将随着受试对象或待处理样品的性质、大小和状况而变，还取决于组合物的施用途径，如果可以施用，以及医生期望的抗-TSG101抗体对传染原的效果。

药物制剂和施用

本发明的抗-TSG101抗体可结合适宜施用的药物组合物。这样的组合物通常包含抗-TSG101抗体和药学可接受的载体。本文使用的术语“药学可接受的载体”意图包括任何和所有的溶剂、分散介质、涂料、抗菌剂和抗真菌剂、等渗剂和吸收延缓剂等等，这些物质与药物施用相容。用于药物活性物的这类介质和药剂的用途在本领域中是公知的。除非传统介质或药剂与抗-TSG101抗体不相容，其在组合物中的用途均被构想。增补的抗-TSG101抗体也可混入组合物中。

本发明的药物组合物配制成与其预期的施用途径相容。优选的施用途径包括皮下和静脉内。施用途径的其他实例包括肠胃外、皮内、透皮(局部)和透粘膜。用于肠胃外、皮内或皮下施用的溶液或悬浮液可包含下列成分：无菌稀释剂如注射用水、盐溶液、不挥发性油、聚乙二醇、甘油、丙二醇或其他合成溶剂；抗菌剂如苄醇或甲基苯甲酸酯；抗氧化剂如抗坏血酸或二硫化钠；螯合剂如乙二胺四乙酸；缓冲剂如乙酸酯、柠檬酸酯或磷酸酯；以及用于调节张力的试剂如氯化钠或右旋糖。pH可以用酸或碱调节，如盐酸或氢氧化钠。非肠道制剂可以包封在安瓿瓶，由玻璃或塑料制成的一次性注射器或多剂量小瓶中。

适于注射使用的药物组合物包括无菌水溶液(可溶于水时)或分散液，和用于无菌可注射溶液或分散液的即时制剂的无菌粉末。对于静脉内使用，合适的载体包括生理盐水、抑菌水、Cremphor EL^TM(BASF；Parsippany)或磷酸缓冲盐(PBS)。在所有的情况中，组合物均必须是无菌的，而且应当具有粘度较低且抗-TSG101抗体可被注射的流动程度。其在制造和存储条件下必须稳定，而且必须保存以免受诸如细菌和真菌等微生物的污染作用。

载体可以是溶剂或分散介质，其例如包含水、乙醇、多元醇(例如甘油、丙二醇和液态聚乙二醇等)以及它们的适宜的混合物。适当的流动性例如可通过使用卵磷脂等涂料，通过维持分散液情况中的所需粒径和通过使用表面活性剂来维持。对微生物作用的预防可通过各种抗菌剂和抗真菌剂来实现，例如苯甲酸酯、氯丁醇、苯酚、抗坏血酸、噻汞撒等。在许多情况中，组合物中应当优选包括等渗剂，例如糖、多元醇如甘露醇、山梨糖醇、氯化钠。通过在组合物中包含延缓吸收的药剂如单硬脂酸铝和明胶而实现可注射组合物的延长吸收。

无菌注射液可通过在具有以上列举的一种组分或多种组分的组合的适宜溶剂中结合所需量的抗-TSG101抗体，根据需要，随后进行过滤杀菌而制备。通常，分散液通过使抗-TSG101抗体混入包含基本分散介质和来自以上列举的那些其他组分的无菌载体中制备。在用于制备无菌可注射液的无菌粉末的情况中，优选的制备方法是真空干燥和冷冻干燥，其产生活性组分以及任何来自其预先无菌过滤溶液的其他所需组分的粉末。

在一个实施方式中，抗-TSG101抗体与载体一起制备，所述载体将保护化合物免于迅速从体内排出，诸如控释制剂，包括植入物和微胶囊输送体系。可以使用生物降解性、生物相容性聚合物，如乙烯醋酸乙烯酯、聚酐、聚乙醇酸、胶原质、聚原酸酯和聚乳酸。制备这些制剂的方法对于本领域的技术人员是显而易见的。这些物质还可以由Alza Corporation和Nova Pharmaceuticals，Inc.商购获得。脂质体悬浮液(包括具有针对病毒抗原的单克隆抗体的针对感染细胞的脂质体)也可用作药学可接受的载体。这些物质可根据本领域的技术人员所知的方法制备，例如，如美国专利第4522811号所描述的，其内容以引用的方式在此引入。

有利的是以容易施用且剂量均一的剂量单位形式配制非肠道用组合物。本文使用的剂量单位形式是指适合用作用于待治疗对象的单一剂量的物理不连续单位；各单位包含经计算以产生所需治疗效果的预定量的抗-TSG101抗体和结合的所需量的药物载体。对于本发明的剂量单位形式的说明受限定于并且取决于抗-TSG101抗体的独特特征和待实现的具体的治疗效果，以及配混该抗-TSG101抗体用于个体治疗领域中固有局限。

药物组合物可以与施用说明一起包含在试剂盒、容器、包装或分配器中。

用于治疗及预防病毒感染的TSG101疫苗和SNA疫苗

本发明提供TSG101蛋白的片段，其可用作疫苗以产生抗-TSG101抗体。TSG101蛋白片段或多肽可通过本领域公知的标准方法制备。在一个实施方式中，本发明提供不包含TSG101蛋白的UEV域的TSG101蛋白的片段。在具体的实施方式中，本发明提供人TSG101蛋白的片段，或其鼠科同系物，其不含有UEV域。在优选的实施方式中，本发明提供包含TSG101蛋白的V端区的片段，在另一个实施方式中，本发明提供包含TSG101蛋白的卷曲螺旋域的TSG101蛋白的片段。在又一个实施方式中，本发明提供描述为SEQ ID NO：3的TSG101蛋白的C端区的TSG101蛋白的片段。本发明还提供与该TSG101蛋白的同源性至少为30％、50％、70％、90％或95％的任何序列。在本发明的一些实施方式中，TSG101蛋白片段或多肽在长度上为至少5、10、20、50、100个氨基酸。

本发明还提供在功能上与任何上述的TSG101片段相当的TSG101蛋白的片段。该等效的TSG101片段可包含编码TSG101蛋白的TSG101蛋白基因序列编码的氨基酸序列中的缺失、增添或替换的氨基酸残基，但其导致了悄然变化，由此产生功能相当的TSG101蛋白片段。氨基酸替换可基于所涉及的残基的极性、电荷、溶解性。疏水性、亲水性和/或两性性质实现。例如，非极性(疏水)氨基酸包括丙氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸、脯氨酸、苯基丙氨酸、色氨酸和蛋氨酸；中极性氨基酸包括甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸、半胱氨酸、酪氨酸、天冬酰胺酸和谷酰胺；带正电(碱性)的氨基酸包括精氨酸、赖氨和组氨酸；带负电(酸性)的氨基酸包括天(门)冬氨酸和谷氨酸。本文使用的“功能相当的”是指能够表现与内源性TSG101蛋白片段活性基本类似的体内活性的蛋白质片段。

本发明的TSG101蛋白片段可以通过使用本领域公知技术的重组DNA技术制造。因此，制备本发明的TSG101多肽和肽的方法通过表达包含编码TSG101多肽或肽的TSG101基因序列的核酸进行。本领域的技术人员公知的方法可用于构建包含TSG101多肽编码序列和适宜的转录翻译控制信号的表达载体。这些方法例如包括体外重组DNA技术、合成技术和体内基因重组。例如参见Sambrook等，1989，supra和Ausubel等，1989，supra中描述的技术。另外一种方式，能够编码TSG101多肽的RNA可以例如使用合成仪进行化学合成。例如，参见”Oligonucleotide Synthesis”，1984，Gait，M.J.ed.，IRL Press，Oxford中描述的技术，其内容以引用的方式在此引入。

TSG101肽可与合适的载体和/或佐剂组合使用，如Freund’s完全或不完全佐剂，或者类似的免疫激活剂。可以使用的油/表面活性剂类佐剂包括与一种或更多种非代谢性矿物油或代谢性矿物油组合的一种或更多种表面活性剂，如Incomplete Seppic Adjuvant(Seppic，Paris，France)。Incomplete Seppic Adjuvant具有与用于抗体制造的IncompleteFreund’s佐剂的类似效果，不过其引发的炎症反应较少。

本发明还提供用作DNA或RNA疫苗的TSG101基因的一部分。TSG101基因片段还可用于制造本发明上面所述的任何TSG101蛋白片段。在优选的实施方式中，本发明提供包含编码不含TSG101蛋白的UEV区的片段的核苷酸区域的TSG101基因的片段。在具体的实施方式中，TSG101基因的片段是人TSG101基因的片段，或其鼠科同系物。本发明还提供与该TSG101基因片段的同源性为至少30％、50％、70％、90％或95％的任何序列。在本发明的一些实施方式中，TSG101基因的片段在长度上为至少20、25、40、60、80、100、500、100个碱基。这样的序列可用于制造TSG101肽。

本发明还提供(a)包含任一种前述的TSG101编码序列和/或它们的补体(即反义)的DNA载体；(b)包含前述TSG101编码序列的任一种可操作地结合有指导编码序列表达的调控要素的DNA表达载体；和(c)包含前述TSG101编码序列的任一种可操作地结合有指导该编码序列在宿主细胞中的表达以用于制造本发明的TSG101蛋白片段的调控要素的基因工程化的宿主细胞。此处使用的调控要素包括但不限于可诱导的和不可诱导的启动子、增强子、操作子和其他本领域技术人员公知的用于驱动并调控表达的要素。这样的调控要素包括但不限于细胞巨化病毒hCMV即早基因、SV40腺病毒的早期或后期启动子、lac体系、trp体系、TAC体系、TRC体系、噬菌体A的主要操作子和启动子区域、fd外壳蛋白的控制区、用于3-磷酸甘油酸盐激酶的启动子、酸性磷酸酶的启动子和酵母a-交配因子的启动子。

在另一个实施方式中，本发明提供裸DNA或RNA疫苗及其用途。通过诱发刺激本发明的抗-TSG101抗体，以上描述的本发明的TSG101DNA片段可作为疫苗施用以抑制病毒性疾病。DNA可转换为RNA，例如通过亚克隆DNA为转录载体(如质粒载体的pGEM家族)，或者在诸如牛痘等病毒的转录启动子的控制下，且所述RNA可用作裸RNA疫苗。裸DNA或RNA疫苗可单独注射，也可以组合一种或更多种针对病毒的DNA或RNA疫苗注射。

本发明的裸DNA或RNA疫苗例如可以通过腹壁间施用，或另外一种方式，可以用于滴鼻剂。DNA或RNA片段或其一部分可作为裸DNA或RNA、作为封装在脂质体中的DNA或RNA、作为包含病毒包膜受体蛋白的脂蛋白体中俘获的DNA或RNA注射(Nicolau，C.等Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A，1983，80，1068；Kanoda，Y.等Science 1989，243，375；Mannino，R.J.等Biotechniques 1988，6，682)。另外一种方式，DNA也可以与载体一同注射。载体可以是蛋白质或例如细胞因子，如鸡白细胞介素-2，或多熔素-糖蛋白载体(Wu，G.Y.和Wu，C.H.，J.Biol.Chem.1988，263，14621)，或非复制性载体，例如包含Rous肉瘤病毒或细胞巨化病毒启动子的表达载体。这样的载体蛋白以及施用其的载体和方法是本领域的技术人员公知的(例如参见，Acsadi，G.等Nature1991，352，815-818)。另外，DNA或RNA可涂覆在微小的金珠上，然后例如通过基因枪将珠子引入皮肤(Cohen，J.Science 1993，259，1691-1692；Ulmer，J.B.等Science 1993，259，1745-1749)。

本发明还提供通过基因疗法治疗动物的病毒感染，如HIV感染的方法。各种基因治疗方法可用于将体内编码TSG101蛋白片段的核酸引入细胞从而产生TSG101抗体。

本领域中可利用的任一种基因治疗方法可根据本发明施用。示例性方法描述如下。对于基因治疗法的一般评论，参见Goldspiel等，.1993，Clinical Pharmacy 12，488-505；Wu和Wu，1991，Biotherapy 3，87-95；Tolstoshev，1993，Ann.Rev.Pharmacol.Toxicol.32，573-596；Mulligan，1993，Science 260，926-932；和Morgan ans Anderson，1993，Ann.Rev.Biochem.62，191-217；May，1993，TIBTECH 11，155-215。可使用的重组DNA技术领域中普遍公知的方法描述在Ausubel等(eds.)，1993，Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley & Sons，New York；和Kriegler，1990，Gene Transfer amd Expression，A Laboratory Manual，Stockton Press，New York中。

在优选的方案中，治疗剂包括TSG101核酸，其是在合适的宿主中表达TSG101或其片段或嵌合蛋白的表达载体的一部分。特别是，该核酸具有可操作连接TSG101编码区的启动子，所述启动子是可诱导的或构成性的，并且任选地是组织特异性的。在另一个具体的实施方式中，使用核酸分子，其中TSG101编码序列和其他所需序列通过促进在基因组中的所需位点进行同源重组的区域侧接，由此提供TSG101核酸的染色体内表达(例如参见Koller和Smithies，1989，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A 86，8923-8935；Zijlstra等，1989，Nature 342，435-438)。

将核酸运送至患者是可直接进行的，在该情况中患者直接接触核酸或携带核酸的载体，或是间接进行的，在该情况中细胞首先由核酸进行体外转化，然后移植给患者。这两种方式分别作为体内基因治疗或体外基因治疗而公知。

在具体的实施方式中，核酸被直接体内施用，由此其被表达以产生编码产物。该过程可通过本领域中众多公知方法的任一种完成，例如，将其构造为适宜的核酸表达载体的一部分并施用从而使其变为细胞内的，例如，通过使用有缺陷的或减弱的逆转录病毒或其他病毒载体进行感染(参见美国专利第4980286号)，或者通过直接注射裸DNA，或者使用微粒轰击(例如基因枪；Biolistic，Dupont)，或用包封在脂质体、微颗粒或微胶囊中的脂质或细胞表面受体或转染剂涂覆，或通过使其与进入核的肽连锁施用，通过使其与经受受体介导的内噬作用的配体连锁施用(例如参见，Wu和Wu，1987，J.Biol.Chem.262：4429-4432)(其可用于靶向特异性表达受体的细胞类型)等。在另一个实施方式中，可形成核酸-配体复合物，其中配体包含融合病毒肽以扰乱核内体，使得核酸避免溶酶体降解。在又一个实施方式中，通过靶向特异性受体，核酸可体内针对性用于细胞特异的摄取和表达(例如参见，PCT公开号WO 92/06180，时间为1992年4月16日(Wu等，)；WO 92/22635，时间为1992年12月23日(Wilson等)；WO 92/20316，日期为1992年11月26日(Findeis等)；WO 93/14188，日期为1993年7月22日(Clarke等)；WO 93/20221，日期为1993年10月14日(Young))。作为选择，通过同源重组，核酸也可以引入细胞内并结合表达用宿主细胞DNA(Koller ans Smithies，1989，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A 86，8932-8935；Zijlstra等，1989，Nature 342，435-438)。

在具体的实施方式中，使用包含TSG101核酸的病毒载体。例如，可以使用逆转录病毒载体(参见Miller等，1993，Meth.Enzymol.217：581-599)。这些逆转录病毒载体已经被修饰以删除对于包装病毒基因组和整合进入宿主细胞DNA并非必需的逆转录病毒序列。待用于基因治疗的TSG101核酸克隆到载体，这有助于基因输送给患者。在Boesen等，1994，Biotherapy 6，291-302中存在关于逆转录病毒载体的更多细节，其描述了使用逆转录病毒载体输送mdrl基因至造血干细胞以使干细胞更能耐受化学疗法。描述逆转录病毒载体在基因疗法中的用途的其他参考文献是：Clowes等，1994，J.Clin.Invest.93，644-651；Kiem等，1994，Blood 83，1467-1473；Salmons和Gunzberg，1993，Human GeneTherapy 4，129-141；和Grossman和Wilson，1993，Curr.Opin，Genet.AndDevel.3，110-114。

腺病毒是其他可用于基因疗法的病毒载体。腺病毒对于输送基因至呼吸道上皮细胞是尤其引人注目的载体。腺病毒自然感染呼吸道上皮细胞，在此它们导致轻微疾病。腺病毒类输送体系的其他目标是肝脏、中枢神经系统、内皮细胞和肌肉。腺病毒具有的优势在于能够感染非分裂细胞。Kozarsky和Wilson(1993，Current Opinion in Genetics andDevelopment 3，499-503)提供了腺病毒类基因疗法的综论。Bout等，(1994，Human Gene Therapy 5，3-10)证明了使用腺病毒载体将基因转移至猕猴的呼吸道上皮细胞。在基因疗法中使用腺病毒的其他实例可在Rosenfeld等，1991，Science 252，431-434；Rosenfeld等，1992，Cell 68，143-155；和Mastrangeli等，1993，J.Clin.Invest.91，225-234中找到。

腺伴随病毒(AAV)也被提出用于基因疗法(Walsh等，1993，Proc.Soc.Exp.Biol.Med.204，289-300)。

基因疗法的另一种方法涉及通过诸如电穿孔、脂质转染、磷酸钙介导转染或病毒感染等方法将基因转入组织培养物中的细胞。通常，转入方法包括将选择性标记物转入细胞。对细胞进行选择以分离那些已经获取并表达转入的基因的细胞。这些细胞随后输送给患者。

在该实施方式中，在体内施用所得重组的细胞之前将核酸导入细胞。该导入可通过本领域中已知的任何方法进行，这些方法包括但不限于转染、电穿孔、显微注射、采用包含核酸序列的病毒载体或噬菌体载体的注射、细胞融合、染色体介导的基因转移、微细胞介导的基因转移、原生质融合等。

本领域中已知有大量技术用于将外源基因引入细胞(例如参见，Loeffler和Behr，1993，Meth.Enzymol.217，599-618；Cohen等，1993，Meth.Enzymol.217，618-644；Cline，1985，Pharmac.Ther.29，69-92)，并且可以根据本发明进行使用，只要必要的受体细胞的发育和生理功能不会受到妨碍即可。该技术提供了核酸至细胞的稳定转移，因此核酸能够通过细胞表达，并优选能够通过其细胞后代遗传和表达。

所得重组细胞可通过本领域中已知的各种方法输送给患者。在优选的实施方式中，例如皮下注射上皮细胞。在另一个实施方式中，重组皮肤细胞可作为移植皮肤施用于患者。重组血细胞(例如造血干细胞或祖细胞)优选为静脉内施用。预想的细胞用量取决于所需的效果、患者的状态等，可由本领域的技术人员确定。

为基因治疗的目的而在其中导入核酸的细胞包括任何所需的，可得的细胞类型，并且包括但不限于上皮细胞、内皮细胞、角化细胞、成纤维细胞、肌肉细胞、肝细胞；血细胞如T淋巴细胞、B淋巴细胞、单核细胞、巨噬细胞、嗜曙红细胞、巨核细胞、粒细胞；各种干细胞或祖细胞，尤其是如由骨髓、脐带血、外周血、胎肝等获得的造血干细胞或祖细胞。

在优选的实施方式中，用于基因疗法的细胞对于患者是自体同源的。

在重组细胞用于基因治疗的实施方式中，TSG101核酸导入细胞，以致其能够通过细胞或细胞后代表达，重组细胞然后体内施用用于治疗效果。在具体的实施方式中，使用干细胞或祖细胞。根据本发明的该实施方式能够潜在地使用任何可分离并体外维持的干细胞和/或祖细胞。这样的干细胞包括但不限于造血干细胞(HSC)、上皮组织(如皮肤和内脏的外膜)的干细胞、胚胎心肌细胞、肝脏干细胞(PCT公开号WO94/08598)和中性干细胞(Stemple和Anderson，1992，Cell 71，973-985)。

上皮干细胞(ESC)或角化细胞可通过已知步骤由皮肤和内脏的外膜获得(Rheinwald，1980，Meth.Cell Bio.21A：229)。在诸如皮肤等层状上皮组织中，通过生发层中的干细胞的有丝分裂发生更新，生发层是最靠近基底膜的层。内脏外膜中的干细胞提供该组织的快速更新率。来自患者或捐献者的皮肤或内脏外膜的ESC或角化细胞可以在组织培养物中生长(Rheinwald，1980，Meth.Cell Bio.21A，229；Pittelkow和Scott，1986，Mayo Clinic Proc.61，771)。如果ESC由捐献者提供，则还可以使用抑制移植物抗宿主反应性的方法(例如，施用以促进适度的免疫抑制的照射、药物或抗体)。

关于造血干细胞(HSC)，任何提供HSC的分离、繁殖和体外维持的技术可用于本发明的该实施方式。可实现上述目的的技术包括(a)由未来宿主或捐献者分离的骨髓细胞得到的HSC培养物的分离和确立，或(b)使用预先确立的长期HSC培养物，其可以是同种异体或异种的。非自体同源HSC优选与抑制未来宿主/患者的移植免疫反应的方法协同使用。在本发明的具体的实施方式中，人骨髓细胞可通过穿剌活检由后髂嵴得到(例如参见，Kodo等，1984，J.Clin.Invest.73，1377-1384)在本发明的优选实施方式中，HSC可制成为高度浓缩，或基本上纯化的形式。该浓缩可以在长期培养之前、培养过程中或培养之后完成，并且可以通过本领域已知的任何技术实现。骨髓细胞的长期培养可通过使用例如修饰的Dexter细胞培养技术(Dexter等，1977，J.Cell Physiol.91，335)或Witlock-Witte培养技术(Witlock和Witte，1982，Proc.Natl.Sci.USA 79，3608-3612)确立并维持。

在具体的实施方式中，用于基因疗法的目的而引入的核酸包括可操作地连接编码区的诱导启动子，从而通过控制适宜的转录诱导物的存在与否来控制核酸的表达。

下面描述可用于输送编码本发明的TSG101片段或其功能衍生物的核酸的其他方法。

TSG101抗体对于治疗许多病毒和病毒相关疾病的广泛的适用性

使用TSG101抗体，本发明人已经证明针对TSG101的抗体可直接抑制病毒感染，而与先天宿主防御机制(ADCC或CDC)无关。该发现与TSG101和病毒后域蛋白的相互作用对于许多不同病毒的传播是必不可少的这一证据相一致。这些结果引导本发明人得出结论，即本发明的许多或全部TSG101抗体候选物具有通过阻断关键性的相互作用来直接抑制病毒感染的能力。

基于已知的在许多不同病毒感染中涉及TSG101，本文报道的活性预计与由多种不同病毒导致的感染和疾病有关。图XX中列举了这些病毒的部分名单，其事实上涉及所有已知的病毒分组。

病毒分组：

组I：病毒具有双链DNA，包括诸如疱疹病毒科(例如HSV1(口腔疱疹)、HSV2(生殖器疱疹))、VZV(水痘)、EBV(爱波斯坦-巴尔病毒)、CMV(细胞巨化病毒)、痘病毒科(天花)和许多尾状噬菌体等病毒家族。米米病毒(mimivirus)也被分在该组。

组II：病毒具有单链DNA，包括诸如细小病毒科和重要的噬菌体 M13等病毒家族。

病毒家族	病毒属	病毒体裸/包膜	衣壳对称性	核酸的类型
					1.腺病毒科	腺病毒	裸	二十面体	双链
2.乳多泡病毒科	乳头状瘤病毒	裸	二十面体	双链环状
					3.细小病毒科	B19病毒	裸	二十面体	单链
4.疱疹病毒科	单纯疱疹病毒、水痘带状疱疹病毒、细胞巨化病毒、爱波斯坦-巴尔病毒	包膜	二十面体	双链
					5.痘病毒科	天花病毒、牛痘病毒	复合包衣	复合	双链
6.肝病毒科	乙型肝炎病毒	包膜	二十面体	双链环状
					7.多瘤病毒科	多瘤病毒(进行性多灶性白质脑病)	？	？	双链

RNA病毒

组III：病毒具有双链RNA基因组，例如轮状病毒。这些基因组总是分段的。

组IV：病毒具有正义单链RNA基因组。许多公知的病毒存在于该组中，包括小核糖核酸病毒(其是包括公知病毒如甲型肝炎病毒、肠道病毒、鼻病毒、脊髓灰质炎病毒和口蹄疫病毒等的病毒家族)、SARS病毒、丙型肝炎病毒、黄热病病毒和风疹病毒。

组V：病毒具有负义单链RNA基因组。致命的埃博拉病毒和马尔堡病毒是该组的公知成员，该组还有流感病毒、麻疹病毒、腮腺炎和狂犬病。

病毒家族	病毒属	病毒体裸/包膜	衣壳对称性	核酸的类型
					1.呼吸道病毒科	呼吸道肠道病毒、轮状病毒	裸	二十面体	双链
2.小核糖核酸病	肠道病毒、鼻病	裸	二十面体	单链

毒科	毒、肝病毒、心病毒、口蹄疫病毒、副肠孤病毒、马鼻病毒、关节样病毒、捷申病毒
					3.嵌杯病毒科科	诺沃克病毒、戊型肝炎病毒	裸	二十面体	单链
4.披膜病毒科	风疹病毒	包膜	二十面体	单链
					5.沙状病毒科	淋巴细胞性脉络丛脑膜炎病毒	包膜	复合	单链
6.逆转录病毒科	HIV-1、HIV-2、HTLV-1	包膜	复合	单链
					7.黄病毒科	登革病毒、丙型肝炎病毒、黄热病病毒	包膜	复合	单链
8.正黏液病毒科	流感病毒A、流感病毒B、流感病毒C、鲑传贫病毒、托高土病毒	包膜	螺旋状	单链
					9.负黏液病毒科	麻疹病毒、腮腺炎病毒、呼吸道合胞病毒	包膜	螺旋状	单链
10.布尼亚病毒科	加利福尼亚脑炎病毒、汉他病毒	包膜	螺旋状	单链
					11.弹状病毒科	狂犬病病毒	包膜	螺旋状	单链
12.丝状病毒科	埃博拉病毒、马尔堡病毒	包膜	螺旋状	单链
					13.冠状病毒科	冠状病毒	包膜	复合	单链
14.星状病毒科	星状病毒	裸	二十面体	单链
					15.包那病毒科	包那病病毒	包膜	螺旋状	单链

逆转录病毒

组VI：病毒具有单链RNA基因组，使用逆转录酶复制。逆转录病毒包括在该组中，HIV是其成员。

组VII：病毒具有双链DNA基因组，使用逆转录酶复制。乙型肝炎存在于该组中。

本发明人已经发现，许多TSG101对于许多不同病毒的传播是必要的，并且其在哺乳动物种属或真核种属中是高度保守的。因此，这些化合物可用于人或兽的病毒性疾病。这些病毒性疾病包括但不限于PRRS病毒、猪或牛圆环病毒、猪或牛冠状病毒、猪或牛RSV、猪、牛或禽流感病毒、EIAV、蓝舌病病毒或口蹄疫(FMD)病毒。

一些病毒是更多的慢性疾病的原因，发病率或死亡率与病毒的存在有关。这些疾病包括肝细胞癌(与HBV或HCV有关)、慢性疲劳综合征(与EBV有关)以及其他与病毒感染有关的疾病。

以上的化合物可用于治疗或防止(预防)单一的病毒病原体(如HIV或HBV)或它们的组合(HIV和HBV)。同样，这些单独适用性或广谱适用性涉及以上详述的任一或全部病毒组。

其他方法可以是用于与一种或更多种病毒相关的某些指示的化合物的用途。例如，这些抗体可用于预防或治疗呼吸道病毒感染，其由一种或更多种来自以上确定的组的病原体导致。如图32所示，本发明的抗-TSG101抗体结合RSV感染细胞。向需要RSV治疗的个体施用该药剂的同时提供了对机会性流感的预防，即典型的病毒药剂的组合。同样，这些化合物具有针对一种或更多种病原体(例如HIV和/或HBV和HCV)的应用。

这些化合物可应用于本发明，治疗或维持急性或慢性病毒。急性应用包括短期预防或治疗病毒感染，其实例包括流行性感冒、轮状病毒或丝状病毒感染。慢性应用包括周期性爆发(例如由生殖器疱疹观察到的)或不常见的爆发(如于带状疱疹过程中的带状疹感染有关的那些爆发)。同样，也可以意图进行长期治疗以维持慢性病毒感染较低水平的病毒载量(例如，对于HIV、HBV或HCV的治疗)。

实施例

实施例1：抗-TSG101多克隆抗体的制备和使用

为确定抗-TSG101抗体对病毒感染的作用，开发了逆转录病毒感染分析法。包括由长末端重复(LTR)启动子(pBMN-Z-INeo)表达的E.coli lacZ基因的鼠白血病病毒(MLV)衍生载体转染来自293细胞(Phoenix A，ATCC)的兼向性鼠白血病逆转录病毒包装细胞系。由Phoenix A辅助性细胞制得的逆转录病毒被收集并用于感染小鼠N2A细胞(ATCC)。MLV载体转染24小时后将抗-TSG101抗体加入293辅助细胞中。TSG101抗体对病毒制造的效果通过病毒上清液对感染目标细胞(N2A)的效率确定。N2A细胞的感染随后通过3-半乳糖苷酶活性的细胞染色确定(阳性细胞染色为蓝色，如图2中的暗点所示)。

通常，转染前一天将phoenix A细胞接种在聚-D-赖氨酸涂覆的6孔板上。随后在12μl的Lipofectamine 2000(Invitrogen)的存在将下4微克的pBMN-Z-I-Neo然后转染如各孔。转染24小时后，培养基用1ml/孔的新鲜培养基(含有曲古菌素A(3μM)和5μg或10μg的适宜的抗-TSG101抗体)替换。24～48小时后，收集病毒上清液，用0.2μm的过滤器过滤，使1ml病毒上清液与1ml新鲜培养基(含有聚凝胺(10μg/ml))混合，然后用于感染N2a细胞的一孔。感染48小时后，N2a细胞经固定并用上述的X-Gal在13-Gal染色试剂盒(Invitrogen)中染色。结果由数字图像证明。

在下列的试验中，测试两个抗-TSG101抗体对于病毒感染的作用，针对TSG101蛋白的N端区的兔抗体和针对TSG101蛋白的C端区的兔抗体。抗-N端TSG101抗体使用人TSG101蛋白的N端片段诱导产生：VRETVNVITLYKDLKPVL(SEQ ID NO：2)。抗C端TSG101抗体使用人TSG101蛋白的C端片段诱导产生：QLRALMQKARKTAGLSDLY(SEQ ID NO：3)。兔IgG用作非特异性抗体对照。进行多于10个独立试验，代表性的结果显示在图2中。未经抗体处理的Phoenix辅助性细胞(阳性对照)显示了逆转录病毒的有效制造，和N2A目标细胞的感染(左上图)；兔IgG无作用(左中图)。针对N端TSG101的兔抗体显示出约20％～60％的抑制(左下图)。而针对C端TSG101的兔抗体显著地抑制逆转录病毒的制造，以及N2A目标细胞的感染(50％～70％的抑制，右上图)。抗-C端和抗-N端抗体的混合物给出与单独的抗-C端抗体的类似结果(右中图)。未被病毒感染的N2a细胞仅仅显示最小背景染色(右下图)。在HIV病毒感染分析中也显示出类似的结果。

实施例2：病毒出芽过程中TSG101定位于细胞表面

该实施例显示HIV释放过程中TSG101的域曝露在细胞表面，抗-TSG101抗体抑制HIV的释放和感染。

病毒释放过程中的TSG101的定位

为证明TSG101活跃地参与病毒在质膜的释放，GFP-TSG101融合蛋白的表达载体被构建并转染活跃制造M-MuLV病毒的Phoenix细胞(由Stanford university的Nolan等开发的逆转录病毒辅助细胞系)。转染24小时后，在共焦显微镜(Ultraview，Perkin-Elmer)下观察GFP-TSG101融合蛋白通路。图3A～E显示GFP-TSG101蛋白由细胞质易位至细胞表面，然后从制造病毒的细胞中“出芽”而出的时间过程的图像。

HIV出芽过程中的TSG101的细胞表面定位

为确定TSG101是否也活跃地参与HIV出芽，抗-TSG101抗体用于直接检测HIV转染的人CD4+人T淋巴细胞系H9(指定为H9ΔBgl)中的细胞表面TSG101，未转染的H9细胞用作对照。两个兔抗-TSG101多克隆抗体，一个针对N端(称为抗-TSG101”C”)，另一个针对C端TSG101(称为抗-TSG101”E”)用于该项研究。两个抗体均被良好表征(Li等，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98(4)，1619-24)。两个抗体仅仅在HIV产生的H9ΔBgl细胞中特异性检测到TSG101的细胞表面定位，在对照H9细胞中未检测到细胞表面TSG101(图4)。令人感兴趣的是，抗-TSG101抗体检测到“帽”样出芽结构，正如用抗-HIV抗体所观察到的(Lee等，1999，J.Virol.73，5654-62)。

HIV出芽过程TSG101中的TSG101的细胞表面定位的FACS概 况

制造HIV的细胞(H9ΔBgl)和对照H9细胞中的TSG101的细胞表面定位随后通过荧光活化细胞拣选仪(FACS)测定。H9ΔBgl和H9细胞均被固定，用抗-TSG101抗体染色，然后用荧光标记的二抗检测。免疫染色细胞用FACS分析。多于六个的独立试验显示约70％～85％的H9ΔBgl细胞染色为表面TSG101阳性(图5)。这些结果通过在共焦显微镜下直接检测H9ΔBgl细胞和H9对照细胞而进一步证实。H9对照细胞的小群落(少于1％)来自于共焦显微镜分析之后的与免疫染色步骤有关的弱背景荧光信号。H9ΔBgl的阳性群落显示出明亮的荧光。

抗-TSG101抗体对转染的293细胞中的HIV的制造的抑制

HIV-1病毒制造分析用于进一步测定TSG101对逆转录病毒制造的抑制效果。HIV-1载体pNL4-3转染293T细胞。转染24小时后，两个抗-TSG101抗体(10μg/ml)，抗-TSG101抗体”E”和抗-TSG101抗体”B”，以及非特异性对照抗体(10μg/ml)分别加入细胞培养基中。抗-TSG101抗体“B”针对鼠科TSG101的N端片段而诱导获得，其与人TSG101蛋白的结合较差。抗-TSG101抗体“B”用作对照。额外温育24小时后，提取细胞裂解物，收集细胞培养上清液，并例如通过蔗糖梯度纯化HIV-1病毒体。细胞裂解物和纯化病毒体均使用两个抗-TSG101抗体(抗-p55和抗-p24抗体)的蛋白质印迹进行分析。如图6所示，抗-TSG101抗体”E”的治疗显示出对HIV-1病毒体释放的明显抑制(利用蛋白质印迹的密度追踪的超过70％的抑制，道8)，而抗-TSG101抗体”B”(道7)和对照抗体(道6)对HIV-1的释放未显示出明显的抑制。

抗体对HIV由人CD4+T淋巴细胞(H90Bgl细胞)的释放的抑制

为具体测定抗体对HIV释放的效果，开发基于H9ΔBgl细胞的HIV释放试验。H9ΔBgl细胞是包膜缺陷的HIV结构(删除HIV基因组的BglII片段)转染的人CD4+T淋巴细胞。稳定转染的H9ΔBgl细胞产生HIV的非传染形式(由于HIV的包膜缺陷所致，因此不能感染培养基中的其他H9ΔBgl细胞)，HIV由H9ΔBgl细胞的释放可通过细胞培养上清液的HIV p24ELISA而直接测定。数种浓度的TSG101抗体”E”和对照抗体(相同浓度的兔IgG)用于温育H9ΔBgl细胞。加入抗体48小时后，收集培养上清液用于HIV p24 ELISA。

在80μg/ml时观察到抗体对病毒释放的明显抑制。

多克隆抗-TSG101抗体对HIV感染性的抑制

为确定抗-TSG101抗体是否在病毒释放后对HIV感染具有额外的抑制效果，在抗-TSG101抗体”E”和作为对照的兔IgG(40μg/ml)的存在下来自Jurkat细胞的HIV上清液用于感染MAGI细胞。抗-TSG101抗体显示出对HIV感染性的明显抑制(图8)，表明TSG101在病毒释放后的HIV成熟和/或目标细胞的感染中起作用。

实施例3：抗-TSG101单克隆抗体对HIV感染的效果

抗-TSG101单克隆抗体(mab)的制造

合成由TSG101的C端的19个氨基酸构成的肽(qlralmqkarktaglsdly，SEQ ID NO：3)，与钥孔血蓝蛋白(KLH)配对并用于免疫5只小鼠。来自各小鼠的血清样品通过ELISA进行针对BSA偶联C端TSG101肽的测试。杀死具有最高抗体滴度的小鼠，脾脏与骨髓瘤细胞融合以生成杂交瘤池。PE-8是包含两个产生杂交瘤的杂交瘤池之一，该杂交瘤产生识别免疫肽(SEQ ID NO：3)的mab。池PE-8也称作抗体池PE-8。

抗-TSG101mab抑制野生型和耐药型HIV

简而言之，野生型和耐药型HIV表达载体转染HEK293细胞。转染24小时后，转染的细胞用不同浓度的抗-TSG101抗体和对照抗体处理。用抗体处理后温育24～48小时后，收集细胞培养上清液，并用于感染指示细胞系(MAGI细胞)。感染24～48小时后MAGI细胞进行胞解，并分析其荧光素酶活性。对HIV感染性的抑制通过降低的荧光素酶活性得到确定。对照抗体是：N 19，其是针对TSG101的N端的mAb；以及F-1、F-15和F-19，这些是针对全长TSG101诱导的mAb。

如图16所示，抗体池PE-8针对TSG101蛋白的C端的19个氨基酸残基并且为得自腹水的纯化的IgG形式，其抑制MAGI细胞中的野生型HIV毒株的感染性。相反，均针对TSG101蛋白的其他区域的单克隆抗体N-19和F-1未对HIV感染性显示出抑制效果。

分离PE-8mab池的亚克隆。由各杂交瘤克隆收集上清液，并测试其抗-HIV活性。如图17所示，亚克隆显示出或者落入高抑制组(如H88和G12)或者落入低抑制组(如H10和F8)，这与PE-8池仅包含两个mab的事实有关。在代表性的试验中，由亚克隆H88产生的mab以来自腹水的纯化IgG的形式分离，并测试其抗-HIV活性。如图18所述，H88IgG抑制HIV感染超过50％。

正如在本发明的背景技术部分更为详细的说明，目前对于AIDS的治疗利用了用于HIV的逆转录酶(RT)和蛋白酶的抑制剂。然而，尽管其在降低AIDS患者的病毒载量方面取得了初步成功，由于在新近感染的个体中出现了耐药型HIV毒株因而治疗开始丧失功效。

为确定TSG101是否活跃地参与耐药型HIV的感染过程，生成TSG101的显性负突变体。简而言之，通过将TSG101氨基酸残基1～312(SEQ ID NO：42)亚克隆到表达载体(pLL1)而生成TSG101的显性负突变体的表达载体，其包含CMV启动子和聚A(polyA)信号。

TSG101显性负表达载体或对照载体然后与用于野生型或耐药型HIV的表达载体共转染HEK293细胞。转染24～48小时后收集培养上清液，并用于感染指示细胞系(MAGI细胞)。感染24～48小时后MAGI细胞进行胞解，并分析其荧光素酶活性。对HIV感染性的抑制通过降低的荧光素酶活性得到确定。

如图19所示，TSG101的显性负突变体完全抑制耐RT抑制剂的HIV毒株pL-10R和耐蛋白酶抑制剂的HIV毒株p1617-1的感染性。由此显现，TSG101在耐药型HIV毒株的感染性方面起到关键作用。

如图20和21所证明，抗-TSG101mab池PE-8对耐药型HIV毒株pL-10R和p1617-1的感染性也显示出明显的抑制。相反，均针对全长TSG101诱导的对照mab F-15和F-19对于耐药型HIV毒株的感染性未显示抑制。这些结果表明抗-TSG101mab可提供用于AIDS的新治疗，尤其是用于被耐药型HIV毒株感染的患者。因为抗-TSG101抗体治疗针对宿主蛋白而非病毒蛋白，所以其将有效抑制所有HIV变体导致的感染，只要在病毒感染中涉及与TSG101有关的途径即可。此外，由于治疗不对病毒造成直接选择压力，因而其可减缓耐药性的发展。

抗-TSG101mab抑制人外周血单核细胞(PBMC)中的HIV制造。

抗体抑制人外周血单核细胞(PBMC)的HIV感染

为确定抗-TSG101抗体对HIV感染的抑制的有效性，采用基于人PBMC的HIV感染测定(Pilgrim等，J.Infect Dis.176：924-32，1997和Zhou等，Virol.71：2512-7，1997)。白细胞通过HIV血清反应阴性的捐献者的白细胞分离术获得，PBMC通过Ficoll-Hypaque梯度离心分离。在感染HIV-1之前，PBMC通过在白细胞介素-2(IL-2)细胞培养基(每ml含有10μg植物血球凝集素(PHA)(PHA-P；Difco Laboratories，Detroit，Michigan))中温育而激活。IL-2培养基是每ml含有100U青霉素、100μg链霉素、2mM L-谷酰胺、10％热灭活胎牛血清和20U重组IL-2(Roche Molecular Biochemicals，Indianapolis，Indiana)的RPMI 1640培养基。

用PHA温育整夜后，洗涤细胞，用IL-2连续培养3～5天。所有的细胞培养物均保持在37℃的5％CO2温育器中。

HIV-1分离物由National Institutes of Health(NIH)AIDS Researchand Reference Reagent Program，Division of AIDS，National Institute ofAllergy and Infectious Disease，NIH得到(包括野生型HIV毒株pNL4-3，和耐药型毒株pL-10R和p1617-1)，并通过在PHA和IL-2刺激的PBMC上的2～3个周期的生长而扩充。为制造最终的病毒保存株，在细胞浓度为10⁷/ml时PBMC与未稀释的病毒接触2小时，加入IL-2培养基以使细胞浓度达到10⁶/ml。IL-2培养基每2天进行调换，在HIV p24表达的顶峰过程中，通常是感染后5～10天，收集上清液。通过以1000×g的离心分离和通过0.45μm过滤器的过滤，制得不含细胞的病毒保存株。病毒的等分试样存储在液氮的气相中。通过灵敏的14天终点滴定法使用前述的PHA和IL-2刺激的PBMC确定HIV病毒50％组织培养感染剂量(TCID₅₀)(Mascola等，J.Infect Dis.173：340-8，1996)。

HIV-1感染PHA和IL-2刺激的PBMC在96孔圆底培养板中通过使40μl病毒保存株结合20μl PBMC(1.5×10⁵细胞)而进行。感染的多样性(MOI)对各试验进行最优化。抗-TSG101抗体抑制试验以96孔板形式进行。在该试验中，HIV-1的500～1000TCID₅₀加至各孔，得到约0.01的MOI。PBMC用抗体和病毒温育24小时～15天。该试验允许病毒复制几个回合，因此，通过由2～15天连续收集培养上清液而监测病毒生长动力学(测定为细胞外HIV p24的制造)。HIV p24用商用ELISA试剂盒(Perkin Elmer)测定。使用如Kimpton等和Wei等所述的MAGI分析(Kimpton等，J.Viol 66，2232，1992；Wei等，Antimicro AgentsChemother，46，1896，2002)，通过细胞培养上清液中感染性HIV颗粒的制造的明显抑制确定了抗体对HIV感染的抑制。抗体温育的多个时间点和持续时间将被测定以用于人PBMC的HIV感染的最优抑制。

如图22和23所示，在分别温育3天和7天后抗-TSG101 mab池PE-8(图中标记为C8P)明显抑制人PBMC中的HIV的产生。

实施例4：抗-TSG101 MAB基因的分子克隆

克隆用于编码PE-8抗体池(含有两个mab)中的mab的基因。简而言之，使用由mab前导序列设计的简并引物和靠近两个链的可变区的恒定区，以来自杂交瘤细胞的全部RNA通过RT-PCT扩增mab基因的可变区。用于PE-8池的重链的可变区以正向引物(5’-actagtcgacatgtacttgggactgagctgtgtat-3’(SEQ ID NO：4))和反向引物(5’-cccaagcttccagggrccarkggataracigrtgg-3’(SEQ ID NO：4))进行扩增；而轻链的可变区以正向引物(两个简并引物5’-actagtcgacatggtrtccwcasctcagttccttg-3’(SEQ ID NO：6)和5’-actagtcgacatgakathcycigctcagytyctirg-3’(SEQ ID NO：7)的混合物)和反向引物(5’-cccaagcttactggatggtgggaagatgga-3’(SEQ ID NO：8))进行扩增。Mab 3G1的重链可变区以正向引物(三个简并引物5’-actagtcgacatgatggtgttaagtcttctgtacct-3’(SEQ ID NO：9)、5’-actagtcgacatgaaatgcagctggrtyatsttctt-3’(SEQ ID NO：10)和5’-actagtcgacatggrcagrcttacwtyytcattcct-3’(SEQ ID NO：11)的混合物)和反向引物(5’-cccaagcttccagggrccarkggataracigrtgg-3’(SEQ ID NO：12))进行扩增，而轻链可变区以正向引物(四个简并引物5’-actagtcgacatgaagttgcctgttaggctgttggtgct-3’(SEQ ID NO：13)、5’-actagtcgacatggatttwcargtgcagattwtcagctt-3’(SEQ ID NO：14)、5’-actagtcgacatggtyctyatvtccttgctgttctgg-3’(SEQ ID NO：15)和5’-actagtcgacatggtyctyatvttrctgctgctatgg-3’(SEQ ID NO：16)的混合物)和反向引物(5’-cecaagcttactggatggtgggaagatgga-3’(SEQ ID NO：17))进行扩增。450-bp PCR产物由琼脂糖凝胶纯化，并与TA克隆载体连接用于测序确认。

使用上述方法，确定池PE-8的克隆D1(优势克隆)和克隆3G1的重量及轻链cDNA序列。扩增的cDNA序列和可变区核酸及氨基酸序列总结在表1中。

表1：克隆的mab序列

基因	克隆的cDNA序列	可变区氨基酸序列	可变区核酸序列
				克隆D1重链(VH)	SEQ ID NO：18	SEQ ID NO：19	SEQ ID NO：20
克隆D1轻链(VL)	SEQ ID NO：21	SEQ ID NO：22	SEQ ID NO：23
				克隆3G1重链(VH)	SEQ ID NO：24	SEQ ID NO：25	SEQ ID NO：26
克隆3G1轻链(VL)	SEQ ID NO：27	SEQ ID NO：28	SEQ ID NO：29

图23～26显示了克隆的重链和轻链序列对小鼠IgG重链和轻链序列的序列比对。mab的互补决定区(CDR)列于表2中。

表2：mab D1和3G1的CDR的氨基酸序列

CDR	氨基酸序列
D1VH链CDR2	QIRNKPRNYETFYSDSV(SEQ ID NO：31)
		D1VH链CDR3	SNHRYGV(SEQ ID NO：32)
		D1VL链CDR2	YSSRLQS(SEQ ID NO：34)
D1VL链CDR3	QQSKAL(SEQ ID NO：35)
3G1VH链CDR2	HIWWDNV(SEQ ID NO：37)
		3G1VH链CDR3	ARIEGVNGNYPYF(SEQ ID NO：38)
		3G1VL链CDR2	GTSNLAS(SEQ ID NO：40)
3G1VL链CDR3	SSYPLMT(SEQ ID NO：41)

实施例5：抗-TSG101抗体抑制埃博拉病毒的释放

该实施例显示TSG101与EBOV VP40相互作用，TSG101结合到EBOV VLP中，抗-TSG101抗体抑制EBOV病毒样颗粒(VLP)的释放。

丝状病毒科家族的仅有成员EBOV和MARN具有包括7个基因的负链的不分节的19Kb RNA基因组：核蛋白质(NP)、病毒蛋白VP35、VP40、糖蛋白(GP)、VP30、VP24和RNA聚合酶(L)，编码用于MAV中的七个蛋白和EBOV中的八个蛋白。最近的研究提供了一些关于VP40(326个氨基酸基质(M)蛋白)的细胞定位和作用的见解(Jasenosky等，2001，J.Virol.75(11)：5205-14；Kolesnikova等，2002，J.Virol 76(4)：1825-38)。在被EBOV或MARV感染的细胞中，多数VP40经由疏水性相互作用而与质膜的细胞质表面外周连接。明显地，EBOV和MARVVP40在转染细胞中的表达对于病毒样颗粒(VLP)的制造是必须的，该病毒样颗粒是具有一些与真实病毒类似的形态学性质的非感染性颗粒。VP40指导其自身由感染细胞释放的能力被映射到其他包膜RNA病毒共有的富含脯氨酸的序列基序(Harty等，2000，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97，13871-6)。

作为用于埃博拉病毒的组装和释放的代理模型的病毒样颗粒的产 生

一些病毒样颗粒可通过仅仅表达病毒基质蛋白而产生(Johnson等，2000，Curr.Opin.Struct.Biol.10，229-235)。EBOV和MARV基质蛋白(VP40)已经显示出定位于质膜和病毒包涵体(Kolesnikova等，2002，J.Virol.76，1825-38；Martin-Serrano等，2001，Nature Medicine 7，1313-19)表明VP40可驱动成熟病毒体的组装和释放。然而，仅仅通过表达VP40而企图有效地产生VLP基本上是徒劳的，这以无定形的含VP40的材料的无效释放为标志(Bavari等，2002，J.Exp.Med.195，593-602)。在逆转录病毒中，组装的复合物的定位通过结合N端酰化的Gag蛋白而调节(Campbell等，2001，J.Clin.Virol.22，217-227)，而诸如VP40等丝状病毒蛋白的筏定位似乎是主要通过病毒糖蛋白(GP)调节(Bavari等，2002，J.Exp.Med.195，593-602)。因此，假定丝状病毒VLP的制造可能需要GP和VP40的联合表达。首先检测GP和VP40是否释放进入培养上清液。在仅仅表达GP或VP40的细胞中，两种蛋白均能够在细胞和上清液中被检测到(图9A)。不过，两种蛋白的联合表达导致从细胞的释放大幅度增加(图9A)。理由是如果释放的GP和VP40结合于颗粒中，VP40必须与抗-GP mAb发生免疫共沉淀。如图9B所示，在来自EBOV的GP和VP40转染的细胞上清液的抗-GP免疫沉淀物中易于检测到VP40。从单独表达VP40的细胞的上清液中没有取得VP40，表明免疫共沉淀具有特异性。

由EBOV GP和VP40形成的颗粒显示埃博拉病毒的形态特征

免疫共沉淀试验证明释放进入上清液的GP和VP40以某种形式相互结合。为确定这些复合物是否代表了病毒样颗粒(VLP)，来自培养上清液的微粒物质通过蔗糖梯度超速离心法纯化(Bavari等，2002，J.Exp.Med.195，593-602)，并使用电子显微镜分析。令人感兴趣的是，由GP和VP40联合转染的细胞上清液得到的绝大多数颗粒显示出与丝状病毒极为相似的丝状形态(图10A和10B)(Geisbert等，1995，Virus Res.39，129-150；Murphy等，1978，Ebola and Marburg virus morphology andtaxonomy，1edn(Amsterdam，Elsvier))。相反，由单独转染的细胞得到的物质仅仅包含少量的膜片段，有可能是在细胞死亡时所释放的。VLP具有的直径为50nm～70nm，长度为1μm～2μm(图10)。这与在体外感染后的细胞培养上清液中存在的埃博拉病毒体的长度范围相似(Geisbert等，1995，Virus Res.39，129-150)。VLP的直径较小(与EBOV的80nm相比)可能是由于缺乏核糖核酸蛋白复合物所致。在这些颗粒中所有类型的用于丝状病毒所描述的形态，如枝形、棒形、U形和6字形等(Feldmann等，1996，Adv.Virus Res.47，1-52；Geisbert等，1995，Virus Res.39，129-150)均被观察到(图10)。另外，VLP被覆有5nm～10nm的表面突起物或“尖物”(图10)，EBOV的特征(Feldmann等，1996，Adv.Virus Res.47，1-52；Geisbert等，1995，Virus Res.39，129-150)。用抗埃博拉GP抗体对VLP进行免疫金染色证实了颗粒表面上的尖物为埃博拉病毒糖蛋白的特征(图10)。用于马尔堡病毒的VLP也以类似方式产生。

总之，确立了用于埃博拉病毒的组装和释放的替代法，其可以在没有生物防护实验室的约束下进行。该方法可用于对可抑制埃博拉病毒出芽的药剂的初步筛查。

对于TSG101在埃博拉病毒生命周期中的作用的研究

本发明人进行了一系列生物化学研究以检测空泡蛋白分选(vps)蛋白TSG101与VP40的后域的相互作用在EBOV的组装和释放中的作用。一组C端标记Myc表位的TSG101截断物用于这些研究。293T细胞由全长TSG101和在140、250及300位点截断的突变体连同EBOVVP40一同转染。细胞在48小时后裂解，并用抗-Myc抗体进行免疫沉淀。如图11所示，VP40与除了1-140截断的突变体之外的所有TSG101蛋白共沉淀。没有和该突变体结合则是与显示出残基141-145与HIVGag来源的PTAP肽进行了重要接触的结构数据相吻合(Pornillos等，2002，Nat.Struct.Bio.9，812-7)。令人感兴趣的是，VP40与TSG101的1-300突变体的结合明显强于与全长或1-250突变体的结合(图11)。与全长TSG101的较少的结合可归结为该分子的C端区中存在PTAP基序，其可与TSG101的UEV域形成30分子内或分子间的结合。氨基酸250-300的缺失导致的相互作用的显著减少表明该区域中的残基可能有助于结合病毒基质蛋白。

为证实TSG101和VP40直接地并且通过PTAP基序结合，进行Far Western分析。在细菌中制造埃博拉VP40(1-326)和截断(31-326)的埃博拉VP40蛋白以及HA标记的TSG101的UEV域。这些蛋白用4％～20％的梯度凝胶进行电泳，并电印迹于硝化纤维膜上。封闭之后，印迹用纯化的TSG101蛋白(UEV)温育，洗涤，蛋白蛋白相互作用通过增强的化学发光使用抗TSG101抗体和HRP标记的羊抗兔作为二抗进行检测。如图12所示，TSG101与全长埃博拉VP40相互作用，而不与截断的埃博拉VP40相互作用，证实VP40的N端的PTAP基序在VP40与TSG101(UEV)的相互作用中起到关键作用。由埃博拉VP40抗体开发的同样的蛋白质印迹可检测全长和截断的VP40，显示在印迹上存在两种蛋白。

埃博拉VP40与TSG101的相互作用的表面等离子体共振(SPR)生 物传感器分析

埃博拉VP40与TSG101的相互作用的定量分析使用SPR测定进行。含有来自埃博拉VP40的N端的11个氨基酸残基的生物素标记的肽(Bio-ILPTAPPEYME，SEQ ID NO：43)固定于抗生蛋白链菌素芯片上。仅包含UEV域的纯化的TSG101蛋白以不同浓度(1、2、5、20uM)连续注射。如图13所示，可检测到肽与蛋白之间的中度亲和力的相互作用。基于SPR数据，本发明人计算出该相互作用的Kd值为～2μM。

TSG101在埃博拉VLP和病毒体中的混合

为确定TSG101是否结合到EBOV VLP中，在293T细胞中表达TSG101(1-312，SEQ ID NO：42)和GP或GP+VP40。使用抗-GP抗体由上清液免疫沉淀VLP。TSG101(1-312)的表达导致了VLP释放的显著增加，表明TSG101对于VLP出芽的积极作用(图14A，道4)。另外，当与GP和VP40一同表达时，TSG101(1-312)用抗-GP抗体由培养上清液中免疫共沉淀(图14A，道4)。在不存在VP40的情况下表达时，未发现TSG101与GP结合(图14A，道3)，表明其与GP的结合取决于VLP的形成。全长TSG101也获得了类似的结果。这些数据有力地证明TSG101结合到VLP中，而且支持TSG101在病毒组装和/或出芽时起到关键作用这一假设。为进一步证实该发现，本发明人还分析了灭活的、带纯化的、存在TSG101的EBOV(iEBOV)。通过免疫印迹分析5μg iEBOV中的TSG101的存在。如图6B所示，本发明人发现了在iEBOV中的易于检测到的TSG101的水平，清楚表明TSG101结合到埃博拉病毒中。

多克隆抗-TSG101抗体对埃博拉病病毒释放的效果

生物化学和VLP释放的数据表明TSG101对于埃博拉病毒的外出是至关重要的。因此，测试多克隆抗-TSG101抗体”C”和”E”(对HIV显示抑制效果，参见实施例1和2)对于由埃博拉扎伊尔-95病毒感染的Hela细胞中病毒制造的效果。Hela细胞的单层用病毒以MOI为1时温育50分钟，洗涤，以5μg/ml加入含有抗-TSG101抗体或对照兔抗鼠抗体的介质。24小时后，收集上清液，释放的病毒由前述的空斑试验列举(Bavari等，2002，J.Exp.Med.195，593-602)。如图15所示，这些抗体部分抑制病毒体释放进入Hela细胞上清液。

抗-TSG101mab保护小鼠免受EBOV攻击

抗-TSG101mab也测试其对于小鼠的抗-EBOV活性。简而言之，每组10只的Balb/c小鼠腹膜内注射4mg的纯化IgG形式的抗-TSG101mab池PE-8(如表3和图27中的mab C8所示)、4mg的对照mab或磷酸盐缓冲盐水(PBS)。注射1小时后，小鼠用100pfu/小鼠的剂量的EBOV。如表3和图27所示，注射抗-TSG101mab明显增大EBOV攻击的小鼠的存活率。

表3：抗-TSG101 Mab针对EBOV的保护

抗体	处理	存活体/总数
			PBS对照	第0天腹腔注射	1/10
Mab对照	第0天4mg腹腔注射	1/10
			Mab C8	第0天4mg腹腔注射	5/10

此处引用的所有参考文献的内容均以引用的方式在此引入，并对于所有目的而言达到与将各单独的公报或专利或专利申请的内容用于所有目的而具体地、个别地指出从而以引用的方式引入相同的程度。

正如对本领域技术人员显而易见的，可以对本发明进行许多修饰和变化而不会背离其精神和范围。此处描述的具体的实施方式仅以举例的方式给出，本发明仅由所附权利要求的条款连同由该权利要求所赋权利的等价物的全部范围所限制。

此处陈述或详述的序列，由SEQ ID NO标明

1.

mavsesqlkk mvskykyrdl tvretvnvit lykdlkpvld syvfndgssr elmnltgtip

vpyrgntyni piclwlldty pynppicfvk ptssmtiktg khvdangkiy lpylhewkhp

qsdllgliqv miwfgdepp  vfsrpisasy ppyqatgppn tsympgmpgg ispypsgypp

npsgypgcpy ppggpypatt ssqypsqppv ttvgpsrdgt isedtirasl isavsdklrw

rmkeemdraq aelnalkrte edlkkghqkl eemvtrldqe vaevdkniel lkkkdeelss

alekmenqse nndideviip taplykqiln lyaeenaied tifylgealr rgvidldvfl

khvrllsrkq fqlralmqka rktaglsdly

2.

VRETVNVITLYKDLKPVL

3.

QLRALMQKARKTAGLSDLY

4.

actagtcgacatgtacttgggactgagctgtgtat

5.

cccaagcttccagggrccarkggataracigrtgg

6.

actagtcgacatggtrtccwcasctcagttccttg

7.

actagtcgacatgakgthcycigctcagytyctirg

8.

cccaagcttactggatggtgggaagatgga

9.

actagtcgacatgatggtgttaagtcttctgtacct

10.

actagtcgacatgaaatgcagctggrtyatsttctt

11.

actagtcgacatggrcagrcttacwtyytcattcct

12.

cccaagcttccagggrccarkggataracigrtgg

13.

actagtcgacatgaagttgcctgttaggctgttggtgct

14.

actagtcgacatggatttwcargtgcagattwtcagctt

15.

actagtcgacatggtyctyatvtccttgctgttctg

16.

actagtcgacatggtyctyatvttrctgctgctatgg

17.

cccaagcttactggatggtgggaagatgga

18.

ATGTACTTGGGACTGAGCTGTGTATTCATTGTTTTTCTCTTAAAAGGTGTCCAGTGTGAG

GTGAAGCTGGATGAGACTGGAGGAGGCTTGGTGCAACCTGGGAGGCCCATGAAACTCTCG

TGTGTTGCCTCTGGATTCACTTTTAGTGACTACTGGATGAACTGGGTCCGCCAGTCTCCA

GAGAAGGGACTGGAGTGGGTAGCGCAAATTAGAAACAAACCGTTTAATTATGAAACATTT

TATTCAGATTCTGTGAAAGGCAGATTCACCATCTCAAGAGATGATTCCAAAAGTAGTGTC

TACCTGCAAATGAACAACTTAAGAAATGAGGACATGGGTATCTATTACTGTTCAAATCAT

AGATATGGGGTTGCTTACTGGGGCCAAGGGACTCTGGTCACTGTCTCTGCAGCCAAAACG

ACACCCCCATCCGTTTATCCCTTGGTCCCTGGAAGCTTGGG

19.

EVKLDETGGGLVQPGRPMKLSCVASGFTFSDYWMNWVRQSPEKGLEWVAQIRNKPFNYETFYSDSVKGRFTISRDDSKSSVYLQMNLRNEDMGIYYCSNHRYGVAYWGQGTLVTVSA

20.

GAGGTGAAGCTGGATGAGACTGGAGGAGGCTTGGTGCAACCTGGGAGGCCCATGAAACTCTCG

TGTGTTGCCTCTGGATTCACTTTTAGTGACTACTGGATGAACTGGGTCCGCCAGTCTCCA

GAGAAGGGACTGGAGTGGGTAGCGCAAATTAGAAACAAACCGTTTAATTATGAAACATTT

TATTCAGATTCTGTGAAAGGCAGATTCACCATCTCAAGAGATGATTCCAAAAGTAGTGTC

TACCTGCAAATGAACAACTTAAGAAATGAGGACATGGGTATCTATTACTGTTCAAATCAT

AGATATGGGGTTGCTTACTGGGGCCAAGGGACTCTGGTCACTGTCTCTGCA

21.

CNGTCTGTTGCTCTGTTTTCAGGTACCAGATGTGATATCCAGATGACACAGACTACAACC

TCCCTGTCTGCCTCTCTGGGAGACAGGGTCACCATCAGTTGCAGGGCAAGTCAGGACATT

AACCATTATTTAAGCTGGTTTCAGCAGAAACCAGATGGAACTGTTAAACTCCTGATCTTC

TACTCATCAAGATTACAGTCAGGTGTCCCGTCAAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGAAGA

GATTTTTCTCTCACCATTAGGGCCCTGGAACAAGAAGATATTGCCACTTACTTTTGCCAA

CAAAGTAAAGCGCTCCCGTGGACGTTCGGTGGAGGCACCAAGCTGGAAATCAAACGGGCT

GATGCTGCACCAACTGTATCCATCTTCCCACCATCCAG

22.

DIQMTQTTTSLSASLGDRVTISCRASQDINHYLSWFQQKPDGTVKLLIFYSSRLQSGVPSRFSGSGSGRDFSLTIRALEQEDIATYFCQQSKALPWTFGGGTKLEIKR

23.

GATATCCAGATGACACAGACTACAACC

TCCCTGTCTGCCTCTCTGGGAGACAGGGTCACCATCAGTTGCAGGGCAAGTCAGGACATT

AACCATTATTTAAGCTGGTTTCAGCAGAAACCAGATGGAACTGTTAAACTCCTGATCTTC

TACTCATCAAGATTACAGTCAGGTGTCCCGTCAAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGAAGA

GATTTTTCTCTCACCATTAGGGCCCTGGAACAAGAAGATATTGCCACTTACTTTTGCCAA

CAAAGTAAAGCGCTCCCGTGGACGTTCGGTGGAGGCACCAAGCTGGAAATCAAACGG

24.

GCCCTTACTAGTCGACATGGGCAGGCTTACTTTCTCATTCCTGCTACTGATTGTCCCTGC

ATATGTCCTGTCCCAGGTTACTCTGAAAGAGTCTGGCCCTGGGATATTGCAGCCCTC CCA

GACCCTCAGTCTGACTTGTTCTTTCTCTGGATTCTCACTGAGCACTTTTAATGTGGGTGT

AGGCTGGATTCGTCAGCCATCAGGGAAGGGTCTGGAGTGGCTGGCACACATTTGGTGGGA

TAATGTCAAGCGCTATAACCCAGCCCTGAAGAGCCGACTGACTATCTCCAAGGATAC CTC

CAGCAGCCAGGTATTCCTCGACATCGCCAGTGTGGACACTGCAGATACTGCCACATATTT

TTGTGCTCGAATAGAGGGGGTGAATGGTAACTACCCCTACTTTTCTTACTGGGGCCAAGG

GACTCTGGTCACTGTCTCTGCAGCCAAAACGACACCCCCATCCGTTTATCCCCTGGCCCC

TGGAAGCTTGGG

25.

QVTLKESGPGILQPSQTLSLTCSFSGFSLSTFNVGVGWIRQPSGKGLEWLAHIWWDNVKRYNPALKSRLTISKDTSSSQVFLDIASVDTADTATYFCARIEGVNGNYP YFSYWGQGTLVTVSA

26.

ATATGTCCTGTCCCAGGTTACTCTGAAAGAGTCTGGCCCTGGGATATTGCAGCCCTCCCA

GACCCTCAGTCTGACTTGTTCTTTCTCTGGATTCTCACTGAGCACTTTTAATGTGGGTGT

AGGCTGGATTCGTCAGCCATCAGGGAAGGGTCTGGAGTGGCTGGCACACATTTGGTGGGA

TAATGTCAAGCGCTATAACCCAGCCCTGAAGAGCCGACTGACTATCTCCAAGGATACCTC

CAGCAGCCAGGTATTCCTCGACATCGCCAGTGTGGACACTGCAGATACTGCCACATATTT

TTGTGCTCGAATAGAGGGGGTGAATGGTAACTACCCCTACTTTTCTTACTGGGGCCAAGG

GACTCTGGTCACTGTCTCTGCA

27.

ACTAGTCGACATGGATTTACAGGTGCAGATTATCAGCTTCATGCTAATCAGTGTCACAGT

CATATTGTCCAGTGGAGAAATTGTGGTCACCCAGTCTCCGGCACTCATGGCTGCATCTCC

AGGGGAGAGGGTCACCATCACCTGCAGTGTCAGCTCAAGTATAAATTCCAACAACTTACA

CTGGTACCAACAGAAGTCAGAAGCCTCCCCCAAACCCTGGATTTATGGCACATCCAACCT

GGCTTCTGGAGTCCCTGTTCGCTTCAGTGGCAGTGGATCTGGGACCTCTTTTTCTCTCAC

AGTCAGCAGCATGGAGGCTGAAGATGCTGCCACTTATTACTGTCAACAGTGGAGTAGTTA

CCCACTCATGACGTTCGGTGGGGGCACCAAACTGGAAATCAAGCGGGCTGATGCTGCACC

AACTGTATCCATCTTCCACCATCCAGTAAGCTTGGG

28.

EIVVTQSPALMAASPGERVTITCSVSSSINSNNLHWYQQKSEASPKPWIYGTSNLASGVPVRFSGSGSGTSFSLTVSSMEAEDAATYYCQQWSSYPLMTFGGGTKLEIKR

29.

CATATTGTCCAGTGGAGAAATTGTGGTCACCCAGTCTCCGGCACTCATGGCTGCATCTCC

AGGGGAGAGGGTCACCATCACCTGCAGTGTCAGCTCAAGTATAAATTCCAACAACTTACA

CTGGTACCAACAGAAGTCAGAAGCCTCCCCCAAACCCTGGATTTATGGCACATCCAACCT

GGCTTCTGGAGTCCCTGTTCGCTTCAGTGGCAGTGGATCTGGGACCTCTTTTTCTCTCAC

AGTCAGCAGCATGGAGGCTGAAGATGCTGCCACTTATTACTGTCAACAGTGGAGTAGTTA

CCCACTCATGACGTTCGGTGGGGGCACCAAACTGGAAATCAAGCGG

30.

DYWMN

31.

QIRNKPFNYETFYSDSV

32.

SNHRYGV

33.

RASQDINHYLS

34.

YSSRLQS

35.

QQSKAL

36.

FNVGVG

37.

HIWWDNV

38.

ARIEGVNGNYPYF

39.

RVTITCSVSSSINSNNLH

40.

TSNLAS

41.

SSYPLMT

42.

mavsesqlkk mvskykyrdl tvretvnvit lykdlkpvld syvfndgssr elmnltgtipvpyrgntyni piclwlldty pynppicfvk ptssmtiktg khvdangkiy lpylhewkhpqsdllgliqv miwfgdepp vfsrpisasy ppyqatgppn tsympgmpgg ispypsgyppnpsgypgcpyppggpypatt ssqypsqppv ttvgpsrdgt isedtirasl isavsdklrwrmkeemdraq aelnalkrte edlkkghqkl eemvtrldqe vaevdkniel lkkkdeelssalekmenqse nn

43.

ILPTAPPEYME

Claims (18)

1.一种用于抑制哺乳动物受试对象病毒感染的方法，所述方法包括向所述受试对象提供有效量的抗-TSG101抗体，其中所述抗体与存在于能够被所述病毒感染的所述受试对象的细胞上的TSG101相结合。

2.如权利要求1所述的方法，其中所述抗-TSG101抗体是单克隆抗体。

3.如权利要求2所述的方法，其中所述单克隆抗体选自抗体C、D1、E、3G1和CB8。

4.如权利要求2所述的方法，其中所述单克隆抗体与TSG101的C端区的表位相结合。

5.如权利要求1所述的方法，其中所述抗-TSG101抗体是人源化抗体。

6.如权利要求5所述的方法，其中所述人源化抗体包含至少一个选自SEQ ID NO：30-41的氨基酸序列。

7.如权利要求6所述的方法，其中所述人源化抗体包含SEQ IDNOS：30-35中描述的氨基酸序列。

8.如权利要求6所述的方法，其中所述人源化抗体包含SEQ IDNO：36-41中描述的氨基酸序列。

9.如权利要求1所述的方法，其中所述病毒是人体免疫缺陷病毒、马尔堡病毒、埃博拉病毒、流感病毒、呼吸道合胞病毒、脑炎病毒、劳氏肉瘤病毒、拉沙热病毒、肝炎病毒、爱波斯坦-巴尔病毒、疫苗病毒、疱疹病毒或胡宁病毒。

10.如权利要求1所述的方法，其中所述哺乳动物是非人类，并且所述病毒是伪狂犬病病毒，II型伪狂犬病病毒，猪轮状病毒，猪细小病毒，牛病毒性腹泻病毒，新城疫病毒h，猪流感病毒，猪流感病毒，口蹄疫病毒，猪霍乱病毒，猪流行性感冒病毒，非洲猪热病病毒，牛传染性鼻气管炎病毒，传染性喉气管炎病毒，拉克罗斯病毒，新生犊牛腹泻病毒，委内瑞拉马脑炎病毒，潘塔托若病毒，鼠白血病病毒，小鼠乳癌病毒，马流感病毒或马疱疹病毒，牛呼吸道合胞体病毒，牛副流感病毒，PRRS病毒，猪或牛圆环病毒，猪或牛冠状病毒，猪或牛RSV，猪、牛或禽流感病毒，EIAV或蓝舌病病毒。

11.如权利要求1所述的方法，其中通过将所述抗TSG101抗体施用于所述哺乳动物从而将所述抗体提供给所述哺乳动物。

12.如权利要求1所述的方法，其中通过用TSG101免疫原对所述哺乳动物进行接种从而将所述抗TSG101抗体提供给所述哺乳动物，所述TSG101免疫原在人类中诱发包括产生与TSG101的表位相结合的抗体在内的免疫应答。

13.一种抗TSG101单克隆抗体，所述抗体与由SEQ ID NO：3中描述的氨基酸序列构成的TSG101的C端区相结合。

14.如权利要求13所述的抗-TSG101单克隆抗体，其中所述单克隆抗体包括多肽，所述多肽包含在SEQ ID NO：19、22、25或28中描述的氨基酸序列。

15.一种与TSG101结合的单克隆抗体，所述抗体选自抗体C、D1、E、3G1和CB8。

16.如权利要求14所述的单克隆抗体，其中所述抗体是包含至少一个选自SEQ ID NO：30-41的氨基酸序列的人源化抗体。

17.一种用于抑制哺乳动物病毒感染的药物组合物，所述组合物包含：

1)有效量的抗TSG101抗体；和

2)药学上可接受的载体，

其中所述抗TSG101抗体与TSG101的C端区中的表位相结合，其中TSG101的C端区由SEQ ID NO：3中描述的氨基酸序列构成。

18.一种用于抑制哺乳动物病毒感染的药物组合物，所述组合物包含：

1)有效量的抗TSG101抗体；和

2)药学上可接受的载体，

其中所述抗TSG101抗体选自抗体C、D1、E、3G1和CB8。

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