CN1630527A - 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物 - Google Patents

包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物 Download PDF

Info

Publication number
CN1630527A
CN1630527A CNA038036487A CN03803648A CN1630527A CN 1630527 A CN1630527 A CN 1630527A CN A038036487 A CNA038036487 A CN A038036487A CN 03803648 A CN03803648 A CN 03803648A CN 1630527 A CN1630527 A CN 1630527A
Authority
CN
China
Prior art keywords
hemoglobin
blood
oxygen
blood substitute
substitute product
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CNA038036487A
Other languages
English (en)
Other versions
CN1630527B (zh
Inventor
R·M·温斯洛
K·D·万得格里夫
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sangart Inc
Original Assignee
Sangart Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sangart Inc filed Critical Sangart Inc
Publication of CN1630527A publication Critical patent/CN1630527A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN1630527B publication Critical patent/CN1630527B/zh
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/41Porphyrin- or corrin-ring-containing peptides
    • A61K38/42Haemoglobins; Myoglobins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/06Antianaemics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/08Plasma substitutes; Perfusion solutions; Dialytics or haemodialytics; Drugs for electrolytic or acid-base disorders, e.g. hypovolemic shock
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Abstract

本发明涉及血液制品,更特别涉及包含具有高氧亲和力的修饰氧合血红蛋白的组合物以及制备该组合物的方法。本发明的组合物具有较好的自身氧化稳定性以及优良的携氧特征。

Description

包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物
相关申请的交互参考
本申请要求对2002年1月11日提交的美国专利60/347,741在35U.S.C.§119(e)之下的优先权。
技术领域
本发明涉及血液制品,更特别涉及包含具有高氧亲和力的修饰血红蛋白的组合物以及制备该组合物的方法。
发明背景
循环系统及血红蛋白特性
血液是为组织输送营养并从组织中移去排泄废物的工具。血液由其中悬浮红细胞(RBC或红血球)、白细胞(WBC)和血小板的血浆组成。红细胞约占血液中的细胞的99%,其主要功能是为组织输送氧气并从中移去二氧化碳。
心脏的左心室泵送血液通过循环系统的动脉和较小的微动脉。血液然后进入毛细血管,从中进行营养和细胞废物的大部分交换。(参见例如A.C.Guyton,″Human Physiology And Mechanisms Of Disease″(第三版;W.B.Saunders Co.,Philadelphia,Pa.),228-229页(1982))。此后,血液经过微静脉和静脉而返回心脏的右心房。尽管返回心脏的血液较之从心脏泵出的血液氧气不足,但安静时,返回的血液仍包含约75%的初始氧含量。
红细胞可逆的氧合功能(即输送氧气)是通过蛋白质血红蛋白实现的。哺乳动物血红蛋白的分子量约64,000道尔顿,由约6%血红素和94%珠蛋白组成。其天然形式包含两对亚基(即其为四聚体),各自包含血红素基团和珠蛋白多肽链。血红蛋白在水溶液中处于四聚体(MW64,000)和二聚体(MW 32,000)形式之间的平衡;红细胞外的二聚体由肾脏过早排出(血浆半衰期约2-4小时)。除血红蛋白外,RBC还包含基质(RBC膜),其中包含蛋白质、胆固醇和磷脂。
外源性血液制品
由于医院及其它环境下的血液制品需求,已经针对血液代用品(blood substitute)和血浆扩容剂进行了广泛研究。血液代用品是能够携带并为组织供应氧气的血液制品。血液代用品具有多种用途,包括替代手术过程中和急性出血后的失血,以及创伤性损伤后的复苏过程。血浆扩容剂是输入血管系统、但一般不能携氧的血液代用品。血浆扩容剂可用于例如替代烧伤中的血浆损失、治疗容量不足性休克以及实现血液稀释(例如维持血量正常和降低血粘度)。基本上,血液代用品可用于所述目的或当前给予患者库存血液的任何目的。(参见例如Bonson等人美国专利4,001,401以及Morris等人专利4,061,736)。
当前的人血液供给伴有若干局限性,可以通过使用外源性血液代用品而缓和。举例说明,安全有效的血液代用品的广泛利用将降低对库存(异体)血液的需要。此外,这种血液代用品允许在创伤性损伤后立即输注复苏液,而不考虑交叉配型(血液则需要),从而节省了为缺血性组织再供给氧气的重要时间。而且,可以在手术前给予患者血液代用品,使得可以取出患者自体血液,如果需要,能够在该过程中稍后回输,或在手术后回输。因此,使用外源性血液制品不只保护患者免于接触非自体(异体)血液,也保存自体或异体(库存、交叉配型的)血液以供其最适用途。
当前血液代用品的局限
制备血液代用品(有时称作”携氧血浆扩容剂”)的努力迄今所制备的产品效果差强人意,或其生产费时、费钱或兼而有之。生产这些产品的费用常常很高,以致实际上妨碍了产品的广泛应用,尤其是在那些存在巨大需求的市场中(例如新出现的第三世界经济)。
血液代用品可以分为以下三类:i)基于全氟化碳的乳剂,ii)脂质体包封血红蛋白,iii)修饰的无细胞血红蛋白。如下所述,尽管认为包含修饰的无细胞血红蛋白的产品最有希望,但均未完全成功。基于全氟化合物的组合物溶解氧气,而不与其结合为配基。为了用于生物系统,全氟碳化合物必须与脂类、一般为卵黄磷脂乳化。尽管全氟化碳乳剂制备便宜,但不能在临床耐受剂量下携带足够有效的氧气。相反,已经表明脂质体包封血红蛋白是有效的,但其广泛使用极为昂贵。(一般参见Winslow,Robert M.,″Hemoglobin-based Red Cell Substitutes,″Johns Hopkins University Press,Baltimore(1992))。
当今临床试验的大部分血液代用品产品是基于修饰的血红蛋白。这些产品通常称作基于血红蛋白的氧载体(hemoglobin-based oxygencarriers,HBOC),一般包含化学修饰血红蛋白的均一水溶液,基本不含其它红细胞残存(基质)。虽然人的无基质血红蛋白(stroma-freehaemoglobin,SFH)是制备HBOC最常用的原材料,但也使用其它来源的血红蛋白。例如,血红蛋白可以得自或来源于动物血液(例如牛或猪血红蛋白)、或经分子改造为生产目的血红蛋白产品的细菌、或酵母、或转基因动物或植物。
化学修饰一般为分子内交联、寡聚化和/或聚合物缀合之一,来修饰血红蛋白,使其在循环中的保留时间较之未修饰血红蛋白延长,其氧结合特性则与血液类似。分子内交联使四聚体血红蛋白单位的亚基化学结合在一起,以防止其形成如前所述过早排出的二聚体。(参见例如Rausch等人美国专利5,296,465)。
制备HBOC产品的高额费用大大限制其商业生存力。此外,本发明人发现,已知的HBOC倾向于在微动脉壁而非毛细血管处向组织释放过量的氧气。这可导致HBOC对毛细血管周围的组织供氧不足。尽管HBOC最初的氧气载荷可能相对高于天然红细胞正常达到的量,极低亲和力的突变体除外。
多数情况下,设计HBOC的氧亲和力等于或低于天然血红蛋白。但如上所述,这可能导致组织供氧不足。因此,本发明涉及包含在含水稀释剂中具有高氧亲和力的HBOC的血液代用品。
发明概述
本发明的方法和组合物可用于多种环境下,包括急诊室、手术室、军事冲突、肿瘤医院和兽医诊所。本发明的低毒性和高稳定性允许室温保存,而不损害所述血液代用品的效力。本发明还避开了血型的交叉配型以及相关的实验室检测要求,允许更早、更安全介入患者治疗。本发明的低毒性、长期稳定性以及通用性加在一起,因而表现为一种特别有用的血液代用品。
一方面,本发明提供了包含表面修饰的氧合血红蛋白的血液代用品产品,其中在相同条件下检测时,该表面修饰的氧合血红蛋白的P50低于相同动物来源(即来自相同种类动物)的天然无基质血红蛋白。合适的动物来源包括,例如人、牛、猪、马。
在一个优选实施方案中,该血液代用品产品采取包含表面修饰的氧合血红蛋白和含水稀释剂的组合物的形式。
在一个特定实施方案中,该表面修饰的氧合血红蛋白的P50小于10torr,优选小于7torr。
另一方面,本发明提供了通过在氧合血红蛋白上共价连接一种或多种聚环氧烷(polyalkylene oxides)而生成的血液代用品产品。
在一个特定实施方案中,该血液代用品产品通过共价连接聚环氧烷的聚合物而生成,例如具有化学式H(OCH2CH2)nOH的聚乙二醇(PEG),其中n大于或等于4。优选该产品的高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10。
另一方面,本发明提供了包含PEG-血红蛋白缀合物、在24℃对自身氧化稳定的血液代用品产品,其中高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10,并且该PEG-血红蛋白缀合物的P50小于10torr。
另一方面,本发明提供了制备血液代用品组合物的方法,其包含以下步骤:a)制备高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10的血红蛋白;b)在血红蛋白上共价连接聚环氧烷,形成P50小于10torr的表面修饰的氧合血红蛋白;以及c)将表面修饰的氧合血红蛋白悬浮于合适的稀释剂中。制备血红蛋白优选另外包含从红细胞中分离血红蛋白。
此外,制备血红蛋白的步骤可以另外包含从红细胞中分离血红蛋白,其中血红蛋白的高铁血红蛋白/总血红蛋白之比为0.10或以上,并将该血红蛋白暴露在氧气条件下(即大气中)足够时间,以使高铁血红蛋白/总血红蛋白之比降低到小于0.10。该步骤可在缺少含巯基还原剂的条件下进行。
另一方面,本发明提供了使用血液代用品产品为组织输送氧气的方法,包含将处于含水稀释剂中的产品给予有此需要的哺乳动物。
本发明的其它方面如说明书全文所述。
附图简述
图1描述MalPEG-Hb和SFH的FPLC层析图。
图2描述MalPEG-Hb和SFH的氧平衡曲线。
图3描述两种PEG修饰的血红蛋白(PHP和POE)以及未修饰血红蛋白(SFH)的FPLC洗脱特征。注意PHP和POE的特征在性质上而非数量上相类似。同样注意POE曲线中显然是未修饰血红蛋白的小峰。
图4描述两种PEG修饰的血红蛋白(PHP和POE)的氧平衡曲线。注意两者均没有显著协同性。
图5描述MalPEG-血红蛋白在室温下随时间的氧化速率。从以同样方式保存的两只独立的瓶子中,一式两份测定样品。氧化速率为每小时总血红蛋白的1%,10小时内从5.0到5.5%。
图6描述接受PHP或POE的两组动物的Kaplan-Meier生存分析。
图7描述接受两种PEG修饰血红蛋白(PHP和POE)动物的平均动脉压。反应是即时性的,接受PHP的动物反应较大。但在出血期间,POE动物的血压维持较好。
图8描述MalPEG-Hb于-20℃保存6天、+4℃保存5天以及室温(24℃)保存10小时的各种随时间氧化速率的总结。
图9描述MalPEG-Hb于+4℃保存5天的随时间氧化速率。
图10描述MalPEG-Hb于室温保存10小时的随时间氧化速率。
发明描述
本发明涉及包含高氧亲和力HBOC的血液代用品。对于某些应用,这些组合物能够比氧亲和力类似于天然血红蛋白的血液代用品更有效地为组织输送氧气。
定义
为帮助理解后文公开内容所示本发明,下文定义了许多术语。
术语″血红蛋白″一般是指红细胞内包含的输送氧气的蛋白质。每个血红蛋白分子具有4个亚基,两条α链和两条β链,组成四聚体结构。每个亚基还包含一个血红素基团,其含铁的中心结合氧。因而每个血红蛋白分子可结合4个氧分子。
术语″修饰血红蛋白″包括但不限于通过化学反应改造的血红蛋白,例如分子内或分子间交联、遗传操作、聚合和/或缀合其它化学基团(例如,聚环氧烷诸如聚乙二醇,或其它加成物诸如蛋白质、肽、糖类、合成聚合物等)。本质上,如果血红蛋白的任何结构或功能性质由其天然状态而改变,则是″修饰的″。此处所用术语″血红蛋白″本身是指天然、未修饰的血红蛋白以及修饰的血红蛋白。
术语″表面修饰血红蛋白″用来指已经连接(最通常共价连接)化学基团诸如葡聚糖或聚环氧烷的上述血红蛋白。术语″表面修饰氧合血红蛋白″是指表面修饰时处于″R″状态的血红蛋白。
术语″无基质血红蛋白″是指已经从中去除所有红细胞膜的血红蛋白。
术语″高铁血红蛋白″是指包含三价态铁的血红蛋白,不能起氧载体作用。
术语″MalPEG-Hb″是指已经缀合malemidyl活化的PEG的血红蛋白。这种MalPEG-Hb可由下式进一步指定:
Hb-(S-Y-R-CH2-CH2-[O-CH2-CH2]nO-CH3)m式I
其中Hb是指四聚体血红蛋白,S是表面巯基,Y是Hb和Mal-PEG之间的琥珀酰亚胺基共价连接,R是烷基、酰胺、氨基甲酸酯或苯基(取决于原材料的来源和化学合成方法),[O-CH2-CH2]n是组成PEG聚合物主链的氧化乙烯基单元,其中n定义聚合物长度(例如MW=5000),O-CH3是末端甲氧基。PHP和POE是两种不同的PEG修饰血红蛋白。
术语″全氟化碳″是指包含氟原子的合成的惰性分子,并完全由卤素(Br,F,Cl)和碳原子组成。其乳剂形式比等量的血浆或水能够多溶解很多倍的氧气,因而正开发为血液物质。
术语″血浆扩容剂″是指能够给予受试者以治疗失血的任何溶液。
术语″携氧能力″或简称″氧容量″是指血液代用品携氧的能力,但未必与输送氧的效力相关。既然已知每克血红蛋白结合1.34ml氧气,一般根据血红蛋白浓度计算携氧能力。因此,血红蛋白的g/dl浓度乘以系数1.34,得到ml/dl的氧容量。可由任何已知方法测定血红蛋白浓度,例如使用β-血红蛋白光度计(HemoCue,Inc.,Angelholm,Sweden)。类似地,使用例如燃料池仪器(例如Lex-O2-Con;LexingtonInstruments),通过血红蛋白或血液样品释放的氧气量测定氧含量。
术语″氧亲和力″是指氧载体例如血红蛋白结合分子氧的亲和力。该特征由联系血红蛋白分子氧饱和度(Y轴)与氧分压(X轴)的氧平衡曲线定义。该曲线的位置由氧载体被氧半饱和时的氧分压P50值表示,与氧亲和力逆相关。因此,P50越低,氧亲和力越高。可以利用本领域已知的多种方法测定全血(以及全血组分诸如红细胞和血红蛋白)的氧亲和力。(参见例如Winslow等人J.Biol.Chem.252(7):2331-37(1977))。也可使用可商品化的HEMOXTM Analyzer(TCSScientific Corporation,New Hope,Pennsylvania)测定氧亲和力。(参见例如Vandegriff和Shrager之于″Methods in Enzymology″(Everse等人编著)232:460(1994))。
术语″高渗″表示胶体渗透压(oncotic)高于血液的胶体溶液(>约25-27mmHg)。可利用任何合适技术,例如在Wescor仪器中,测定胶体渗透压。
术语″携氧成分″泛指能够在身体循环系统中携氧并将至少部分氧气输送给组织的物质。在优选实施方案中,该携氧成分是天然或小时血红蛋白,此处也称为″基于血红蛋白的氧载体″或″HBOC″。
术语″血液动力学参数″泛指反映血压、血流和容量状态的测量,包括测量诸如血压、心输出量、右房压和左心室舒张末期压。
术语″类晶体″是指小分子(通常小于10),诸如盐、糖和缓冲液。与胶体不同,晶体不包含任何张力活性(oncotically active)成分,可极快速在循环和细胞间隙之间达到平衡。
术语″胶体″与″类晶体″相反,是指大分子(通常大于10),根据其大小和电荷跨生物膜达到平衡,包括蛋白质诸如白蛋白和明胶,以及淀粉诸如pentastarch和hetastarch。
术语″胶体渗透压″是指胶体为平衡流体跨膜平衡而施加的压力。
术语″对自身氧化稳定″是指HBOC维持低速率自身氧化的能力。如果在24℃10小时之后高铁血红蛋白/总血红蛋白之比增加不超过2%,则认为HBOC在24℃稳定。例如,假设自身氧化速率为0.2h-1,那么如果最初的高铁血红蛋白百分比为5%,若该百分比增加不超过7%,则认为HBOC在室温下10小时是稳定的。
术语″高铁血红蛋白/总血红蛋白之比″是指脱氧血红蛋白与总血红蛋白的比值。
术语″混合物″是指两种或多种物质混合一起,而不发生丧失其各自特性的反应;术语″溶液″是指液体混合物;术语″水溶液″是指包含一些水的溶液,也可能包含一种或多种其他液体物质,与水形成多组分溶液;术语″大约″是指实际值位于一个范围之内,例如指示值的10%
术语″聚乙二醇″是指化学通式H(OCH2CH2)nOH的液体或固体聚合物,其中n大于或等于4。可以使用任何PEG成分,无论取代或未取代。
此处所用其它术语的含义应易为本领域适当技术人员所理解。
氧气输送和消耗的性质
虽然成功使用本发明的组合物和方法并不需要理解氧气输送和消耗的机理,但有关其中某些推断机理的基础知识可能有助于理解后文之论述。一般认为毛细血管是组织主要的氧输送者。但对于静态组织,现有发现表明,在微动脉和毛细血管氧释放之间大致存在均匀分配。也就是说,认为动脉系统中的血红蛋白在微动脉网中输送约三分之一的氧含量,在毛细血管输送三分之一,余者通过静脉系统离开微循环。
动脉本身是氧气利用的场所。例如,动脉壁需要能量以通过抵抗血管阻力收缩,进行血流调节。因此,动脉壁通常是氧气自血液中扩散的重要场所。然而,现有的携氧组合物(例如HBOC)可能在动脉系统中释放过多的氧含量,从而诱导自动调节性的毛细血管灌流减少。因此,具有过多的氧气或过低的氧亲和力实际上可能妨碍血液代用品的输氧效率。
通过测量管壁梯度,可以确定血管壁的耗氧速率,即机械功所需氧气和生化合成所需氧气之合。参见例如Winslow等人之于″Advances in Blood Substitutes″(1997),Birkhauser编著,Boston,MA,167-188页。现有技术可以在多种血管中进行精确氧分压测量。所测梯度与测量区域中组织的氧利用率成正比。该测量表明,血管壁具有基本的氧气利用,随激动(inflammation)和收缩的提高而提高,随松弛而降低。
血管壁梯度与组织氧合成反比。血管收缩提高氧梯度(组织代谢),血管舒张则降低该梯度。高梯度表示血管壁使用的氧气较多,组织可利用的氧气则较少。相信同样现象遍及微循环。
血管收缩和氧亲和力的关系
开发高氧亲和力HBOC的基本原理部分基于过去使用无细胞血红蛋白代替红细胞输血的研究。这些溶液的某些生理效应尚未完全了解。其中可能最有争议的是导致血管收缩的倾向,在动物和人中可能出现高血压(Amberson,W.,″Clinical experience withhemoglobin-saline solutions,″.Science 106:117-117(1947))(Keipert,P.,A.Gonzales,C.Gomez,V.Macdonald,J.Hess和R.Winslow,″Acute changes in systemic blood pressure and urine output ofconscious rats following exchange transfusion withdiaspirin-crosslinked hemoglobin solution,″Transfusion 33:701-708,(1993))。美军开发了用bisdibromosalicyl-延胡索酸α链间交联的人血红蛋白(ααHb)作为原型红细胞代用品,但在证明其剧烈增加肺及全身血管阻力之后,被军队放弃了(Hess,J.,V.Macdonald,A.Murray,V.Coppes和C.Gomez,″Pulmonary and systemic hypertension afterhemoglobin administration,″Blood 78:356A(1991))。该产品的商品化形式也在令人失望的III期临床试验后被放弃了(Winslow,R.M.″aa-Crosslinked hemoglobin:Was failure predicted by preclinicaltesting?″Vox sang 79:1-20(2000)。
无细胞血红蛋白引起血管收缩的最常见的最新解释是,它易于结合内皮细胞来源的松弛因子一氧化氮(NO)。实际上,已经制备了NO亲和力降低的重组血红蛋白,在最高载量的大鼠实验中似乎较少高血压(Doherty,D.H.,M.P.Doyle,S.R.Curry,R.J.Vali,T.J.Fattor,J.S.Olson和D.D.Lemon,″Rate of reaction with nitric oxide determinesthe hypertensive effect of cell-free hemoglobin,″Nature Biotechnology16:672-676(1998))(Lemon,D.D.,D.H.Doherty,S.R.Curry,A.J.Mathews,M.P.Doyle,T.J.Fattor和J.S.Olson,″Control of the nitricoxide-scavenging activity of hemoglobin,″Art Cells,Blood Subs.,andImmob.Biotech 24:378(1996))。但研究提示,NO结合可能并非血红蛋白血管活性的唯一解释。已经发现,某些大的血红蛋白分子,例如由聚乙二醇(PEG)修饰的血红蛋白分子,实际上没有高血压效应,即使其NO结合速率与严重高血压的ααHb相同(Rohlfs,R.J.,E.Bruner,A.Chiu,A.Gonzales,M.L.Gonzales,D.Magde,M.D.Magde,K.D.Vandegriff和R.M.Winslow,″Arterial blood pressure responses tocell-free hemoglobin solutions and the reaction with nitric oxide,″J Biol Chem 273:12128-12134(1998))。此外,发现在出血之前以交换输血给予PEG-血红蛋白时,在防止出血后果方面格外有效(Winslow,R.M.,A.Gonzales,M.Gonzales,M.Magde,M.McCarthy,R.J.Rohlfs和K.D.Vandegriff,″Vascular resistance and the efficacy ofred cell substitutes,″J Appl Physiol 85:993-1003(1998))。
该保护效应与缺少高血压相关,提示血管收缩导致迄今研究的许多基于血红蛋白产品的失望性能。基于上述观察,形成了解释血管收缩的假说,来替代或可能补充NO结合效应。尽管不希望受任何特定理论的限制,但相信血红蛋白血管活性效应的基本成分是血红蛋白在无细胞间隙扩散的反射性反应。在体外毛细血管系统中测试该假说,证明扩散常数降低的PEG-血红蛋白以非常类似于天然红细胞的方式转移O2(McCarthy,M.R.,K.D.Vandegriff和R.M.Winslow,″Therole of facilitated diffusion in oxygen transport by cell-freehemoglobin:Implications for the design of hemoglobin-based oxygencarriers,″Biophysical Chemistry 92:103-117(2001))。由于血红蛋白到血管壁饱和度的改变是血红蛋白自身扩散梯度的决定因素,预期氧亲和力在血红蛋白于血浆空间的易化扩散中起作用。
由于释放O2到微动脉血管壁将引起血管收缩,无细胞血红蛋白的氧亲和力可能还起调节血管紧张度的作用(Lindbom,L.,R.Tuma和K.Arfors,″Influence of oxygen on perfusion capillary density andcapillary red cell velocity in rabbit skeletal muscle,″Microvasc Res 19:197-208(1980))。在仓鼠皮肤皱褶中,该血管的PO2为20-40Torr,而正常红细胞氧平衡曲线最陡(Intaglietta,M.,P.Johnson和R.Winslow,″Microvascular and tissue oxygen distribution,″Cardiovasc Res 32:632-643(1996))。因而从理论观点来看,为了防止无细胞血红蛋白在微动脉调节性血管中释放O2,其P50低于红细胞(即较高的O2亲和力)可能是重要的。
携氧成分
在优选实施方案中,氧载体(即携氧成分)是基于血红蛋白的氧载体或HBOC。血红蛋白可能是天然(未修饰)的;后来利用化学反应进行修饰,例如分子内或分子间交联、聚合或加成化学基团(例如聚环氧烷或其它加成物);或可能经重组改造的。人α-和β-珠蛋白基因均已克隆并测序。Liebhaber等人P.N.A.S.77:7054-7058(1980);Marotta等人J.Biol.Chem.353:5040-5053(1977)(β-珠蛋白cDNA)。此外,如今使用定位诱变已经产生了许多重组制备的修饰血红蛋白,尽管这些″突变″血红蛋白种类据报道具有并不理想的高氧亲和力。参见例如Nagai等人P.N.A.S.,82:7252-7255(1985)。
本发明不受血红蛋白来源的限制。例如,血红蛋白可能来源于动物和人。某些应用优选的血红蛋白来源是人、牛和猪。此外,可能利用其它方法产生血红蛋白,包括化学合成和重组技术。血红蛋白可能以游离形式加入到血液制品组合物中,或可能包封到囊中,例如合成颗粒、微球或脂质体。本发明优选的携氧成分应该无基质、无内毒素。许多授权的美国专利公开了携氧成分的典型例子,包括Hsia的美国专利4,857,636;Walder的美国专利4,600,531,Morris等人的美国专利4,061,736;Mazur的美国专利3,925,344;Tye的美国专利4,529,719;Scannon的美国专利4,473,496;Bocci等人的美国专利4,584,130;Kluger等人的美国专利5,250,665;Hoffman等人的美国专利5,028,588以及Sehgal等人的美国专利4,826,811和5,194,590。
除前述血红蛋白来源以外,最近发现马血红蛋白作为本发明组合物中的携氧成分具有某些优点。一个优点在于,容易获得从中纯化马血红蛋白的商品化数量的马血。另一意想不到的优点在于,马血红蛋白具有可能增强其在本发明血液代用品中用处的化学特性。
先前的报告已经指出,马血红蛋白比人血红蛋白更快速自身氧化为高铁血红蛋白,使其作为血液代用品成分不太理想。参见例如J.G.McLean和I.M.Lewis,Research in Vet.Sci.,19:259-262(1975)。为了将自身氧化减到最小,McLean和Lewis在红细胞裂解后使用还原剂谷胱甘肽。然而,用于制备本发明组合物的血红蛋白,不论来源于人或马,均布需要在红细胞裂之后使用还原剂来防止自身氧化。
最近报道马血红蛋白的氧亲和力不同于人血红蛋白。参见例如M.Mellegrini等人Eur.J.Biochem.,268:3313-3320(2001)。这种差异阻碍了选择马血红蛋白来制备模拟人血红蛋白的血液代用品。但在引入本发明的组合物时,未观察到含人和马血红蛋白缀合物的氧亲和力之间的显著差异(小于10%)。
因此,与这些表面上不理想的特性相反,在本发明的组合物中,马血红蛋白等效、若不然则优于人血红蛋白。
对于本发明中的使用而言,在相同条件下测量时,HBOC的氧亲和力高于全血,优选是全血的两倍,或者高于无基质血红蛋白(SFH)。在大多数情况下,这意味着血液代用品中的HBOC的P50将小于10,更优选小于7。游离态SFH的P50约15torr,而全血的P50约28torr。先前提议提高氧亲和力从而降低P50,可能增强对组织输氧,虽然暗示低于SFH的P50不可接受。参见Winslow等人之于″Advances inBlood Substitutes″(1997),Birkhauser编著,Boston,MA,167页以及美国专利6,054,427。该提议与广泛秉承的看法相悖,即,用作血液代用品的修饰血红蛋白应该氧亲和力较低,并且P50应该接近全血。因此,由于吡哆醛化(pyridoxylated)的血红蛋白相比SFH更易于释放氧,许多研究者使用磷酸吡哆醛(pyridoxyl phosphate)将SFH的P50从10提高到约20-22。
许多不同的科学方法可以制备高氧亲和力的HBOC(即P50低于SFH)。例如,研究已经鉴定了在氧亲和力中起作用的氨基酸残基,例如B-93半胱氨酸,因而如今可以轻易进行定位诱变来操纵氧亲和力到达理想水平。参见例如美国专利5,661,124。美国专利6,054,427讨论了其它多种方法。
血红蛋白相关毒性
已知血红蛋白从亚铁(Fe2+)到铁(Fe3+)或高铁血红蛋白形式可逆变化时,表现自身氧化。发生这种情况时,分子氧以过氧化阴离子(O2-)的形式从氧合血红蛋白中解离。这还导致血红素-珠蛋白复合物去稳定,最后珠蛋白链变性。相信氧自由基形成以及蛋白质变性在HBOC的体内毒性中起作用(Vandegriff,K.D.,Blood Substitutes,Physiological Basis of Efficacy,105-130页,Winslow等人编著,Birkhauser,Boston,MA(1995))。
大多数HBOC的氧亲和力和血红蛋白氧化具有负相关,即,氧亲和力越高,自身氧化速率越低。然而,不同的血红蛋白修饰对氧亲和力和自身氧化速率的作用不一定可以预测。此外,氧亲和力和自身氧化速率之间的最佳平衡不甚明了。
本发明部分涉及意外发现,即,此处所述PEG-Hb缀合物的自身氧化速率极低。测量氧化速率时,数值应该尽可能低(即,每小时总血红蛋白的0.2%、更优选每小时总血红蛋白的0.1%,在室温下至少3小时、更优选至少10小时)。本发明的HBOC因而在给药和/或室温保存期间保持稳定。
携氧成分的修饰
在一个优选实施方案中,该携氧成分是修饰的血红蛋白。优选的血红蛋白修饰是″表面修饰″,即,在血红蛋白分子暴露的氨基酸侧链上共价结合化学基团。
主要为提高血红蛋白的分子大小而进行修饰,大多通过共价结合聚合部分,例如合成的聚合物、糖类、蛋白质等。通常优选合成的聚合物。
适当的合成亲水性聚合物包括,尤其是聚环氧烷,例如聚环氧乙烷(polyethylene oxide)((CH2CH2O)n)、聚环氧丙烷(polypropyleneoxide)((CH(CH3)CH2O)n)或聚环氧乙烷/聚环氧丙烷共聚物((CH2CH2O)n-(CH(CH3)CH2O)n)。适于实践本发明的其它直、支链以及任意取代的合成聚合物为医学领域所公知。
因其药物可接受性以及商业可利用性,最常见的结合血红蛋白的化学基团是聚乙二醇(PEG)。PEG是化学通式为H(OCH2CH2)nOH的聚合物,其中n一般大于或等于4。PEG表述通常后接一个对应其平均分子量的数字。例如,PEG-200的平均分子量200,可能的分子量范围190-210。PEG可商品化获得多种不同形式,很多情况下为预活化并预备缀合蛋白质。
本发明优选实施方案的重要方面在于,表面修饰在血红蛋白处于氧合或″R″态时发生。在缀合之前,将血红蛋白与大气平衡(或者可以进行活性氧合),这很容易实现。通过对氧合血红蛋白进行缀合,所得血红蛋白的氧亲和力增强了。由于许多研究者描述在缀合前脱氧以减少氧亲和力,通常视这一步骤为禁忌。参见例如美国专利5,234.903。
虽然表面修饰血红蛋白的性能在许多方面与血红蛋白和修饰剂(例如PEG)之间的连接无关,但相信较刚性的接头,例如不饱和的脂肪族或芳香族C1-C6接头取代物,与具有较柔性接头并因而具有可变形联结物的取代物相比,可能加强了缀合物的制备和/或特征。
加成到血红蛋白分子的PEG数目可能因PEG的大小而不同。但所得修饰血红蛋白的分子大小应该大到足以避免被肾脏清除,以达到理想的半衰期。Blumenstein等人确定,该大小达到分子量84,000以上。(Blumenstein等人之于″Blood Substitutes and PlasmaExpanders,″Alan R.Liss编著,New York,New York,205-212页(1978))。其中作者将血红蛋白缀合到不同分子量的葡聚糖。据其报道,血红蛋白(分子量64,000)和葡聚糖(分子量20,000)的缀合物″被缓慢从循环中清除、由肾脏清除几可忽略″,而提高分子量84,000以上并未改变清除曲线。因而如Blumenstein等人所确定,优选HBOC的分子量至少84,000。
在本发明的一个实施方案中,该HBOC是″MalPEG″,代表缀合了malemidyl活化PEG的血红蛋白。这种MalPEG可由下式进一步指定:
Hb-(S-Y-R-CH2-CH2-[O-CH2-CH2]nO-CH3)m式I
其中Hb是指四聚体血红蛋白,S是表面巯基,Y是Hb和Mal-PEG之间的succinimido共价连接,R是烷基、酰胺、氨基甲酸酯或苯基(取决于原材料的来源和化学合成方法),[O-CH2-CH2]n是组成PEG聚合物主链的氧化乙烯基单元,其中n定义聚合物长度(例如MW=5000),O-CH3是末端甲氧基。
类晶体(Crystalloid)成分
在本发明一个实施方案中,该血液代用品可能还包含类晶体。该类晶体成分可以是任何类晶体,在血液代用品组合物中优选能够达到摩尔渗透压浓度大于800mOsm/l,即,使该血液代用品″高渗″。血液代用品中合适类晶体及其浓度的例子包括,例如3%NaCl、7%NaCl、7.5%NaCl和处于6%葡聚糖中的7.5%NaCl。更优选血液代用品的摩尔渗透压浓度为800-2400mOsm/l。先前报道了在另外包含胶体(即,比葡聚糖扩散差的分子)的摩尔渗透压浓度300-800mOsm/l的溶液中重组制备的血红蛋白的使用。参见例如美国专利5,661,124。然而,该专利没有教导制备摩尔渗透压浓度超过800的血液代用品,并提议血红蛋白浓度应为6-12g/dl。与此相反,本发明组合物的携氧效率允许使用较低浓度的血红蛋白,例如高于6g/dl或甚而高于4g/dl。当血液代用品另外包含类晶体并高渗时,本发明组合物可能提供比其它包括胶体成分的血液代用品改进的功能,可快速恢复血液动力学参数。小体积高渗类晶体输注(例如1-10ml/kg)提供了明显好处,在受控出血中可快速持久恢复可接受的血液动力学参数。(参见例如Przybelski,R.J.,E.K.Daily和M.L.Birnbaum,″The pressor effectof hemoglobin--good or bad?″之于Winslow,R.M.,K.D.Vandegriff和M.Intaglietta编著.Advances in Blood Substitutes.IndustrialOpportunities and Medical Challenges.Boston,Birkhuser(1997),71-85)。但高渗类晶体溶液单独不能充分恢复大脑输氧。参见D.Prough等人″Effects of hypertonic saline versus Ringer′s solution oncerebral oxygen transport during resuscitation from hemorrhagicshock,″J.Neurosurg.64:627-32(1986)。
组成
将氧载体及其它可选赋形剂与合适的稀释剂混合,配制本发明的血液代用品。尽管根据应用、特别是基于预期的给药后稀释,氧载体在稀释剂中的浓度可能改变,在优选实施方案中,由于本发明组合物的其它特征提供了增强的氧气输送及治疗效果,通常浓度不必高于6g/dl,更优选0.1-4g/dl。
合适的稀释剂(即,供静脉内注射的药物可接受的稀释剂)包括,尤其是蛋白质、糖蛋白、多糖及其它胶体。这并非意味着这些实施方案受任何特定稀释剂的限制。因此,这意味着该稀释剂涵盖白蛋白、其它胶体或其它非携氧成分的无细胞水溶液,该水溶液的粘度至少2.5cP。在某些优选实施方案中,该水溶液的粘度为2.5-4cP。本发明也涵盖粘度为6cP或更高的溶液。
应用
A.临床应用
本发明及其实施方案将用于临床上指示快速恢复O2水平、或提高O2水平、或更换O2水平的应用中。参见例如美国专利6,054,427。本发明的方法和组合物适用的多种环境包括以下:
创伤.急性全血损失可导致胞间和细胞内空间的液体转移,以替换丧失的血容量,同时从低优先级的器官包括皮肤和消化道分流血液。从器官分流血液降低、有时消除了这些器官的O2水平,导致渐进性组织坏死。期望快速恢复O2水平,也许造成明显较好地抢救这类急性失血患者的组织。
局部缺血.在局部缺血中,一个特定器官(或多个器官)氧气″饥饿″。器官的小部分,称为梗塞,因缺O2开始死亡。快速恢复O2水平对于阻止重要组织的梗塞形成极为重要。导致局部缺血的条件包括心脏病发作、中风或脑血管创伤。
血液稀释:在此临床应用中,需要血液代用品来替换手术前取出的血液。期望取出患者血液,以防止手术后需要异体输血。在此应用中,给予血液代用品以替换(或代替)取出的自体血液的O2水平。如此允许使用取出的自体血液供手术期间或之后的必要输血。一种需要术前取血的这类手术为心肺分流术。
败血症性休克.在急性败血症中,尽管大输液治疗并利用血管收缩剂治疗,某些患者可能变为高血压。在此情况下,一氧化氮(NO)的过量生成导致血压降低。由于血红蛋白以类似O2的亲和力结合NO,血红蛋白因而近乎是治疗这些患者的理想药剂。
癌症.向肿瘤块含氧低的内核输送O2,可提高其放化疗敏感性。由于肿瘤的微血管系统不同于其它组织,藉由提高O2水平促进敏感性需要在低氧核心内卸载O2。换言之,P50应该很低,防止过早卸载O2、提高O2水平,以确保使肿瘤对随后的放化疗最为敏感。
慢性贫血.在这些患者中,损失或代谢的血红蛋白的置换受到损害或完全丧失。血液代用品可有效置换或提高患者下降的O2水平。
镰状细胞贫血.在镰状细胞贫血中,患者因镰状形成过程中的O2水平损失以及极高的红细胞转换率而衰弱。镰状形成过程是PO2的函数,PO2越低,镰状形成率越高。理想的血液代用品应使患者在镰状形成危险期的O2水平恢复到正常范围内。
心麻痹.在某些心脏手术过程中,利用适当的电解质溶液并降低患者温度使心脏停止。降低稳度将显著降低P50,可能阻止在任何普通生理条件下的O2卸载。替换O2水平有可能减少这些过程中的组织损害和坏死。
缺氧.士兵、高海拔居民以及极限条件下的世界级运动员因肺从空气中提取O2受限,而可能忍受降低的O2水平。受限的O2提取进一步限制了O2输送。血液代用品可以置换或提高这些个体的O2水平。
器官灌注.在器官离体维护期间,维持O2含量对于保持结构和细胞完整性并最大限度减少梗塞形成极为重要。血液代用品将维持这类器官的O2需求。
细胞培养.该需求实际上与器官灌注相同,只是O2消耗率可能较高。
血细胞生成.血液代用品作为血红素和铁的来源,用于在血细胞生成期间合成新的血红蛋白。
B.兽医应用
本发明也可用于非人类。本发明的方法和组合物可用于家养动物,例如家畜和宠物(例如狗、猫、马、鸟、爬行类),以及在水族馆、动物园、海洋馆及其它动物收容设施中的其它动物。本发明适用于遭受因伤失血、溶血性贫血等的家养及野生动物的紧急治疗。例如,本发明的实施方案可用于下列情况下,例如马感染性贫血、猫感染性贫血、化学及其它物理因素所致溶血性贫血、细菌感染、因子IV断裂、脾功能亢进和脾肿大、家禽出血综合症、再生不良性贫血、再生障碍性贫血、自发性免疫溶血症、缺铁症、异体免疫性溶血性贫血、微血管病性溶血、寄生物感染等。本发明特别适用于难以找到稀有动物和/或外来品种的供血者的领域。
实施例
实施例1
制备无基质血红蛋白
步骤1-获得过期红细胞
从商业来源获得过期的压积红细胞,例如San Diego血库(the SanDiego Blood Bank)或美国红十字会(the American Red Cross)。优选收到过期材料至采集之日起不超过45天。压积RBC(pRBC)保存于4±2℃,直至进一步处理(1-7天)。在使用前筛查所有单位的病毒感染并进行核酸检测。
步骤2-混合过期血液
在清洁设施的无菌容器中混合压积红细胞。记录压积红细胞的体积,使用可商品化获得的联合血氧定量计或其它技术认可的方法测定血红蛋白浓度。
步骤3-白细胞去除(leukodepletion)
使用膜过滤进行白细胞去除(即去除白细胞)。进行开始及最后的白细胞计数,以监控该处理的效率。
步骤4-细胞分离及细胞洗涤
利用6体积0.9%氯化钠洗涤红细胞。该过程在4±2℃进行。利用白蛋白的分光光度计测定分析细胞洗涤,验证去除血浆成分。
步骤5-红细胞裂解并去除细胞碎片
使用6体积水在4±2℃搅拌至少4小时或过夜,裂解洗涤的红细胞。在冷处加工裂解物,以纯化血红蛋白。这通过处理裂解物通过0.16-μm膜而实现。将纯化的血红蛋白收集到无菌去热源的容器中。该过程的所有步骤在4±2℃进行。
步骤6-病毒去除
通过4±2℃超滤进行病毒去除。
步骤7-浓缩及溶剂交换
使用10-kD膜将从裂解并超滤纯化的血红蛋白交换到林格氏乳酸盐(Ringer′s lactate,RL)或磷酸缓冲盐(PBS,pH7.4)中。然后使用相同的膜浓缩血红蛋白到终浓度1.1-1.5mM(按四聚体)。10-12体积的RL或PBS用于溶剂交换。该过程在4±2℃进行。将在RL中制备的溶液的pH调整到7.0-7.6。
步骤8-无菌过滤
处于PBS或林格氏乳酸盐(RL)中的血红蛋白通过0.45-或0.2-μm一次性滤器无菌过滤,在进行化学修饰反应之前于4±2℃保存。
纯化血红蛋白的其它方法为本领域公知。此外,通常不需要使用还原剂(例如谷胱甘肽或另一含巯基还原剂)来防止细胞裂解后自身氧化。
实施例2
修饰无基质血红蛋白
步骤1-硫醇化(thiolation)
使用对血红蛋白10倍摩尔过量的iminothiolane于4±2℃连续搅拌4小时,进行硫醇化。
反应条件:
●位于RL(pH7.0-7.5)或PBS(pH7.4)中的1mM血红蛋白(四聚体)
●位于RL(pH7.0-7.5)或PBS(pH7.4)中的10mMiminothiolane
优化1∶10 SFH∶iminothiolane的比值以及反应时间,使PEG化巯基数目最高、产物不均一性最低。
步骤2-硫醇化血红蛋白的PEG化
根据起始四聚体血红蛋白浓度,使用20倍摩尔过量的Mal-PEG(带有烷基或苯基接头)对硫醇化血红蛋白进行PEG化。首先使血红蛋白与大气平衡,以氧化血红蛋白。于4±2℃连续搅拌2小时,进行反应。
反应条件:
●位于RL或PBS(pH7.4)中的1mM硫醇化血红蛋白
●位于RL或PBS(pH7.4)中的20mM Mal-PEG
步骤3-去除未反应试剂
PEG化Hb通过70-kD膜处理,去除过量的未反应试剂或血红蛋白。进行20体积的过滤,以确保去除未反应试剂,通过大小排阻层析在540nm和280nm处进行监控。将蛋白质浓度稀释到4g/dl。使用1N NaOH调整pH至7.3±0.3。
步骤3-无菌过滤
4±2℃使用0.2-μm无菌一次性滤膜于无菌过滤MalPEG-Hb终产物并收集到无菌去热源的容器中。
步骤4-配制MalPEG-Hb
将PEG化Hb稀释到4g/dl RL,pH调整到7.4±0.2。
步骤5-无菌填装
在层流罩超净台中将最终的血液代用品组合物无菌过滤(0.2μm),按重量分装到无菌玻璃瓶中,利用带有波纹密封圈的无菌胶塞密封,-80℃保存直至使用。
实施例3
MalPEG-Hb的生理化学分析
生理化学分析方法
MalPEG-Hb血液代用品的均一性和分子大小由液相层析(LiquidChromatography,LC)表征。使用分析型LC评价PEG化血红蛋白的均一性以及未反应Mal-PEG的去除程度。使用540nm吸光度评价血红蛋白,通过峰位置分辩PEG化血红蛋白和未反应血红蛋白。使用280nm吸光度分辩PEG化血红蛋白和游离Mal-PEG,因MalPEG中的环结构而在紫外(ultraviolet,UV)光谱有吸收。
使用快速扫描二极管阵列分光光度计(Milton Roy 2000或HewlettPackard Model 8453)收集Soret和可见区光谱,利用多成分分析进行血红蛋白浓度和高铁血红蛋白百分比分析(Vandegriff,K.D.和R.E.,Shrager.Evaluation of oxygen equilibrium binding to hemoglobin byrapid-scanning spcetrophotometry and singular value decomposition.Meth.Enzymol.232:460-485(1994)。
使用联合血氧定量计测定MalPEG-Hb浓度和高铁血红蛋白百分比。使用流变仪测定粘度。使用胶体渗透压计测定胶体渗透压。根据氧平衡曲线测定氧结合参数。
优选的血液代用品组合物规范(specification)列于下表1:
表1
测试                                规范
血红蛋白浓度(g/dl)                  4.2±0.2
高铁血红蛋白(%)                    <10
pH                                  7.4±0.4
电导率(mS/cm)                       12±4
内毒素(EU/mL)                       <0.5
FPLC保留时间(分钟)                  43±3
FPLC半高峰宽(分钟)                  6±2
粘度(cPs)                           2.5±1.0
COP(mmHg)                           50±20
P50(Torr)                           6±2
Hill系数(在P50处)                   1.2±0.5
无菌度                              通过
MalPEG-Hb上的PEG化位点数目
对于表面修饰而言,式I中数字″m″是定义联结血红蛋白表面的PEG聚合物数目的参数。
Hb-(S-Y-R-CH2-CH2-[O-CH2-CH2]n-O-CH3)m      式I
为测定该数字,使用二硫吡啶(dithiopyridine)比色测定方法(Ampulski,R.,V.Ayers和S.Morell.Determination of the reactivesulfhydryl groups in heme proteins with 4,4′-dipyridinesdisulde.Biocheim.Biophys.Acta 163-169,1969)测定硫醇化前后以及Hb PEG化之后的Hb四聚体表面可利用的巯基数。二硫吡啶反应证实,人血红蛋白包含两个固有的反应性巯基,位于β93Cys残基处。SFH按1∶10SFH∶iminothiolane之比硫醇化后,根据二硫吡啶反应,反应性巯基的数目从2增加到6个巯基。PEG化反应后,反应性巯基的数目下降到1.3。这表示MalPEG-Hb存在4-5个PEG化位点。
MalPEG-Hb相比SFH的大小排阻层析分析
进行FPLC,分析最终MalPEG-Hb产物。MalPEG-Hb相比未修饰SFH的典型层析谱如图1所示。SFH的保留时间约57分钟。MalPEG-Hb的保留时间约44分钟。
MalPEG-Hb的物理和化学特征
MalPEG-Hb相比血液和未修饰人血红蛋白(SFH)的物理性质如下表2所示。
表2
                            血液           SFH            MalPEG-Hb
P50(Torr)                   28             15             5
N50(Hill系数)               2.9            2.9            1.2
波尔效应(ΔLogP50/ΔpH)     --             -0.46          -0.20
粘度(cPs)1                 4.0            0.9            2.5
COP(mmHg)1                 27             16             50
MW(kD)2                    N/A            65             90
分子半径(nm)                4000           3.22          9
1于全血15g/dl、血红蛋白溶液约4g/dl测定
2由COP测量值及FPLC确定
氧亲和力
如前所述测量血红蛋白-氧气平衡结合曲线(Vandegriff,K.D.,R.K.Rohlfs,M.D.Magde和R M.Winslow.Hemoglobinoxygenequilibrium cures measured during enzymatic oxygen consumption.Anal.Biochein.256:107-116,1998)。MalPEG-Hb显示高氧亲和力(P50=5mmHg)和低协同性(n50=1.0-1.4)。图2显示比较无基质血红蛋白(SFH)和MalPEG-Hb溶液的典型曲线。
粘度
MalPEG-Hb的溶液性质是出于聚乙二醇链与溶剂水分子之间的强烈相互作用。这被认为是血液代用品的重要性质,原因有二:1)较高粘度降低了PEG-Hb分子和气体配基分子通过溶剂扩散的扩散常数,2)较高粘度提高了溶液流经内皮细胞壁的剪切应力,引起血管舒张剂释放,以抵消血管收缩。如表2所示,MalPEG-Hb溶液的粘度是2.5cPs。
胶体渗透压(Colloidal Osmotic Pressure,COP)
测量包含未修饰、分子内和分子间交联、或PEG表面缀合血红蛋白的血红蛋白溶液的COP,确定其大分子溶液特性(Vandegriff,K.D.,R.J.Rohlfs和R.M.Wislow.Colloid osmotic effects ofhemoglobin-based oxygen carriers.In Winslow,R.M.,K.D.Vandegriff和M.Intaglia,eds,Advances in Blood Substitutes IndustrialOpportunities and Medical Challenges.Boston,Birkhauser,pp.207-232(1997).四聚体血红蛋白显示出近乎理想的溶液行为;而缀合PEG的血红蛋白具有明显较高的胶体渗透活性,并显示溶液非理想状态(Vandegriff,K.D.,M.Mcarthy,R.J.Rohls和R.M.Winslow.Colloidosmotic properties of modified hemoglobins:chemically cross-linkedversus polyethylene glycol surface-conjugated.Biophys.Chem.69:23-30(1997)。如表2所示,MalPEG-Hb溶液的COP是50。
稳定性
通过检查自身氧化速率来测定包含PEG表面缀合血红蛋白的血红蛋白溶液的稳定性。如图5所示,室温下MalPEG-Hb的自身氧化10小时内从约5%MetHb提高到5.5%MetHb。MalPEG-Hb的自身氧化速率是每小时0.05%。
实施例4
不同P50的修饰血红蛋白的比较
使用由缀合聚氧乙烯(POE)而修饰的血红蛋白研究氧亲和力在无细胞血红蛋白功效中的作用,在研究这类物质作为血液代用品的功效时特别引人关注。这种修饰首先由Iwashita及合作者描述(Ajisaka,K.和Y.Iwashita,″Modification of human hemoglobin with polyethyleneglycol:A new candidate for blood substitute.BBRC 97:1076-1081(1980))(Iwasaki,K.,K.Ajisaka和Y.Iwashita,″Modification ofhuman hemoglobin with polyoxyethylene glycol:A new candidate forblood substitutes,″Biochem Biophys Res Comm 97:1076-1981(1980)),保有高血压效应,已发现可用于治疗败血症性休克。作为该产品制备的一部分,将血红蛋白与吡哆醛-5-磷酸(pyridoxal-5-phosphate,PLP)反应,以提高其P50,接近人血的P50值。因此有可能制备两种POE-修饰的血红蛋白溶液,一种经过、另一种未经过PLP的预先修饰。除P50外,这些溶液各方面均相同,并在严重出血(60%血量)的大鼠中测试其维持生理功能的能力。
材料和方法:
血液代用品
如实施例1所述,制备经或未经PLP修饰以形成″PHP″的修饰血红蛋白溶液。
动物
本研究使用雄性Sprague-Dawley大鼠。研究中监控收缩压和舒张压;分别最大和最小压力,平均动脉压(mean arterial pressure,MAP)为舒张压+1/3(收缩压-舒张压)。根据每一压力周期的最大正相性斜率计算dP/dt。平均每分钟数据的心率、收缩压、舒张压、平均动脉压、脉搏压和dP/dt的平均值。
血气、血液学及乳酸测量
使用100μl肝素化血液样品在血气分析仪中测量动脉pH、PCO2和PO2。使用乳酸分析仪测量动脉血中乳酸。使用前述算法(Winslow,R.,″A model for red cell O2 uptake,″.IntJClin Monit Comput 2:81-93(1985)),从PCO2、pH和血红蛋白浓度计算总CO2、标准碳酸氢盐(HCO3 -)和剩余碱(BE)。使用可商品化获得的设备,分别测量总血红蛋白及血浆血红蛋白。使用约50μl动脉血样品,通过微量离心测量血细胞比容。
交换输血
按约0.5ml/分钟的速率进行交换输血,至溶液总体积等于50%估计血容量。假定血容量为65ml/kg。使用蠕动泵,以便按与输注测试物质完全相同的速率取出血液。测试溶液在输注前于水浴加温到37℃,并于输注期间保温。
出血
我们使用的出血方法是基于Hannon和Wade的模式(Harmon,J.,C.Wade,C.Bossone,M.Hunt,R.Coppes和J.Loveday,″Blood gasand acid-base status of conscious pigs subjected to fixed-volumehemorrhage and resuscitated with hypertonic sali dextran,″CircShock 32:19-29(1990))。出血开始于完成交换输血后约3分钟,按0.5ml/分钟的速率从股动脉泵出动脉血,60分钟后取出60%血容量。每10分钟取血样(0.3ml)供血液学及血气分析。
统计及生存分析
对于生存分析,动物于开始出血后观察最少120分钟。将数据分组为10分钟间隔,计算每一间隔的累积存活比例及其标准误差。
结果
溶液性质
所用溶液如下表3所述。总血红蛋白浓度、粘度和胶体渗透压(COP)相当。PHP的P50(19.7Torr)高于POE(12.2Torr)。两种溶液的协同性(Hill参数n)相当。
图3给出了两种溶液的FPLC图。尽管分别有对应未修饰血红蛋白的小峰,但大部分血红蛋白出现在一组不同的峰中,明显早于未修饰血红蛋白(SFH)而洗脱。两种PEG修饰血红蛋白的图形在性质上相似。
表3
表1.测试溶液的性质
                    PHP               POE
Hb,g/dl            8.0               8.3
粘度(cP)            2.8               2.8
COP,mmHg           62.7              56.5
*a1(×10-1)      1.368             2.228
*a2(×10-3)      9.680             21.070
*a3(×10-5)      0.752             46.500
*a4(×10-5)      1.537             8.766
P50                 19.7              12.2
n50                 1.48              1.49
*在37℃,pH7.4测量氧亲和力
POE的氧亲和力显著高于PHP(图4)。但两种产品均未显示显著协同性。
动物实验
表4总结了所有实验。接受PHP(18)的动物数量多于POE(11),PHP动物的平均体重明显高于POE组(P<0.001)。但假定总血容量为65ml/kg计算出血程度,补偿了该体重差异。其后的交换输血及输血量因而也不同。尽管如此,PHP动物的平均死亡时间(93分钟)比POE动物(116分钟)显著缩短。该差异在统计学上显著(P<0.02)。如果动物在观察期(出血后120分钟)存活,则认为它对于Kaplan-Meier生存分析而言是″检查过的(censored)″(图5)。
表4
                WT      *血容量   出血量    出血量   死亡时间
                (g)     (ml)      (ml)      (%)     (分钟)
PHP     n       18      18        18        18        18
        PHP     291     18.89     11.10     58.79     93
        sd      24      1.59      0.90      0.35      29
POE     n       11      11        11        11        11
        POE     334     21.74     12.78     58.77     116
        sd      41      2.65      1.60      0.39      12
        P       0.001   0.001     0.001     0.915     0.020
*根据65ml/kg总血容量
血液学及酸碱调节
基线、ET后及出血后(60分钟)测量值如表5所示。POE动物的平均血细胞比容略高于PHP动物,但交换输血后两组动物的数值相同。出血期末,POE动物的平均血细胞比容又略高于PHP动物。也发现总血红蛋白值类似的微小差异,在所有取样点POE动物均略高。两组动物的血浆血红蛋白没有不同,但POE动物在交换期后明显较高。
POE动物的动脉乳酸浓度在研究的所有阶段均明显高于PHP动物。两组动物的剩余碱数值没有显著差异,尽管提示PHP的数值低于POE组。此外,PHP动物的基线值差异(10.24mEq/l)高于POE动物(7.01mEq/l)。
表5
                  n     PHP      sem      n     POE      sem     P
HCT     基线      17    39.80    0.57     10    43.15    0.23    0.0032
        ET后      17    17.89    0.43     10    19.25    0.62    03568
        60分钟    15    13.29    0.47     10    15.85    0.14    0.0015
HB      基线      17    13.59    0.22     10    15.08    0.17    0.0057
        ET后      17    8.70     0.18     10    9.74     0.07    0.0007
        60分钟    15    6.34     0.21     10    7.38     0.06    0.0016
                  n     PHP      sem      n     POE      sem     P
PLHB    基线      16    0.00     0.00     10    0.00     0.00
        ET后      16    2.86     0.07     10    2.99     0.09    0.6785
        60分钟    15    1.93     0.07     10    2.47     0.02    0.0001
LACT    基线      9     0.70     0.06     7     2.68     0.16    0.0001
        ET后      9     1.59     0.10     7     4.21     0.24    0.0004
        60分钟    9     10.62    0.89     7     17.27    1.18    0.0360
BE      基线      17    6.22     1.28     9     5.41     0.08    0.6530
        ET后      17    6.20     1.41     5     5.60     0.13    0.8101
        60分钟    15    -4.02    1.60     6     -1.60    0.53    0.4678
交换输血期间的平均动脉压
交换输血期间的平均动脉压如图6所示。两组动物的基线平均动脉压没有差别。但两组动物输注PEG-血红蛋白的血压响应显著不同。PHP动物初期MAP的上升高于POE动物,并于输注期间持续不变。相比之下,POE动物的MAP在输注后回到基线。
出血开始时,PHP动物的MAP立即下降,POE组则延迟。此外,POE动物的MAP在整个出血期间及之外均保持基线值或其附近,而PHP动物的MAP从未回到基线值。特别是PHP动物,当动物退出PHP组时,由增加标准误差所指征的数据散布随时间增加。
讨论:
在本研究中,我们研究了两种匹配的修饰血红蛋白溶液(″血液代用品″)保护大鼠防御严重出血(60%血容量)的能力。为测试该能力,动物首先接受利用两种测试溶液之一进行的50%(血容量)交换输血。溶液本身只有氧亲和力不同,FPLC图、渗透压、粘度和浓度极其相配。其它研究试图证明特定变量对生理结果的影响,由于非常相当,未能对这些溶液进行比较。参见例如Sakai,H.,Hara,H.,Tsai,A.G.,Tsuchida,E.,Johnson,P.C.和Intaglietta,M.,″Changes in resistancevessels during hemorrhagic shock and resuscitation in conscioushamster model,″Am J.Physiol 276(45),H563-H571.(1999),Sakai,H.,H.Mara,M.Yuasa,A.Tsai,S.Takeoka,E.Tsuchida和M.Intaglietta,″Molecular dimensions of Hb-based O2 carriers determineconstriction of resistance arteries and hypertension,″Am JPhysiol 279:H908-H915,(2000)。这些实验描述了首例这类紧密相配的溶液只能比较一个显著差异的变量,P50。
接受POE的这组动物具有轻微而显著较高的血细胞比容、总血红蛋白和血浆血红蛋白水平。但这些差异不太可能解释实验的结果或判读。如图4所示,显然两种溶液以不同方式影响血压。输注时,对血压的影响一定是所输注溶液而非受体动物的函数。PHP动物的血压反应比POE动物大并且持久。
正如过去一些研究者所认为,动物存活显然与血红蛋白溶液的血压增高效应无关,因为POE动物的存活好于PHP动物(并提示较少的碱缺失),其中血压效应较低并只是暂时性的。(参见Przybelski,R.J.,E.K.Daily和M.L.Birnbaum,″The pressor effect of hemoglobin--good or bad?″之于Winslow,R.M.,K.D.Vandegriff和M.Intaglietta编著.Advances in Blood Substitutes.Industrial Opportunities andMedical Challenges.Boston,Birkhuser(1997),71-85。
综合考虑,这些结果支持以下假说,即较低的P50有利于使用无细胞血红蛋白作为氧载体。该假说基于两个概念。首先,无细胞血红蛋白的扩散梯度是氧气来源、红细胞与血管壁之间的氧合血红蛋白梯度的函数。该梯度反之依赖于氧平衡曲线的形状和位置(McCarthy,M.R.,K.D.Vandegriff和R.M.Winslow,″The role of facilitateddiffusion in oxygen transport by cell-free hemoglobin:Implicationsfor the design of hemoglobin-based oxygen carriers,″BiophysicalChemistry 92:103-117(2001))。其次,这种考虑导致我们假说的第二个概念性基础,即高氧亲和力(低P50)有效″隐藏″循环中O2,直至载体血红蛋白分子到达PO2极低的循环区域,例如缺血性或含氧量低的组织。
实施例5
MalPEG-Hb的稳定性
本研究的目的在于测定MalPEG-Hb在模拟I期临床试验样品的保存和处理条件期间的稳定性。评价三个处理阶段的稳定性。阶段I代表从生产设施冰冻保存转移到运至临床场所期间的温度条件下(冰冻保存研究)。阶段II代表MalPEG-Hb融化24小时到+4℃,然后+4℃保存5天(冷藏研究)。阶段III代表MalPEG-Hb融化24小时到+4℃,然后在给予患者之前室温保存MalPEG-Hb几天(室温研究)。
实验方法
稳定性由MalPEG-Hb测试物质的氧化速率确定。使用联合血氧定量计(IL Co-oximetry 682)测量样品中高铁血红蛋白百分比。按照程序,每一时间点一式两份进行测量。
利用温度计或温度记录仪监控温度。在-21.0±3.0℃温度范围内进行冰冻保存研究。在+4.0±0.2℃温度范围内进行冷藏研究。在+21.0±1.0℃温度范围内进行室温保存研究。
记录每一所示时间点的温度、总血红蛋白及高铁血红蛋白百分比。在冰冻及冷藏研究中,于零时(完全融化)、1小时后、然后5天中每24小时进行测量。在室温研究中,于零时(完全融化)、其后10小时中每1小时进行测量。
结果
如图8所示,MalPEG-Hb显示在-20℃保存6天期间的高铁血红蛋白百分比不变。类似地,如图9所示,MalPEG-Hb显示在+4℃保存5天期间的高铁血红蛋白百分比不变。如图10所示,室温保存期间,MalPEG-Hb显示在10小时期间的高铁血红蛋白升高不及1%。
***********************
为给予本领域一般技术人员有关如何制备和使用该组合物优选实施方案的完整公开内容和说明书而提供上述实施例,并非意在限制本发明人视作其发明的范围。上述供实施本发明的方式的改变为本领域技术人员显而易见,意在以下权利要求书的范围之内。本说明书引用的所有出版物、专利以及专利申请在此引入以供参考,如同逐一明确指明其中每一出版物、专利以及专利申请在此引入以供参考。

Claims (13)

1.包含表面修饰的氧合血红蛋白的血液代用品产品,其中在相同条件下测定时,该表面修饰的氧合血红蛋白的P50低于相同动物来源的天然无基质血红蛋白。
2.用作血液代用品的组合物,其包含处于含水稀释剂中的权利要求1的血液代用品产品。
3.权利要求1的血液代用品产品,其中该表面修饰的氧合血红蛋白的P50小于10torr。
4.权利要求1的血液代用品产品,其中该表面修饰的氧合血红蛋白的P50小于7torr。
5.权利要求1的血液代用品产品,通过在氧合血红蛋白上共价连接一种或多种聚环氧烷而生成。
6.权利要求5的血液代用品产品,其中该聚环氧烷是依据通式H(OCH2CH2)nOH的聚乙二醇,其中n大于或等于4。
7.权利要求5的血液代用品产品,其高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10。
8.包含PEG-血红蛋白缀合物、在24℃对自身氧化稳定的血液代用品产品,其中高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10,并且该PEG-血红蛋白缀合物的P50小于10torr。
9.制备血液代用品产品的方法,包含以下步骤:
a)通过使血红蛋白氧合,制备高铁血红蛋白/总血红蛋白之比小于0.10的血红蛋白;
b)在血红蛋白上共价连接至少一种聚环氧烷,形成P50小于10torr的表面修饰的氧合血红蛋白;以及
c)将表面修饰的氧合血红蛋白悬浮于含水稀释剂中。
10.权利要求9的方法,其中步骤a)另外包含从红细胞中分离血红蛋白,其中所述血红蛋白的高铁血红蛋白/总血红蛋白之比为0.10或以上,并将血红蛋白暴露在大气中足够时间,以使高铁血红蛋白/总血红蛋白之比降低到小于0.10。
11.权利要求10的方法,其中步骤a)在缺少含巯基还原剂的条件下进行。
12.使用血液代用品产品为组织输送氧气的方法,其包含给予有此需要的哺乳动物权利要求2的组合物。
13.权利要求1的血液代用品产品,其中该血红蛋白是马血红蛋白。
CN038036487A 2002-01-11 2003-01-10 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物 Expired - Fee Related CN1630527B (zh)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US34774102P 2002-01-11 2002-01-11
US60/347,741 2002-01-11
US10/114,400 2002-04-01
US10/114,400 US20030153491A1 (en) 2002-01-11 2002-04-01 Methods and compositions for oxygen transport comprising a high oxygen affinity modified hemoglobin
PCT/US2003/000696 WO2003059363A1 (en) 2002-01-11 2003-01-10 Methods and compositions for oxygen transport comprising a high oyzgen affinity

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2013100910214A Division CN103203013A (zh) 2002-01-11 2003-01-10 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN1630527A true CN1630527A (zh) 2005-06-22
CN1630527B CN1630527B (zh) 2013-04-24

Family

ID=26812138

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN038036487A Expired - Fee Related CN1630527B (zh) 2002-01-11 2003-01-10 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物
CN2013100910214A Pending CN103203013A (zh) 2002-01-11 2003-01-10 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2013100910214A Pending CN103203013A (zh) 2002-01-11 2003-01-10 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物

Country Status (15)

Country Link
US (3) US20030153491A1 (zh)
EP (1) EP1465643B1 (zh)
JP (2) JP5149480B2 (zh)
KR (1) KR100964604B1 (zh)
CN (2) CN1630527B (zh)
AT (1) ATE382358T1 (zh)
AU (1) AU2003207504B2 (zh)
BR (1) BR0306846A (zh)
CA (1) CA2473662C (zh)
DE (1) DE60318388T2 (zh)
DK (1) DK1465643T3 (zh)
ES (1) ES2299686T3 (zh)
MX (1) MXPA04006733A (zh)
PT (1) PT1465643E (zh)
WO (1) WO2003059363A1 (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102859364A (zh) * 2010-02-25 2013-01-02 桑格特公司 通过减少反应物比例制备聚乙二醇-血红蛋白缀合物的方法

Families Citing this family (49)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2001238595A1 (en) 2000-02-22 2001-09-03 Shearwater Corporation N-maleimidyl polymer derivatives
US20050164915A1 (en) * 2002-04-01 2005-07-28 Sangart, Inc. Compositions for oxygen transport comprising a high oxygen affinity modified hemoglobin
AU2003299700B2 (en) * 2002-12-23 2009-03-26 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University Modified hemoglobin and methods of making same
MXPA05007151A (es) * 2002-12-31 2005-09-21 Nektar Therapeutics Al Corp Polimeros terminados en maleimida hidroliticamente estables.
US7432331B2 (en) 2002-12-31 2008-10-07 Nektar Therapeutics Al, Corporation Hydrolytically stable maleimide-terminated polymers
WO2005056636A2 (en) 2003-12-03 2005-06-23 Nektar Therapeutics Al, Corporation Method of preparing maleimide functionalized polymers
WO2006026739A2 (en) * 2004-08-31 2006-03-09 Sangart, Inc. Methods to enhance hemodynamic stability using oxygen carrying compositions
US8455437B2 (en) * 2005-02-04 2013-06-04 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Method to predict and prevent oxygen-induced inflammatory tissue injury
AU2006220548B2 (en) * 2005-03-07 2011-04-21 Sangart, Inc. Composition and methods for delivering carbon monoxide (CO) and nitric ozide (NO) CO to tissue using heme proteins as carriers
US20090215670A1 (en) * 2005-05-11 2009-08-27 Acharya Seetharama A Site specific pegylated hemoglobin, method of preparing same, and uses thereof
US8071546B2 (en) * 2005-06-10 2011-12-06 La Jolla Bioengineering Institute Uses of pegylated albumin
WO2006135740A1 (en) * 2005-06-10 2006-12-21 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University Pegylated hemoglobin and albumin and uses thereof
ES2341285T3 (es) * 2005-07-19 2010-06-17 Nektar Therapeutics Metodo para preparar maleimidas polimericas.
WO2007139791A2 (en) 2006-05-22 2007-12-06 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for the delivery of oxygen
US7504377B2 (en) * 2006-10-23 2009-03-17 Ikor, Inc. Nitric oxide-blocked cross-linked tetrameric hemoglobin
CN101158676B (zh) * 2006-12-31 2011-12-14 重庆大学 一种评价血液及其代用品携氧、释氧功能的分析方法及装置
EP2200652B1 (en) * 2007-09-27 2018-03-21 Children's Medical Center Corporation Microbubbles and methods for oxygen delivery
US10172950B2 (en) 2009-06-09 2019-01-08 Prolong Pharmaceuticals, LLC Hemoglobin compositions
US10172949B2 (en) 2009-06-09 2019-01-08 Prolong Pharmaceuticals, LLC Hemoglobin compositions
RS56496B1 (sr) 2009-06-09 2018-01-31 Prolong Pharmaceuticals Llc Kompozicije hemoglobina
US9114109B2 (en) * 2009-06-16 2015-08-25 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Five-coordinate neuroglobin and use thereof as a blood substitute
US8273857B2 (en) * 2009-09-22 2012-09-25 Jen-Chang Hsia Compositions and methods of use of neurovascular protective multifunctional polynitroxylated pegylated carboxy hemoglobins for transfusion and critical care medicine
WO2011056799A1 (en) * 2009-11-05 2011-05-12 Sangart, Inc. Methods for preparing polyethylene glycol maleimide using n-(2-hydroxyethyl) maleimide as a starting material
US7989593B1 (en) 2010-05-27 2011-08-02 Bing Lou Wong Method for the preparation of a high-temperature stable oxygen-carrier-containing pharmaceutical composition and the use thereof
US8048856B1 (en) 2010-06-23 2011-11-01 Billion King, Ltd. Treatment methods using a heat stable oxygen carrier-containing pharmaceutical composition
US7932356B1 (en) 2010-06-23 2011-04-26 Bing Lou Wong Method for the preparation of a heat stable oxygen carrier-containing pharmaceutical composition
WO2012094679A2 (en) * 2011-01-07 2012-07-12 Vindico NanoBio Technology Inc. Compositions and methods for delivery of high-affinity oxygen binding agents to tumors
US20120196270A1 (en) * 2011-02-02 2012-08-02 Sangart, Inc. Methods for preserving an organ for transplantation using a hemoglobin-carbon monoxide complex
EP2682407B1 (en) 2011-03-01 2016-09-14 Chuo University Hemoglobin-albumin complex, and artificial plasma expander and artificial oxygen carrier, each containing same
US8084581B1 (en) 2011-04-29 2011-12-27 Bing Lou Wong Method for removing unmodified hemoglobin from cross-linked hemoglobin solutions including polymeric hemoglobin with a high temperature short time heat treatment apparatus
US20130052232A1 (en) 2011-08-31 2013-02-28 Bing Lou Wong Method for the preparation of a heat stable oxygen carrier-containing composition facilating beta-beta cross-linking
CN104159591A (zh) * 2011-11-07 2014-11-19 通用医疗公司 红细胞的处理
CA2908236C (en) 2012-03-29 2021-10-26 Schindler, William Diaspirin crosslinked pegylated hemoglobin
AU2013243875B2 (en) 2012-04-03 2017-11-30 Schindler, William Succinimide-activated nitroxyl compounds and methods for the use thereof for nitroxylation of proteins
WO2013151682A1 (en) 2012-04-06 2013-10-10 Children's Medical Center Corporation Process for forming microbubbles with high oxygen content and uses thereof
EP3922643A1 (en) 2013-01-07 2021-12-15 Omniox, Inc. Polymeric forms of h-nox proteins
EP2968597B1 (en) * 2013-03-15 2021-08-18 Schindler, William Polyalkylene oxide valerate hemoglobin conjugates
WO2014144364A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Children's Medical Center Corporation Gas-filled stabilized particles and methods of use
US10456452B2 (en) 2015-07-02 2019-10-29 Poseida Therapeutics, Inc. Compositions and methods for improved encapsulation of functional proteins in polymeric vesicles
CN105497894B (zh) * 2015-12-21 2019-01-04 中国科学院深圳先进技术研究院 用于肿瘤光动力治疗的血红蛋白-光敏剂试剂及其应用
WO2017143104A1 (en) 2016-02-16 2017-08-24 Omniox, Inc. Modulation hypoxia associated with stroke
ES2865481T3 (es) 2016-04-29 2021-10-15 Poseida Therapeutics Inc Micelas basadas en poli(histidina) para la complejación y el aporte de proteínas y ácidos nucleicos
JP7016124B2 (ja) 2016-07-06 2022-02-04 学校法人 中央大学 虚血性疾患の治療剤
ES2651717B1 (es) * 2016-07-26 2018-11-16 Lara OLLER DUQUE Solución acuosa cristaloide isotónica
WO2018160752A1 (en) 2017-02-28 2018-09-07 Children's Medical Center Corporation Stimuli-responsive particles encapsulating a gas and methods of use
EP3836911A1 (en) 2018-08-15 2021-06-23 Omniox, Inc. H-nox proteins for treating cardiovascular and pulmonary conditions
CN111499732B (zh) * 2020-04-22 2022-05-13 中国科学院过程工程研究所 一种基于双重化学修饰的血红蛋白氧载体及其制备方法和应用
WO2021261712A1 (en) * 2020-06-26 2021-12-30 Sunbio, Inc. Hemoglobin derivative co-conjugated with fatty acid-linked peg and alkoxy peg as a blood substitute
CN114617957B (zh) * 2022-03-10 2024-01-16 中国人民解放军军事科学院军事医学研究院 羟乙基淀粉血红蛋白偶联物及其制备方法与应用

Family Cites Families (99)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3507146A (en) * 1968-02-09 1970-04-21 Webb James E Method and system for respiration analysis
US3956259A (en) * 1973-01-30 1976-05-11 Baxter Laboratories, Inc. Fractionation of blood using block copolymer of ethylene oxide and polyoxypropylene polymer to recover fraction suitable for organ perfusate
US3925344A (en) * 1973-04-11 1975-12-09 Community Blood Council Plasma protein substitute
US4179337A (en) * 1973-07-20 1979-12-18 Davis Frank F Non-immunogenic polypeptides
DE2449885C3 (de) * 1974-10-21 1980-04-30 Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt Verfahren zur Herstellung von chemisch modifizierten haltbaren Hämoglobinpräparaten sowie das nach diesem Verfahren hergestellte modifizierte Hämoglobinpräparat
US4061736A (en) * 1975-02-02 1977-12-06 Alza Corporation Pharmaceutically acceptable intramolecularly cross-linked, stromal-free hemoglobin
US4001200A (en) * 1975-02-27 1977-01-04 Alza Corporation Novel polymerized, cross-linked, stromal-free hemoglobin
US4001401A (en) * 1975-02-02 1977-01-04 Alza Corporation Blood substitute and blood plasma expander comprising polyhemoglobin
US4053590A (en) * 1975-02-27 1977-10-11 Alza Corporation Compositions of matter comprising macromolecular hemoglobin
CA1055932A (en) * 1975-10-22 1979-06-05 Hematech Inc. Blood substitute based on hemoglobin
GB1578776A (en) * 1976-06-10 1980-11-12 Univ Illinois Hemoglobin liposome and method of making the same
JPS5329908A (en) * 1976-08-27 1978-03-20 Green Cross Corp:The Immobilized haptoglobin preparation
US4209300A (en) * 1978-09-25 1980-06-24 The United States Of America As Represented By The Department Of Health, Education And Welfare Hemoglobin-oxygen equilibrium curve analyzer
JPS6023084B2 (ja) * 1979-07-11 1985-06-05 味の素株式会社 代用血液
JPS5716815A (en) * 1980-07-02 1982-01-28 Ajinomoto Co Inc Oxygen transporting agent for artificial blood
US4401652A (en) * 1980-12-31 1983-08-30 Allied Corporation Process for the preparation of stroma-free hemoglobin solutions
JPS57206622A (en) * 1981-06-10 1982-12-18 Ajinomoto Co Inc Blood substitute
US4532130A (en) * 1981-07-06 1985-07-30 Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center Preparation of synthetic frythrocytes
DE3130770C2 (de) * 1981-08-04 1986-06-19 Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt Verfahren zur Gewinnung von hepatitissicheren, sterilen, pyrogenfreien und stromafreien Hämoglobinlösungen
US4473496A (en) * 1981-09-14 1984-09-25 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Intramolecularly crosslinked hemoglobin
DE3144705C2 (de) * 1981-11-11 1983-12-08 Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt Verfahren zur Herstellung eines lagerstabilen, vernetzten Hämoglobinpräparates mit hoher Sauerstoff-Transportkapazität, sowie das nach diesem Verfahren hergestellte Hämoglobinpräparat
CH650647A5 (de) * 1982-12-10 1985-08-15 Knorr Naehrmittel Ag Lagerfaehiges, zu einer dessert-mousse aufschlagbares produkt und verfahren zu dessen herstellung.
US4529719A (en) * 1983-05-04 1985-07-16 Tye Ross W Modified crosslinked stroma-free tetrameric hemoglobin
US4473494A (en) * 1983-05-04 1984-09-25 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Preparation of stroma-free, non-heme protein-free hemoglobin
GB8328917D0 (en) * 1983-10-28 1983-11-30 Fisons Plc Blood substitute
US4831012A (en) * 1984-03-23 1989-05-16 Baxter International Inc. Purified hemoglobin solutions and method for making same
US5281579A (en) * 1984-03-23 1994-01-25 Baxter International Inc. Purified virus-free hemoglobin solutions and method for making same
DE3412144A1 (de) * 1984-03-31 1985-10-10 Biotest Pharma GmbH, 6000 Frankfurt Verfahren zur herstellung hochgereinigter, stromafreier, hepatitissicherer human- und tierhaemoglobinloesungen
US4738952A (en) * 1984-04-27 1988-04-19 Synthetic Blood Corporation Substitute for human blood and a method of making the same
US4600531A (en) * 1984-06-27 1986-07-15 University Of Iowa Research Foundation Production of alpha-alpha cross-linked hemoglobins in high yield
US4598064A (en) * 1984-06-27 1986-07-01 University Of Iowa Research Foundation Alpha-alpha cross-linked hemoglobins
US4584130A (en) 1985-03-29 1986-04-22 University Of Maryland Intramolecularly cross-linked hemoglobin and method of preparation
EP0206448B1 (en) * 1985-06-19 1990-11-14 Ajinomoto Co., Inc. Hemoglobin combined with a poly(alkylene oxide)
US4987154A (en) * 1986-01-14 1991-01-22 Alliance Pharmaceutical Corp. Biocompatible, stable and concentrated fluorocarbon emulsions for contrast enhancement and oxygen transport in internal animal use
US5077036A (en) * 1986-01-14 1991-12-31 Alliance Pharmaceutical Corp. Biocompatible stable fluorocarbon emulsions for contrast enhancement and oxygen transport comprising 40-125% wt./volume fluorocarbon combined with a phospholipid
US5080885A (en) * 1986-01-14 1992-01-14 Alliance Pharmaceutical Corp. Brominated perfluorocarbon emulsions for internal animal use for contrast enhancement and oxygen transport
US5684050A (en) * 1986-01-24 1997-11-04 Hemagen/Pfc Stable emulsions of highly fluorinated organic compounds
US4826811A (en) * 1986-06-20 1989-05-02 Northfield Laboratories, Inc. Acellular red blood cell substitute
US5194590A (en) * 1986-06-20 1993-03-16 Northfield Laboratories, Inc. Acellular red blood cell substitute
US5464814A (en) * 1986-06-20 1995-11-07 Northfield Laboratories, Inc. Acellular red blood cell substitute
DE3620873A1 (de) * 1986-06-21 1987-12-23 Rau Guenter Vorrichtung zur bestimmung des partialdruckes von in einem fluid geloesten gasen und gasgemischen
US4911929A (en) * 1986-08-29 1990-03-27 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Blood substitute comprising liposome-encapsulated hemoglobin
DE3636590A1 (de) * 1986-10-28 1988-05-26 Braun Melsungen Ag Blutersatzmittel
CA1312009C (en) * 1986-11-10 1992-12-29 Carl W. Rausch Extra pure semi-synthetic blood substitute
US5084558A (en) * 1987-10-13 1992-01-28 Biopure Corporation Extra pure semi-synthetic blood substitute
GB8710598D0 (en) * 1987-05-05 1987-06-10 Star Medical Diagnostics Ltd Hemoglobin based blood substitute
US5449759A (en) * 1987-05-16 1995-09-12 Somatogen, Inc. Hemoglobins with intersubunit desulfide bonds
GB8711614D0 (en) * 1987-05-16 1987-06-24 Medical Res Council Proteins
US4861867A (en) * 1988-02-03 1989-08-29 Baxter International, Inc. Purified hemoglobin solutions and method for making same
US4900780A (en) * 1988-05-25 1990-02-13 Masonic Medical Research Laboratory Acellular resuscitative fluid
CA1338244C (en) * 1988-08-17 1996-04-09 Xiang-Fu Wu Purification of hemoglobin and methemoglobin by bioselective elution
US5061688A (en) * 1988-08-19 1991-10-29 Illinois Institute Of Technology Hemoglobin multiple emulsion
US5128452A (en) * 1989-04-19 1992-07-07 Baxter International Inc. Process for the production of crosslinked hemoglobin in the presence of sodium tripolyphosphate
US5599907A (en) * 1989-05-10 1997-02-04 Somatogen, Inc. Production and use of multimeric hemoglobins
US5545727A (en) * 1989-05-10 1996-08-13 Somatogen, Inc. DNA encoding fused di-alpha globins and production of pseudotetrameric hemoglobin
US5650388A (en) * 1989-11-22 1997-07-22 Enzon, Inc. Fractionated polyalkylene oxide-conjugated hemoglobin solutions
US5386014A (en) * 1989-11-22 1995-01-31 Enzon, Inc. Chemically modified hemoglobin as an effective, stable, non-immunogenic red blood cell substitute
US5478806A (en) * 1989-11-22 1995-12-26 Enzon, Inc. Enhancement of antitumor therapy with hemoglobin-based conjugates
US5312808A (en) * 1989-11-22 1994-05-17 Enzon, Inc. Fractionation of polyalkylene oxide-conjugated hemoglobin solutions
US5234903A (en) * 1989-11-22 1993-08-10 Enzon, Inc. Chemically modified hemoglobin as an effective, stable non-immunogenic red blood cell substitute
US5041615A (en) * 1989-12-05 1991-08-20 Baxter International Inc. Preparation of bis(salicyl) diesters
US5239061A (en) * 1990-06-20 1993-08-24 Research Corporation Technologies, Inc. Modified human hemoglobin, blood substitutes containing the same, and vectors for expressing the modified hemoglobin
US5352773A (en) * 1990-08-06 1994-10-04 Baxter International Inc. Stable hemoglobin based composition and method to store same
US5248766A (en) * 1990-08-17 1993-09-28 Baxter International Inc. Oxirane-modified hemoglobin based composition
US5114932A (en) * 1990-11-30 1992-05-19 Runge Thomas M Hyperosmolar oxyreplete hemosubstitute
US5234555A (en) * 1991-02-05 1993-08-10 Ibbott Jack Kenneth Method and apparatus for ionizing fluids utilizing a capacitive effect
CA2066374C (en) * 1991-04-19 2002-01-29 Paul E. Segall Solution for perfusing primates
US5295944A (en) * 1991-05-14 1994-03-22 Dana-Farber Cancer Institute Method for treating a tumor with ionizing radiation
US5250665A (en) * 1991-05-31 1993-10-05 The University Of Toronto Innovations Foundation Specifically β-β cross-linked hemoglobins and method of preparation
US5334705A (en) * 1991-08-15 1994-08-02 Duke University Benzenetricarboxylate derivative-crosslinked low oxygen affinity hemoglobin
US5349054A (en) * 1991-08-15 1994-09-20 Duke University Activated benzenepentacarboxylate-crosslinked low oxygen affinity hemoglobin
US5334706A (en) * 1992-01-30 1994-08-02 Baxter International Administration of low dose hemoglobin to increase perfusion
US5200323A (en) * 1992-01-31 1993-04-06 Mcgill University In vitro method to determine the safety of modified hemoglobin blood substitutes for human prior to clinical use
US5296466A (en) * 1992-02-19 1994-03-22 Board Of Regents, The University Of Texas System Inhibition of nitric oxide-mediated hypotension and septic shock with iron-containing hemoprotein
US5344393A (en) * 1992-02-28 1994-09-06 Alliance Pharmaceutical Corp. Use of synthetic oxygen carriers to facilitate oxygen delivery
US5264555A (en) 1992-07-14 1993-11-23 Enzon, Inc. Process for hemoglobin extraction and purification
US5628930A (en) * 1992-10-27 1997-05-13 Alliance Pharmaceutical Corp. Stabilization of fluorocarbon emulsions
US5558855A (en) * 1993-01-25 1996-09-24 Sonus Pharmaceuticals Phase shift colloids as ultrasound contrast agents
DK0646130T3 (da) * 1993-03-16 1997-06-02 Hemosol Inc Selektiv tværbinding af hæmoglobiner ved hjælp af oxiderede, ringåbnede saccharider
US5635538A (en) * 1993-03-16 1997-06-03 Alliance Pharmaceutical Corp. Fluorocarbon emulsions with reduced pulmonary gas-trapping properties
US5554638A (en) * 1993-05-24 1996-09-10 Duke University Methods for improving therapeutic effectiveness of agents for the treatment of solid tumors and other disorders
US5612310A (en) * 1993-05-24 1997-03-18 Duke University Methods for improving therapeutic effectiveness of agents for the treatment of solid tumors and other disorders
ES2157260T3 (es) * 1993-06-04 2001-08-16 Biotime Inc Solucion semejante a plasma.
US5407428A (en) * 1993-06-04 1995-04-18 Biotime, Inc. Solutions for use as plasma expanders and substitutes
US5578564A (en) * 1993-07-23 1996-11-26 Somatogen, Inc. Nickel-free hemoglobin and methods for producing such hemoglobin
TW381022B (en) * 1993-08-16 2000-02-01 Hsia Jen Chang Compositions and methods utilizing nitroxides to avoid oxygen toxicity, particularly in stabilized, polymerized, conjugated, or encapsulated hemoglobin used as a red cell substitute
US5545328A (en) * 1993-09-21 1996-08-13 Hemosol Inc. Purification of hemoglobin by displacement chromatography
CA2106612C (en) * 1993-09-21 2001-02-06 Diana Pliura Displacement chromatography process
US5631219A (en) * 1994-03-08 1997-05-20 Somatogen, Inc. Method of stimulating hematopoiesis with hemoglobin
US5585484A (en) * 1995-04-19 1996-12-17 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University, A Division Of Yeshiva University Hemoglobin crosslinkers
US5525630A (en) * 1995-06-01 1996-06-11 Allos Therapeutics, Inc. Treatment for carbon monoxide poisoning
US5814601A (en) * 1997-02-28 1998-09-29 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for optimization of oxygen transport by cell-free systems
AU735799C (en) * 1997-02-28 2005-04-28 Regents Of The University Of California, The Methods and compositions for optimisation of oxygen transport by cell-free systems
AU1090799A (en) * 1997-10-17 1999-05-10 Regents Of The University Of California, The System and method to characterize gas transport properties
US5985825A (en) * 1998-02-28 1999-11-16 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for optimization of oxygen transport by cell-free systems
CA2233725A1 (en) * 1998-03-31 1999-09-30 Hemosol Inc. Hemoglobin-hydroxyethyl starch complexes
EP1469811A4 (en) * 2002-01-11 2006-01-04 Sangart Inc METHOD AND COMPOSITIONS FOR OXYGEN TRANSPORT WITH MODIFIED HEMOGLOBIN IN PLASMA
WO2003059287A2 (en) * 2002-01-11 2003-07-24 Sangart, Inc. Methods and compositions for oxygen transport comprising an oxygen carrier and a crystalloid in hypertonic solution
AU2003299700B2 (en) * 2002-12-23 2009-03-26 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University Modified hemoglobin and methods of making same

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KATSUMI ET AL: "BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS 97 3", 16 December 1980 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102859364A (zh) * 2010-02-25 2013-01-02 桑格特公司 通过减少反应物比例制备聚乙二醇-血红蛋白缀合物的方法

Also Published As

Publication number Publication date
PT1465643E (pt) 2008-03-27
AU2003207504A1 (en) 2003-07-30
DE60318388D1 (de) 2008-02-14
EP1465643A1 (en) 2004-10-13
AU2003207504B2 (en) 2007-05-24
KR100964604B1 (ko) 2010-06-21
ES2299686T3 (es) 2008-06-01
US20030162693A1 (en) 2003-08-28
JP2010138197A (ja) 2010-06-24
JP5149480B2 (ja) 2013-02-20
CA2473662C (en) 2009-12-22
BR0306846A (pt) 2004-12-07
CN1630527B (zh) 2013-04-24
US6974795B2 (en) 2005-12-13
DK1465643T3 (da) 2008-05-13
US6844317B2 (en) 2005-01-18
EP1465643A4 (en) 2004-10-20
ATE382358T1 (de) 2008-01-15
KR20040081451A (ko) 2004-09-21
CA2473662A1 (en) 2003-07-24
US20030153491A1 (en) 2003-08-14
US20050026816A1 (en) 2005-02-03
EP1465643B1 (en) 2008-01-02
MXPA04006733A (es) 2005-12-05
JP2005515225A (ja) 2005-05-26
CN103203013A (zh) 2013-07-17
DE60318388T2 (de) 2008-12-24
WO2003059363A1 (en) 2003-07-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1630527A (zh) 包含高氧亲和力的修饰血红蛋白的氧气输送方法和组合物
US7989414B2 (en) Compositions for oxygen transport comprising a high oxygen affinity modified hemoglobin
JP2012207048A (ja) 酸素運搬成分を使用して血流力学的安定性を増強する方法
CN102859364A (zh) 通过减少反应物比例制备聚乙二醇-血红蛋白缀合物的方法
US20050020485A1 (en) Methods and compositions for oxygen transport comprising modified hemoglobin in plasma
Scatena et al. O-raffinose-polymerised haemoglobin. A biochemical and pharmacological profile of an oxygen carrier
EP1894573A2 (en) Methods and compositions for oxygen transport comprising a high oxygen affinity

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
REG Reference to a national code

Ref country code: HK

Ref legal event code: DE

Ref document number: 1079691

Country of ref document: HK

C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
REG Reference to a national code

Ref country code: HK

Ref legal event code: WD

Ref document number: 1079691

Country of ref document: HK

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20130424

Termination date: 20220110