DE2320943A1 - Mittel fuer mikrobiologisches arbeiten - Google Patents
Mittel fuer mikrobiologisches arbeitenInfo
- Publication number
- DE2320943A1 DE2320943A1 DE2320943A DE2320943A DE2320943A1 DE 2320943 A1 DE2320943 A1 DE 2320943A1 DE 2320943 A DE2320943 A DE 2320943A DE 2320943 A DE2320943 A DE 2320943A DE 2320943 A1 DE2320943 A1 DE 2320943A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- gel
- layer
- absorbent material
- agar
- microorganisms
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 title claims description 17
- 239000000499 gel Substances 0.000 claims description 101
- 239000002250 absorbent Substances 0.000 claims description 50
- 230000002745 absorbent Effects 0.000 claims description 50
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 47
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 36
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 25
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 claims description 24
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 22
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 19
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 17
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 claims description 12
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims description 12
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims description 12
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 claims description 12
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 claims description 12
- 230000001427 coherent effect Effects 0.000 claims description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 10
- 235000010443 alginic acid Nutrition 0.000 claims description 6
- 229920000615 alginic acid Polymers 0.000 claims description 6
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 6
- 235000010418 carrageenan Nutrition 0.000 claims description 5
- 229920001525 carrageenan Polymers 0.000 claims description 5
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 claims description 5
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 claims description 5
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 claims description 5
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 claims description 5
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 5
- 239000000375 suspending agent Substances 0.000 claims description 5
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 4
- FHVDTGUDJYJELY-UHFFFAOYSA-N 6-{[2-carboxy-4,5-dihydroxy-6-(phosphanyloxy)oxan-3-yl]oxy}-4,5-dihydroxy-3-phosphanyloxane-2-carboxylic acid Chemical compound O1C(C(O)=O)C(P)C(O)C(O)C1OC1C(C(O)=O)OC(OP)C(O)C1O FHVDTGUDJYJELY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 claims description 3
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 claims description 3
- 229940072056 alginate Drugs 0.000 claims description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 3
- 229920002134 Carboxymethyl cellulose Polymers 0.000 claims description 2
- 239000001768 carboxy methyl cellulose Substances 0.000 claims description 2
- 235000010948 carboxy methyl cellulose Nutrition 0.000 claims description 2
- 229920001231 Polysaccharide peptide Polymers 0.000 claims 2
- 239000000679 carrageenan Substances 0.000 claims 2
- 229940113118 carrageenan Drugs 0.000 claims 2
- 108010022457 polysaccharide peptide Proteins 0.000 claims 2
- UHVMMEOXYDMDKI-JKYCWFKZSA-L zinc;1-(5-cyanopyridin-2-yl)-3-[(1s,2s)-2-(6-fluoro-2-hydroxy-3-propanoylphenyl)cyclopropyl]urea;diacetate Chemical compound [Zn+2].CC([O-])=O.CC([O-])=O.CCC(=O)C1=CC=C(F)C([C@H]2[C@H](C2)NC(=O)NC=2N=CC(=CC=2)C#N)=C1O UHVMMEOXYDMDKI-JKYCWFKZSA-L 0.000 claims 2
- 229940050528 albumin Drugs 0.000 claims 1
- 229920000591 gum Polymers 0.000 claims 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 102
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 64
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 49
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 26
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 13
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 12
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 11
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 11
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 9
- 239000000123 paper Substances 0.000 description 8
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 7
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 7
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 7
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 6
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 6
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 5
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 description 5
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 5
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 4
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 4
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 4
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 4
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 4
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 4
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 3
- 238000012364 cultivation method Methods 0.000 description 3
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 3
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 3
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- IXPNQXFRVYWDDI-UHFFFAOYSA-N 1-methyl-2,4-dioxo-1,3-diazinane-5-carboximidamide Chemical compound CN1CC(C(N)=N)C(=O)NC1=O IXPNQXFRVYWDDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- WLDHEUZGFKACJH-UHFFFAOYSA-K amaranth Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].C12=CC=C(S([O-])(=O)=O)C=C2C=C(S([O-])(=O)=O)C(O)=C1N=NC1=CC=C(S([O-])(=O)=O)C2=CC=CC=C12 WLDHEUZGFKACJH-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 239000007478 blood agar base Substances 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 239000003086 colorant Substances 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 2
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 2
- 238000007598 dipping method Methods 0.000 description 2
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 2
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 2
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 description 2
- 235000010413 sodium alginate Nutrition 0.000 description 2
- 239000000661 sodium alginate Substances 0.000 description 2
- 229940005550 sodium alginate Drugs 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 2
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 2
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 2
- PKDBCJSWQUOKDO-UHFFFAOYSA-M 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride Chemical compound [Cl-].C1=CC=CC=C1C(N=[N+]1C=2C=CC=CC=2)=NN1C1=CC=CC=C1 PKDBCJSWQUOKDO-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 241000218642 Abies Species 0.000 description 1
- 241000186046 Actinomyces Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-M Formate Chemical compound [O-]C=O BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 1
- BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N Phenolsulfonephthalein Chemical compound C1=CC(O)=CC=C1C1(C=2C=CC(O)=CC=2)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 239000003125 aqueous solvent Substances 0.000 description 1
- 238000013142 basic testing Methods 0.000 description 1
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000006161 blood agar Substances 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 230000001680 brushing effect Effects 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 230000005757 colony formation Effects 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 239000006153 eosin methylene blue Substances 0.000 description 1
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 1
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 229940044170 formate Drugs 0.000 description 1
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 230000036571 hydration Effects 0.000 description 1
- 238000006703 hydration reaction Methods 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- 238000002386 leaching Methods 0.000 description 1
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 1
- 239000001964 microbiological growth medium Substances 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000033116 oxidation-reduction process Effects 0.000 description 1
- 238000010422 painting Methods 0.000 description 1
- 239000007793 ph indicator Substances 0.000 description 1
- 229960003531 phenolsulfonphthalein Drugs 0.000 description 1
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- WBHHMMIMDMUBKC-QJWNTBNXSA-M ricinoleate Chemical compound CCCCCC[C@@H](O)C\C=C/CCCCCCCC([O-])=O WBHHMMIMDMUBKC-QJWNTBNXSA-M 0.000 description 1
- 229940066675 ricinoleate Drugs 0.000 description 1
- 210000003296 saliva Anatomy 0.000 description 1
- 238000007790 scraping Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 1
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 1
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 230000009897 systematic effect Effects 0.000 description 1
- 125000003831 tetrazolyl group Chemical group 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 238000009827 uniform distribution Methods 0.000 description 1
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 1
- 239000002023 wood Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/02—Form or structure of the vessel
- C12M23/04—Flat or tray type, drawers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
- C12M25/14—Scaffolds; Matrices
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/805—Test papers
Description
betreffend
Mitt el für mikrobiologisches Arbeiten
Die Erfindung betrifft Prüfmittel zum Kulitvieren, Fachweisen
und Analysieren von Mikroorganismen, umfassend ein absorbierendes flächiges Material und eine im -wesentlichen
trockene, stabile, zusammenhängede Schicht aus einem Gel wie Agar oder Gelatine, die miteinander über eine zusammenhängende
Grenzschicht verbunden sind, die ein integraler Bestandteil des saugfähigen Materials und der -Gelschicht
ist und.aus dem saugfähigen Material und der Gelschicht besteht.
Das Prüfmittel kann außerdem eine oder mehrere im wesentlichen trockene, stabile, zusammenhängede Deckschichten
aus einem Gel umfassen, die sich laminatartig über der ersten Gelschicht befinden. Eine derartige Geldeckschicht
enthält vorzugsweise ein Reagenz, umfassend mikrobiologische Nährmedien, Hintergrundfarbstoffe und/oder 3?arbindikatoren.
Der Nachweis und die Analyse von Mikroorganismen wie Bakterien, Pilzen und Hefen, die zu Krankheiten bei Menschen
und Tieren führen, ist von großer Bedeutung für diejenigen,
-2-309845/1150
-2- 42 822
die mit der Bekämpfung derartiger Krankheiten befaßt sind. Die Einfachheit des Fachweises sowie die Zuverlässigkeit
und Stabilität der Prüfmittel beeinflussen weitgehend die Wirksamkeit und den Erfolg bei der Heilung und Bekämpfung
von Krankheiten. Es wurden im Bereich der Mikrobiologie viele Verfahren zum Nachweis von Mikroorganismen entwickelt,
seit man festgestellt hat, daß derartige Mikroorganismen
die Ursache vieler Krankheiten bei Menschen und Tieren sind. Ein für diesen Zweck angewandtes Prüfmittel sollte möglichst
einfach anzuwenden, zuverlässig bezüglich der Zeit und der Umweltbedingungen,stabil, strukturell kompakt aus Gründen
der leichten Lagerung und des Transportes und billig sein. Durch seine Anwendung würde die derzeitige Beschränkung
des Nachweises von Mikroorganismen auf sterile Labors aufgehoben. Ein derartiges Prüf mittel ist auch nicht beschränkt
auf die Diagnose von Krankheiten, sondern ist geeignet für alle industriellen oder medizinischen Bereiche, bei denen
ein einfacher und zuverlässiger Nachweis von Mikroorganismen erforderlich ist.
Verfahren und Prüf mittel, wie sie heute zum Nachweis und
der Analyse von Mikroorganismen allgemein angewandt werden, umfassen die Untersuchung verschiedener Substanzen und Bereiche
des Körpers, die Mikroorganismen enthalten können wie Blut, Urin, Speichel und Haut. Um das Vorhandensein oder
nicht Vorhandensein von krankheitserzeugenden Mikroorganismen
und das Ausmaß der Infektion, soweit eine solche vorhanden
ist, zu bestimmen, werden bei diesen Untersuchungen im allgemeinen Kultivierungsverfahren angewandt, die geeignet
sind, qualitative und quantitative Ergebnisse zu liefern. Üblicherweise umfassen diese Kultivierungsverfahren das Beimpfen eines geeigneten mikrobiologischen Wachstumsmediums,
das Inkubieren des Systems unter stadardisierten Bedingungen
und die Beobachtung und Analyse der Kolonien des Mikroorganismuswachstums.
309845/1150 ~ 5 "
- 3 - 42 822
Bei dem üblichen Kultivierungsverfahren wird Agargel
oder ein ähnliches Gel in Petrischalen als Medium für die systematische Beimpfung, Inkubation und Analyse angewandt.
Agargel ist besonders geeignet als Kultivierungsmedium, aufgrund seiner günstigen physikalischen Eigenschaften. Die Herstellung
und Anwendung des Agargel-Schaben -Verfahrens sind jedoch zeitraubend und die Stabilität des Systems ist bezüglich
der Zeit wegen der Zerstörung des Mediums begrenzt. Außerdem stellt unter bestimmten Lagerbedingungen die Verunreinigung
ein wesentliches Problem dar. Das Ergebnis dieser Begrenzungen ist die Beschränkung dieses Verfahrens auf
Untersuchungen im Laboratorium. Verbesserungen des Agargelverfahrens
sind erforderlich, um den Nachweis und die Analyse von Mikroorganismen bei der Diagnose von Krankheiten zu
erleichtern.
Verfahren, bei denen saugfähige Kissen wie Papierstücke,
die mit einem Nährmedium für Mikroorganismen imprägniert sind, angewandt werden, wurden vor einiger Zeit entwickelt.
Solche Kissen werden nach dem Imprägnieren mit den Nährstoffen getrocknet, wodurch die Stabilität gegenüber dem
Verfahren mit Agargelschalen verbessert wird. Die Reihenfolge
der Verfahrensschritte zum Nachweis von Mikroorganismen
mit Hilfe solcher Prüfmittel umfaßt ein Beimpfen durch Eintauchen des Kissens in die zu untersuchende Flüssigkeit,
Inkubieren unter standardisierten Bedingungen und Beobachtung der entstehenden Mikroorganismuskolonien. Daher werden
derartige Systeme häufig als "Eintauch-Inkubier-Ables-Prüfmittel
bezeichnet. Halbquantitative Ergebnisse können möglich werden durch die zusätzliche Zugabe eines Parbindikators.
Da die Kolonien jedoch innerhalb des gesamten Kissens
und nicht nur auf der Oberfläche wachsen, sind die Morphologieuntersuchungen
im allgemeinen begrenzt. Eine Entfernung reiner Kolonien für die weitere Analyse und Klassifizierung
ist ebenfalls sehr begrenzt.
3 0 9 8 4 5/1150
42 822
Die weitere Entwicklung von "Eintauch-InkuMer-Ables"-Prüfmittein
führte dazu, daß man eine semipermeable Membran mit der Oberfläche des imprägnierten saugfähigen Kissens
zusammen brachte. Ein Beimpfen durch das wahlweise Verfahren des "AufStreichens" kann bei diesen Prüfmitteln ange-
crualj/tative.
wandt werden, wobei man/Ergebnisse erhält, und die Untersuchung
der Morphologie der Mikroorganismuskolonien ermöglicht wird. Halbquantitative Ergebnisse sind möglich unter
Anwendung des Standard "Eintauch-Inkubier-AbIes"-Systems.
Das auftretende Wachstum der Mikroorganismuskolonien auf der Oberfläche der semipermeablen Membran ist jedoch verzögert,
wenn bei dem Zusammenbringen der Membran mit dem Kissen keine ausreichende Verbindung zwischen den beiden
Strukturen zum "Übergang der Nährstoffe auf den inkubierten Mikroorganismus entstanden ist. Auch wird die subjektive
schnelle Diagnose durch die morphologische Beobachtung reiner Kolonien durch die Variation des Mikroorganismuswachstums,
wie es auf der Oberfläche der Membran beobachtet wird, verglichen mit dem Wachstum, wie es in dem klassischen Agargel
beobachtet wird, beeinflußt. Die Möglichkeit, die Mikroorganismen, die ein reines Kulturwachstum ergeben, schnell
und genau zu klassifizieren, sowie das Ausmaß der Infektion quantitativ zu bestimmen, sind daher begrenzt.
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Prüfmittel für
mikrobiologisches Arbeiten, umfassend ein absorbierendes Material und eine im wesentlichen trockene, zusammenhängende
Schicht aus einem Gel, die laminatartig mit dem absorbierenden Material verbunden ist über eine zusammenhängende
Zwischenschicht zwischen dem saugfähigen Material, und dem Gel, die zusammengesetzt ist aus dem saugfähigen Material
und dem Gel. Das erfindungsgemäße Prüfmittel kann weiter eine oder mehrere im wesentlichen trockene, zusammenhängende
Deckschichten aus einem Gel umfassen, die sich laminat-
- 5 309845/1150
- 5 - 42 822
artig über der ersten Gelschicht befinden. Das absorbierende Material und/oder die Gel ob er schicht oder -Oberschichten
enthalten vorzugsweise ein Beagenz oder Reagentien. Bevorzugte
Reagentien umfassen mikrobiologische Nährmedien, Susoder
Pensionsmittel, Hintergrundfarbstoffe und/Farbindikatoren. Die Erfindung betrifft auch ein Prüfmittel für mikrobiologisches
Arbeiten zum Züchten, Nachweisen und zur Analyse von Mikroorganismen mit einer Geloberfläche für mikrobiologisches
Wachstum, das zuverlässig bezüglich der Zeit und Umgebung, stabil, einfach und kompakt ist zur leichten Lagerung
und Transport, das billig ist und das eine Entfernung der Mikroorganismuskolonien für die weitere Analyse ermöglicht.
Außerdem sind bei Verwendung von Agar als Gel,das die Oberschicht oder -Oberschichten bildet, Morphologieuntersuchungen
der entstehenden Mikroorganismen möglich, die vergleichbar sind mit den Ergebnissen, die man bei üblicherweise
angewandten Agarschalen erhält. Die angegebene Struktur ist vorzugsweise befestigt an oder auf andere Weise verbunden
mit einem Träger oder Halter und versehen mit einem dicht abschließbaren Behälter und bildet mit diesem zusammen
ein integrales Prüfmittel.
Die Erfindung wird anhand der beiliegenden Zeichnungen
näher erläutert. Dabei ist
Fig. Λ eine perspektivische Draufsicht auf ein Prüfmittel
mit der laminierten Struktur der vorliegenden Erfindung;
Fig. 2 ein Querschnitt des Prüfmittels der Fig. 1 entlang der Linie 2-2 und die
Fig. 3j 4 und 5 Draufsichten auf erfindungsgemäße Prüfmittel,
die das Muster des Mikroorganismuswachstums zeigen;
- 6 309845/1150
232094
- 6 - ■ . 42 822
Fig. 6 eine Draufsicht auf ein anderes erfindungsgemäßes
Prüfmittel, das in einem dicht verschließbaren
Behälter enthalten ist; und
Fig. 7 ein vergrößerter teilweiser Querschnitt entlang
der Linie 7-7 der Fig. 6.
Die vorliegende Erfindung betrifft ein integrales Prüfmittel
zur Kultivierung, zum Nachweis und zur Analyse von Mikroorganismen, das verschiedene einzelne Merkmale oder
Verbesserungen gegenüber den bekannten Prüfmitteln besitzt.
In erster Linie ist das erfindungsgemäße Prüfmittel in der
Anwendung. einfach und billig, verglichen mit den zeitraubenden
und zur Zeit üblichen Verfahren unter Verwendung von Agargelschalen.-Zweitens ist es strukturell kompakt und
kann daher leicht gelagert und transportiert v/erden, im Gegensatz zu dem mühsamen Agargelverfahren. Drittens ist es
bezüglich der Zeit und Umgebung stabil, da es entwässert ist und dadurch die Lebensdauer der kolloidalen Oberfläche
verlängert und das Mikroorganismuswachstum durch Verunreinigungen verhindert wird. Viertens ist es zuverlässig im
Vergleich zu Kissen, die mit Membranen zusammengebracht sind, da die Struktur der zusammenhängenden Grenzschicht einen
wirksameren Kontakt zwischen den einzelnen Strukturteilen ergibt. Das führt dazu, daß das Reagenz sich selbst
gleichmäßig verteilt und dadurch das Wachstum und der Nach-
ATI
weis von Mikroorganismen unabhängig wurd/von den strukturellen
Fehlern, die sich beim Zusammenbringen von Membranen mit Kissen ergeben. Fünftens erlaubt/die Entfernung von Mikro- '
Organismuskolonien zur weiteren Analyse die mit üblichen imprägnierten Kissen nicht möglich ist. Ferner stellt es
ein Mittel dar zum Nachweis von Mikroorganismen mit einer minimalen Verzögerung durch Änderung der Umgebung, indem
es möglich ist, die Eehydratisierung in dem flüssigen Medium
durchzuführen, das die Mikroorganismen enthält. Und schließlich
— 7 — 30984 5/1150
- 7 - , 42 822
erhält man
bei Verwendung von Agargel als Gel für die Deckschicht
bei Verwendung von Agargel als Gel für die Deckschicht
.; eine Agaroberflache für das Mikroorganismuswachs tum,
die übereinstimmt mit den klassischen Agargeloberflachen
in Petrischalen, die den Mdkrobiologen vertraut sind.
Diese Eigenschaft erlaubt eine schnelle Diagnose durch morphologische Beobachtung des Mikroorganismuswachstums.
Die Fig. 1 zeigt ein mehr teili^psPrüfmittel 10, umfassend
ein längliches, im allgemeinen rechteckiges Basisteil 12
mit einer Reihe von darin geformten rechteckigen Vertiefungen 18. Das Basisteil kann aus Kunststoff geformt sein und kann eine Verlängerung 19 mit einem aufgerauhten Oberflächenteil 11 umfassen, die als Griff dient und mit den !Fingern gehalten werden kann. Die Vertiefungen 18 sind «jeweils mit laminierten Strukturen 13, 14, 15 und 16 versehen, die mit den gleichen oder verschiedenen Reagenzien imprägniert sind. Die laminierten Strukturen können mit Gitterlinien 17 versehen sein, um die Zählung der Kolonien zu erleichtern, wie in
der laminierten Struktur 13 angegeben ist. Für die vorliegende Beschreibung umfaßt der Ausdruck Reagenz Chemikalien und biologische Substanzen, wie mikrobiologische Nährmedien.
mit einer Reihe von darin geformten rechteckigen Vertiefungen 18. Das Basisteil kann aus Kunststoff geformt sein und kann eine Verlängerung 19 mit einem aufgerauhten Oberflächenteil 11 umfassen, die als Griff dient und mit den !Fingern gehalten werden kann. Die Vertiefungen 18 sind «jeweils mit laminierten Strukturen 13, 14, 15 und 16 versehen, die mit den gleichen oder verschiedenen Reagenzien imprägniert sind. Die laminierten Strukturen können mit Gitterlinien 17 versehen sein, um die Zählung der Kolonien zu erleichtern, wie in
der laminierten Struktur 13 angegeben ist. Für die vorliegende Beschreibung umfaßt der Ausdruck Reagenz Chemikalien und biologische Substanzen, wie mikrobiologische Nährmedien.
Ifig. 2 zeigt die laminierte Struktur 14-, umfassend ein
absorbierendes Material 20, wie Papier und eine Schicht 22 aus einem Gel, wobei eine Grenzschicht 21 aus saugfähigem
Material und Gel entsteht, die mit dem saugfähigen Material und dem Gel einen integralen Bestandteil bildet und
aus dem saugfähigen Material 20 und der Gelschicht 22 besteht. Diese laminatartige Struktur kann zusätzlich eine
Deckschicht 23 aus einem Gel enthalten. Die Gelschichten
22 und 23 und die Grenzschicht 21 sind zusammenhängend
und im wesentlichen trocken. In dem Basisteil 12 sind Öffnungen 24 vorgesehen, um ein Eindringen der Flüssigkeit in
das saugfähige Material 20 zu ermöglichen.
Deckschicht 23 aus einem Gel enthalten. Die Gelschichten
22 und 23 und die Grenzschicht 21 sind zusammenhängend
und im wesentlichen trocken. In dem Basisteil 12 sind Öffnungen 24 vorgesehen, um ein Eindringen der Flüssigkeit in
das saugfähige Material 20 zu ermöglichen.
309845/1150
- 8 - 42 822
Die Fig. 6 und 7 zeigen ein Prüfmittel 31, "bestehend aus
einem länglichen Kunststoffstreifen 24 als Handgriff und
eine laminatartige Struktur 35* die mit einem Reagenz oder
Reagentien imprägniert ist und an dem einen Ende des Griffes befestigt ist. Das Prüfmittel ist in einer dicht abschließbaren
transparenten Plastikhülle 32 enthalten mit einem ineinandergreifenden Verschluß 33·
Fig. 7 zeigt die laminatartige Struktur 35, umfassend ein absorbierendes Material 36,wie Papier,und eine Schicht
38 aus einem Gel, wobei eine Grenz schicht 37 sas saugfähigem
Material und Gel entsteht, die mit dem saugfähigen Material 36 "und der Gelschicht 38 integral ist und aus dem
saugfähigen Material 36 und der Gelschicht 38 besteht. Diese
laminatartige Struktur 31 kann zusätzlich eine Deckschicht
39 aus einem Gel umfassen. Die Gelschichten 38 und 39 und die
Grenzschicht 37 sind zusammenhängend und im wesentlichen
trocken. Die Kanten der Hülle 32 sind bei 40 verschweißt.
Die beiden grundlegenden, in den Zeichnungen gezeigten Prüfmittel 10 und 31 bestehend aus ähnlichen laminierten
Strukturen 13 bis 16 bzw. 35- Abgesehen von gelegentlichen
Ausnahmen bezüglich der Größe und der Art der Befestigung der laminierten Strukturen an dem Basisteil können die Strukturen
bei der folgenden Diskussion ihrer Eigenschaften und Funktionen zusammen betrachtet werden. Beide umfassen ein
absorbierendes Material, eine Gelschicht und eine Grenzschicht zwischen saugfähigem Material und Gel und können
zusätzlich eine oder mehrere Geldeckschichten umfassen.
Das absorbierende Material besteht aus saugfähigem Papier,
Stoff, Holz oder irgendeiner anderen geeigneten Substanz, die Flüssigkeit absorbieren und festhalten'kann. Die
Dimensionen des saugfähigen Materials können frei gewählt
- 9 309845/1150
- 9 - 42 822
werden und das Material kann eine Vielzahl von Formen annehmen wie Platten, Zylinder usw. Das saugfähige Material
ist vorzugsweise mit mikrobiologischen Nährstoffen und Suspensionsmitteln imprägniert und kann auch mit FärbIndikatoren
oder Hintergrundfarbstoffen imprägniert sein.
An diesem Punkte ist es wichtig, die Verwendung der Ausdrücke
"Schicht" und "Deckschicht" im Zusammenhang mit der Beschreibung zu verstehen. Die vorliegende Erfindung betrifft
ein Prüfmittel, umfassend ein flächiges saugfähiges Material
und eine "Schicht" aus einem Gel in laminarer Beziehung zueinander, wie später näher beschrieben wird. Das Prüfmittel
kann auch eine zusätzliche "Schicht" oder "Schichten" umfassen, die als "Deckschicht" oder "Deckschichten" bezeichnet
werden, die sich in laminarer Beziehung zueinander befinden, wie im folgenden näher beschrieben wird. Die "Deckschicht",
soweit eine solche vorhanden ist, ist nur die "Schicht" oder "Schichten", die über der ursprünglichen
"Schicht" liegen. Die Unterscheidung beruht auf der unterschiedlichen
Zusammensetzung der zwei oder mehr Schichten und nicht auf Standards wie Dicke oder Herstellungsverfahren.
Zur weiteren Erläuterung gibt es drei allg-emeine Kategorien,
die die möglichen Unterscheidungen der Zusammensetzung^ die zur Bildung von zwei oder mehreren "Schichten",
wie der Ausdruck hier gebraucht wird, führen. Das sind erstens die aufeinanderfolgende Abscheidung von zwei oder
mehr verschiedenen Gelgemischen. Zweitens die aufeinanderfolgende Abscheidung von zwei oder mehreren Gelgemischen,
bestehend aus dem gleichen Gel und unterschiedlichen Beagentien oder unterschiedlichen Eeagenzkonzentrati on en und drittens
die aufeinanderfolgende Abscheidung von zwei oder mehr Gelgemischen, bestehend aus verschiedenen Gelen und verschiedenen
Eeagentien oder verschiedenen Eeagenzkonzentratio-
- 10 309845/1150
- 10 - 4-2 822
nen. Eine weitere Erläuterung geht aus den unten angegebenen Beispielen hervor.
Die erste Schicht oder einzige Schicht, wenn keine Deckschicht vorhanden ist, des Gels in laminarer Beziehung zu
dem absorbierenden Material ist zusammenhängend und im wesentlichen
trocken mit einem bevorzugten Dehydratisierungsbereich von ungefähr 68 bis 99 %· Bei Abwesenheit einer Geldeckschicht
dient diese Schicht, wie^ später näher erläutert wird, als Deckschicht und besitzt deren Eigenschaften. Wenn
sie zusammen mit einer Geldeckschicht angewandt wird, was bevorzugt ist, dient diese Schicht zum Abdichten der Oberfläche
des absorbierenden Materials, wobei eine Grenzschicht aus absorbierendem Material und Gel und eine neue
Oberfläche gebildet wird, die keine kleinen Löcher besitzt . ("pinhole free")· Eine solche Oberfläche, die keine kleinen
Löcher besitzt, ist für Mikroorganismen und organische Farbstoffe
in nicht wässrigen Lösungsmitteln undurchlässig aber durchlässig für mikrobiologische Nährstoffe und Feuchtigkeit,
Es hat sich gezeigt, daß bei der hier angegebenen v/irksamen
Dicke eine solche Durchlässigkeit stärker abhängt von der Konzentration des Gels als von der Dicke. Ein Konzentrationsbereich
des Gels, der die gewünschte Durchlässigkeit.dieser Gelschicht für Feuchtigkeit und mikrobiologische Nährstoffe
ergibt, liegt bei ungefähr 1,5 bis 20 Gew.-% im rehydratisierten Zustand und vorzugsweise ungefähr 3 bis 15 Gew.-%,
wobei die Konzentration von dem jeweiligen verwendeten Gel abhängt. Ein wirksamer Dickenbereich beträgt ungefähr 0,05
bis 1 mm im rehydratisieren Zustand mit einer bevorzugten
Dicke von ungefähr 0,1 bis 0,5 hhh;wieder in Abhängigkeit
von dem speziellen angewandten Gel.
Im Rahmen dieser Erfindung umfaßt der Ausdruck'"Gel" homogene
oder heterogene feste Phasen kolloidaler Lösungen.
- 11 309845/TI 5 0
11 - 42 822
Gele, die angewandt werden können, umfassen Gelatine, Agar,
Gemische von Gelatine und Agar und Gemische von Gelatine und/oder Agar mit kolloidalen Substanzen wie Cellulosegummen,
Alginaten, Albuminen bzw. Proteinen, Carrageenen und komplexen Polysacchariden und Polypeptiden. Andere Gele
und Gemische von gelartigen und kolloidalen Substanzen, die lyophil sind und die eine Oberfläche bilden, die keine kleinen
Löcher enthält, können ebenfalls angewandt werden. Die Gelschicht kann auch ein Reagenz oder fieagentien einschließlich
mikrobiologische Nährstoffe, Färbindikatoren oder Hintergrundfarbstoffe
enthalten.
Die Grenz- schicht zwischen saugfähigem Material und Gel
nimmt aufgrund ihrer Art die Eigenschaften von beiden, nämlich dem absorbierenden Material und der Gelschicht an. Imprägnierungen,
die sich in dem absorbierenden Material und/ oder der Gelschicht befinden, finden sich daher auch in der
Grenzschicht. Diese Grenz-schicht dient dazu, die Wirkung
zwischen dem absorbierenden Material und der Gelschicht bezüglich der darin enthaltenen Seagentien sowie der Beimpfung
oder sterilen Flüssigkeit, die bei der Verwendung zugeführt wird, zu erleichtern. Diese zusammenhängende
Grenzschicht beschleunigt die Diffusion von Flüssigkeit und Nährstoffen und dient als Übergangsschicht zwischen dem absorbierenden
Material und der Gelschicht, so daß die günstigen Eigenschaften sowohl des absorbierenden Materials als
auch der Gelschicht bezüglich des Mikroorganismuswachstums vereinigt sind, wodurch eine günstigere Struktur entsteht.
Me Geldeckschicht wird vorzugsweise laminar auf die erste
Gelschicht aufgebracht, ist zusammenhängend und im wesentlichen trocken mit einer bevorzugten Dehydratisierung von ungefähr
68 bis 99 %. Die Oberfläche dieser Geldecks'chicht dient als Träger für das Mikroorganismuswachstum. Für diese
- 12 3098 k5/1150
- 12 - 42 822
Punktion hat es sich gezeigt, daß eine geeignete Konzentration
des Gels ungefähr 1,5 Ms 20 Gew.-% beträgt, ,je nach
dem verwendeten Gel. Ein wirksamer Dickebereich für diese Deckschicht beträgt ungefähr 0,05 bis 1 mm in dehydratisiertem
Zustand, wobei ein Bereich von ungefähr 0,1 bis 0,5 nun
je nach dem verwendeten Gel, bevorzugt ist. Eine günstige Dicke ergibt ein ausreichendes Volumen, um die eingebauten
Reagentien wirksam zurückzuhalten und diffundieren zu lassen, um das Wachstum des Mikroorganismus zu unterstützen,
während sie im wesentlichen eine Rehydratisierung ermöglicht.
Es können eine oder mehrere Deckschichten angewandt werden und Gele, die dafür geeignet sind, umfassen Gelatine,
Agar, Gemische aus Gelatine und Agar und Gemische aus Gelatine und/oder Agar mit kolloidalen Substanzen wie Cellulosegummen,
Alginaten, Albuminen, Carrageenen und komplexen Polysacchariden und Polypeptiden. Andere Gele und Gemische
gelartiger und kolloidaler Substanzen, die lyophil sind, und das Wachstum von Mikroorganismen und Diffundieren der imprägnierten
Reagentien erlauben, können ebenfalls verwendet werden. Agar ist besonders geeignet, da es zur Zeit als Träger für
Mikroorganismen üblich ist. Die Geldeckschicht enthält vorzugsweise ein Reagenz oder Reagentien, umfassend mikrobiologische
Nährstoffe, Farbindikatoren und Hintergrundfarbstoffe,
ge nach Wunsch. ν .
Wie oben gesagt, umfaßt eine bevorzugte Ausführungsform
das Imprägnieren der Struktur insgesamt oder einer oder mehrerer Gelschichten mit einem mikrobiologischen Nährmedium, das
verschiedene Nährst of fzub ereitungen umfassen kann wie Actinomycesbrühe,
Rinderlactose, Hirn- und Herzinfusion, Aziddextrose,
Christensens Zubereitung, Eosinmethylenblau, Formiat,
Ricinoleatbrühe, Tryptoseblutagar, M-Hefebrühe, modifizierte
Sabouraudbrühe usw. und deren Variationen. Bei der
- 13 309845/1150
- 13 - 4-2 822
Auswahl eines Nährmediums und Hemmstoffgemisches, das für
einen einzelnen Mikroorganismus spezifisch ist, ist es auch möglich, das Vorhandensein oder nicht Vorhandensein
eines bestimmten Mikroorganismus durch die Beobachtung eines Wachstums oder nicht-Wachstums nachzuweisen.
Wie oben gesagt, können auch Färbindikatoren und Hintergrundfarbstoffe
enthalten sein. Solche Färb indikator en und
Hintergrundfarbstoffe sind verschiedene Kategorien für diese
Beschreibung. Der Ausdruck Farbindikator bezeichnet einen Farbstoff, der als Reaktion auf das Vorhandensein von
Mikroorganismuswachstum eine Farbänderung ergibt. Als solcher kann er ein einfacher pH-Indikator, wie Phenolrot sein,
der von gelborange nach leuchtend rosa umschlägt in Gegenwart von Mikroorganismen, die Harnstoff in der Verbindung
zersetzen können. Es kann auch ein Oxidations-Reduktiqns-Indikator
sein, wie eine der verschiedenen Tetrazoliumverbindungen z.B. 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid, der von
farblos nach intensiv rot umschlägt in Gegenwart der meisten Mikroorganismen. Der Farbindikator dient zur Verstärkung der
Lage der Mikroorganismuskolonien bei der Verwendung des Prüf mittels für halbquantitative Bestimmungen. Andererseits
bezeichnet Hintergrundfarbstoff einen Farbstoff, der durch
das Vorhandensein oder nicht Vorhandensein von Mikroorganismen nicht beeinflußt wird. Der Hintergrundfarbstoff ergibt
einen gefärbten Hintergrund zur Beobachtung der Kolonienbildung von Mikroorganismen, die in Abwesenheit eines solchen
Farbstoffs schwer zu beobachten ist, wie im Falle von Mikroorganismuskolonien, die im wesentlichen transparent
sind. Verschiedene Farbstoffe können hierbei verwendet werden wie Amaranthrot, das einen roten Hintergrund für Mikroorganismen
ergibt.
Eine bevorzugte Ausführungsform umfaßt das Imprägnieren
des absorbierenden Materials mit einem Reagenz, das ein
309845/1150
- 14- - 42
Suspensionsmittel, wie inerte Gummen, Carrageene, Alginate
und verschiedene komplexe Polysaccharide und Polypeptide umfaßt. Das Suspensionsmittel erleichtert das Imprägnieren
und dient dazu, das Auslaugen der Reagentien aus dem absorbierenden
Material zu verhindern, wodurch es ein Auslaugen solcher Eeagentien aus dem absorbierenden Material beim Rehydratisieren
des Prüfmittels verhindert.
Die Herstellung der erfindungs gemäß en Prüfmitt el umfaßt zwei grundlegende Schritte, nämlüch das Abscheiden einer Gelschicht
oder -schichten und das Trocknen der entstehenden Struktur. Das absorbierende Material oder die Gelschichten
werden vorzugsweise vor der Abscheidung der Gelschicht oder -schichten imprägniert. Das Abscheiden der Gelschicht oder
-schichten kann erreicht werden durch Aufgießen, Eintauchen,
Aufrollen oder Aufsprühen einer wässrigen Lösung des Gels, so daß eine zusammenhängende Schicht entsteht, die mit der
ersten Schicht eine zusammenhängende Grenzschicht ergibt,
wie oben beschrieben. In Beziehung auf die Herstellungsverfahren für die Prüfmitt el sind die Ausdrücke "Schicht" und
"Deckschicht" nicht auf einzelne Eintauch-, Aufgieß—, Aufroll-
oder Aufsprühoperationen beschränkt, sondern sie können auch das Ergebnis mehrerer derartiger Operationen sein.
Die Unterscheidung zwischen Schichten beruht auf der unterschiedlichen
Zusammensetzung der Schichten, die auf der Abscheidung verschiedener Gele oder verschiedener daran^ enthaltender
Eeagentien oder verschiedener Konzentrationen von Reagentien beruht und nicht auf der Dicke oder der Art der
Herstellung.. Die entstehende Struktur wird dann nach einer von zahlreichen möglichen Methoden getrocknet, wie durch ein
geregeltes Trocknen im Ofen, Trocknen bei Raumtemperatur bei vermindertem Druck usw.. Ein Trocknungsverfahren wurde durchgeführt,
indem man das Prüfmittel Raumtemperatur bei herabgesetzten Feuchtigkeitsbedingungen wie 5 bis 20 % relativer
309 8 45/1150
- 15 - 4-2 822
Feuchtigkeit 10 bis 15 h aussetzte. Ein schnelleres Trocknungsverfahren
umfaßt eine Trocknung im Ofen bei 5O°C innerhalb 1/2 bis 2 h. Das entstehende, im wesentlichen trockene
Prüfmittel wird vorzugsweise an oder auf einem Träger befestigt,
wie aus den Fig. 1 und 6 hervorgeht. Die Art der Befestigung der laminatartigen Struktur auf dem Träger muß
so sein, daß sie für die Mikroorganismen nicht schädlich ist und die Diffusions- oder Absorptionseigenschaften des
Prüfmittels nicht verschlechtert.
Wie oben gesagt, können die erfindungsgemäßen Prüfiaittel
verschiedene Formen und Anwendungsarten zum Kultivieren Nachweisen
und Analysieren von Mikroorganismen umfassen. Solche Formen sind beispielhaft in den Zeichnungen angegeben. Anwendungsarten,
die durch die Verwendung der erfindungsgemässen Prüfmittel möglich sind, sind ein "Aufstreichen" und
"Eintauchen-Inkubieren-Ablesen".
Bei Anwendung eines "Aufebreich"-Verfahrens wird das Prüfmittel
in eine sterile Flüssigkeit eingetaucht oder auf andere Weise mit ihr zusammengebracht und zwar solange, daß
es ausreicht, die Gelschicht oder -schichten im wesentlichen zu hydratisieren und anschließend durch "Aufstreichen" auf
die Oberfläche der Geldeckschicht beimpft. Es ist möglich,
halbquantitative Ergebnisse durch das Aufstreichverfahren
zu erhalten, wobei ein bekanntes Volumen oder bekannte Menge der zu untersuchenden Probe auf die Oberfläche des Gels
aufgestrichen wird. Nach Inkubieren unter standardisierten
Bedingungen, vorzugsweise in einem dicht verschlossenen Behälter wie dem Behälter 32, ipi ein Entweichen von Feuchtigkeit
zu verhindern, kann das Vorhandensein oder nicht-Vorhandensein eines Mikroorganismuswachstums leicht durch Beobachtung
der Geloberfläche bestimmt werden. Bei Anwendung des oben beschriebenen halbquantitativen AufStreichverfahrens
- 16 3098ΛΒ/11&0
- 16 - 4-2 822
ergibt ein geeigneter Vergleich der Dichte des Mikroorganismuswachstums
auf der Geloberfläche mit einem Standard eine halbquantitative Bestimmung des Ausmaßes der Infektion.
Bei Anwendung eines "Eintauch-Inkubier-Ables"-Verfahrens
wird das Prüfmittel in die zu untersuchende Flüssigkeitsprobe eingetaucht und nach einer entsprechenden Zeit, die
ausreicht, um die Gelschicht, oder -schichten im wesentlichen zu rehydratisieren, daraus entfernt und die überschüssige
Flüssigkeit ablaufen gelassen. Das führt zu einer gleichzeitigen Rehydratisierung der Gelschichten und Beimpfung
des Prüfmittels. Die für das Mikroorganismuswachstum erforderliche Feuchtigkeit wird dadurch in dem absorbierenden Material
absorbiert. Mikroorganismen, soweit solche in der Flüssigkeit vorhanden sind, werden in dem saugfähigen Material absorbiert
und auf der Geloberfläche abgeschieden. Es tritt daher ein Mikroorganismuswachstum innerhalb des absorbierenden
Materials/auf der Oberfläche des Gels auf. Die innerhalb des
absorbierenden Materials gebildeten Kolonien treten neben dem hauptsächlichen Wachstum auf dem Gel auf. Nach dem Inkubieren
unter standardisierten Bedingungen in einem dicht verschließbaren Behälter zur Vermeidung des Entweichens von
Feuchtigkeit, kann das Vorhandensein oder nicht-Vorhandensein
von Mikroorganismuswachstum leicht durch Beobachtung der Geloberfläche bestimmt werden.
Bei den beiden oben beschriebenen Anwendungsverfahren tritt auf der Geloberfläche ein Mikroorganismuswachstum auf,
wodurch die Entfernung der Kolonien für die weitere Untersuchung, wie Gramfärbung, ermöglicht wird. Durch die Verwendung
von Gelen wie Agar, die üblicherweise bei den Petrischalenverfahren angewandt werden, kann es auch möglich sein, eine
schnelle Diagnose der.Art der Infektion durch morphologische Beobachtung reiner Kolonien zu stellen. Die Oberfläche der
Agarschicht entspricht der Oberfläche des Agargels bei dem
- 17 3 0 9 8 4 5 /MbO
- 17 - 4-2 822
Petrischalenverfahren. Diese beiden Eigenschaften des Oberflächenwachstums
und der Geloberfläche liefern dem Mikrobiologen
und Diagnostiker ein außerordentlich wirksames Prüfmittel zum Nachweis von Mikroorganismen. Die erfindungsgemässen
Prüfmittel besitzen auch notwendigerweise eine sehr gute Stabilität, da sie im wesentlichen wasserfrei sind, wodurch
die Lebensdauer der Geloberfläche verlängert wird und eine Verunreinigung aus der Umgebung vermieden wird. Sie sind zuverlässig
durch die zusammenhängende Grenzschicht, die die Wechselwirkung zwischen dem absorbierenden Material als Feuchtigkeit
sb ehält er und der Geldeckschicht als Nährstoff und Träger für die Mikroorganismen verbessert. Sie sind aufgrund
ihrer Kompaktheit einfach und gegenüber bekannten Prüfmitteln
und Systemen billig. Die erfindungsgemäßen Prüfmittel sind daher
für die Mikrobiologie außerordentlich günstig.
Die Erfindung wird durch das folgende Beispiel näher erläutert :
26 Streif en. Schleicher- und Schuell-Filterpapier Nr. 4-70
wurden in einer Größe von Jx1 ei geschnitten und mit einer
wässrigen Lösung der folgenden Zusammensetzung imprägniert:
Tryptose-Blut-Agar-Basis 30 g/l
Bindeisxtrakt 9 g/l
Natriumchlorid 5 g/l
Natriumalginat 2 %
Das Imprägnieren wurde durch 5 min langes Eintauchen der
Streifen in die oben angegebene Lösung und Durchleiten der Streifen durch eine Ausquetschvorrichtung und anschließend
- 18 309845/1150
-18 - 42 822
ungefähr 1-stündiges Trocknen bei 5O°C durchgeführt. Eine
erste Schicht, bestehend aus einer wässrigen Lösung von 5 % Agar und 0*2 % Amaranthrot Hintergrundfarbstoff wurde
dann auf die eine Seite der trockenen, imprägnierten Papierstreifen
aufgesprüht. Die entstehende erste laminierte Struktur umfaßte eine zusammenhängende Grenzschicht aus
imprägniertem Papier und Agarlarbstofflösung und wurde dann
ungefähr 1 h bei 50°C getrocknet.
25 der Streifen wurden in 5 Gruppen von jeweils 5 Stück
eingeteilt. Es wurde eine Deckschicht aus verschiedenen Gelen, die Reagentien enthielten, auf jede Gruppe aus 5 Streifen
aufgerollt. Die Deckschicht bestand aus einer wässrigen Lösung der folgenden Zusammensetzung:
Tryptose-Blut-Agar-Basis 30 g/l
Binderextrakt 9 g/l
Natriumchlorid 5 g/l
Natriumalginat 2 %
und den folgenden Konzentrationen der jeweiligen Gele:
Gruppe 1 5 % Agar
Gruppe 2 20 % Gelatine / 1,25 % Agar
• Gruppe 3 1 % Cellulosegummi / 4 % Agar
Gruppe 4 1 % Alginat / 4 % Agar Gruppe 5 .1 % fötales Kalbsserum / 5 % Agar.
Die entstehenden laminierten Strukturen wurden dann ungefähr
1 h bei 50°C getrocknet. 5 Prüfmittel, eines aus jeder der
5 Gruppen.wurdenin die vorher hergestellten flüssigen Medien,
enthaltend 10 , 10^, 10^, 10^ und 10 Mikroorganismen
pro cnr Escherichia coli eingetaucht und nach 5 bis 30 sek,
je nach dem flüssigen Medium, entfernt. Überschüssige Plüssig-
- 19 3098-45/1150
- 19 - ■ 42 822
keit ließ man von den Prüfmitteln ablaufen. Die beimpften
Pi1Ufmittel wurden in einen sterilen, dicht verschlossenen
Behälter, wie den Behälter 32 der Pig. 6, gegeben und über
Nacht bei 37°C inkubiert. Auf allen beimpften Prüfmitteln
wurden abgegrenzte transparente, runde,erhabene Mikroorganismuskolonien
gegenüber dem amaränthroten Hintergrund beobachtet. Die Dichte der beobachteten Kolonien auf der Oberfläche
der Deckschichten war eine Funktion des Eintauchens und der standardisierten Inkubierung, sowie der Dichte der Mikroorganismen
in dem untersuchten Medium. Die Dichte auf der erhaltenen Oberfläche ergab eine ausreichend gleichmäßige Verteilung,
Trennung und Größe der Kolonien, um halbquantitativ zwischen 10 und 10^ Mikroorganismen/2 cnr zu unterscheiden.
Solche entstehenden Oberflächendichten sind in den Pig. 3, 4-
und 5 gezeigt, die ein Mikroorganismuswachstum 30a, 30b und 30c entsprechend einer halbquantitativen Verteilung von 10^,
10 und 10^ Mikroorganismen/cm·^ zeigen. Die Deckschicht der
Prüfmittel erlaubt ein Entfernen der Kolonien für eine weitere Analyse.
Der restliche Streifen wurde mit einer Deckschicht, wie in Gruppe 1, versehen und anschließend 1 h bei 50°C getrocknet.
Es wurde dann steriles Wasser auf die Papierseite des Prüfmittels gegeben zur Rehydratisierung und die Oberfläche
der Deckschicht wurde mit einer Schleife bestrichen, die eine Probe einer Brühe von Escherichia coli enthielt. Dieses
beimpfte Prüfmittel wurde anschließend in einen sterilen dicht verschlossenen Behälter gegeben und über Nacht bei
37°C inkubiert. Es wurden abgegrenzte transparente, runde,
erhabene Mikroorganismuskolonien beobachtet, die charakteristisch sind für Escherichia coli auf Agarplatten. Die Deckschicht
des Prüfmittels erlaubte eine Entfernung der Kolonien für eine
weitere Analyse.
Pat ent an sp rü ch e 62XXV
3 0 9 6 4 5/1IbO
Claims (6)
1. Mittel für mikrobiologisches Arbeiten, umfassend ein im wesentlichen flächiges, absorbierendes Material und
mindestens eine im wesentlichen trockene, zusammenhängende Schicht aus einem Gel, wobei das saugfähige Material und
die 1· Gelschicht über eine zusammenhängende Grenzschicht miteinander
verbunden sind, die mit dem absorbierenden Material und der Gelschicht integral ist und aus dem absorbierenden
Material und dem Gel besteht.
2· Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet , daß es mindestens eine, im wesentlichen trockene,
zusammenhängede Deckschicht aus einem Gel besitzt, die sich über der ersten Gelschicht befindet.
3. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekenn ζ eichn
e t , daß das Gel Gelatine, Agar, ein Gemisch aus Gelatine und Agar und/oder ein Gemisch aus Gelatine und/oder Argar
mit zumindestens einer kolloidalen Substanz ist.
4. Mittel nach Anspruch 3, dadurch g e k e η η ζ e i ohne t , daß die kolloidale Substanz ein Cellulosegummi,
Carrageen, Alginat, Albumin, Polysaccharid und/oder PoIypeptid
ist.
5. Mittel nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet , daß das Gel Agar oder ein Gemisch aus
Agar und Gelatine ist.
6. Mittel nach Anspruch 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß das absorbierende Miteral ein Reagens -2-
. 309845/1150
- e-
enthält,
7, Mittel nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß das Reagenz mikrobiologische Nährstoffe,
Suspensionsmittel und/oder Farbindikatoren umfaßt,
8, Mittel nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet , daß das Suspensionsmittel ein inerter
Gummi, Karrageen, Alginat, Polysaccharid und/oder Polypeptid ist,
9, Mittel nach Anspruch 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet , daß die Gelschicht ein Reagenz enthält,
10, Mittel nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet , daß das Reagenz mikrobiologische Nährstoffe
und/oder einen Farbindikator umfaßt,
11, Verfahren zur Herstellung der Mittel nach Anspruch bis 10, dadurch gekennzeichnet , daß man eine
erste zusammenhängende Schicht aus einer Gellösung auf das im wesentlichen flächige, absorbierende Material aufgießt
und anschließend die entstehende Struktur trocknet und gegebenenfalls anschließend eine oder mehrere weitere Gelschichten
aufbringt.
309845/'MbO
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US24786872 | 1972-04-26 | ||
US00247868A US3814670A (en) | 1972-04-26 | 1972-04-26 | Test article for use in microbiology |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2320943A1 true DE2320943A1 (de) | 1973-11-08 |
DE2320943B2 DE2320943B2 (de) | 1976-09-16 |
DE2320943C3 DE2320943C3 (de) | 1977-06-23 |
Family
ID=
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US3814670A (en) | 1974-06-04 |
GB1406180A (en) | 1975-09-17 |
JPS4920386A (de) | 1974-02-22 |
HU167637B (de) | 1975-11-28 |
JPS554389B2 (de) | 1980-01-30 |
FR2182074A1 (de) | 1973-12-07 |
SE416313B (sv) | 1980-12-15 |
DE2320943B2 (de) | 1976-09-16 |
CA986827A (en) | 1976-04-06 |
FR2182074B1 (de) | 1977-02-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2817145C3 (de) | Vorrichtung zur Durchführung mikrobiologischer Untersuchungen | |
DE2838675C3 (de) | Testmittel zum Nachweis von Ketonen bei alkalischem pH-Wert | |
DE1598153C3 (de) | Diagnostisches Mittel zum Nach weis der Inhaltsstoffe von Korperflus sigkeiten | |
DE1546307B2 (de) | Haltbare teststreifen | |
DE2320946B2 (de) | Vorrichtung für mikrobiologisches Arbeiten | |
DD201944A5 (de) | Reagenzstreifen fuer analytische zwecke | |
DE2162122A1 (de) | Indikator zum nachweis von metallionen | |
DE2309794C3 (de) | Testreagens zur Bestimmung von Ascorbinsäure | |
EP0340511B1 (de) | Trägergebundenes mehrkomponentiges Nachweissystem zur kolorimetrischen Bestimmung esterolytisch oder/und proteolytisch aktiver Inhaltsstoffe von Körperflüssigkeiten | |
DE2320943A1 (de) | Mittel fuer mikrobiologisches arbeiten | |
DE3029301A1 (de) | Mehrschichtig aufgebautes element zur durchfuehrung von analysen | |
DE2029822A1 (de) | Diagnostisches Produkt und Verfahren zum Nachweis der Nikotinsaureproduktion durch Mycobaktenen | |
DE2320943C3 (de) | Vorrichtung für mikrobiologisches Arbeiten | |
DE2212573C3 (de) | Prüfmittel zur halbquantitativen Bestimmung der in einer Flüssigkeit enthaltenen Mikroorganismen | |
DE2365769A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur mikrobiologischen analyse | |
DE3404441A1 (de) | Vorrichtung zur bestimmung von mikroorganismen | |
DE3738982C2 (de) | ||
DE2050481C3 (de) | Diagnostiziermittel zur halbquantitativen Bestimmung von Glukose in Urin | |
DE2349282A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur bestimmung der haerte des wassers | |
DE1200478B (de) | Vorrichtung zur Untersuchung der Stoffwechsel-eigenschaften von lebenden Zellen | |
AT247292B (de) | Verfahren zur Herstellung von haltbaren Reagenzpapieren | |
EP0339331A2 (de) | Teststreifen zur Bestimmung von Harnstoff und seine Anwendung | |
DE2533102C3 (de) | Landwirtschaftliche Germicide auf Basis von Kupfersulfonat und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
DE2062710A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung von enzymhemmenden Stoffen | |
DE1292785B (de) | Anordnung zum Nachweis von Bakterien |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 | ||
8328 | Change in the person/name/address of the agent |
Free format text: PETERS, G., RECHTSANW., 5090 LEVERKUSEN |
|
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |