WO1987002879A1 - Conteneur pour fecondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en co2 - Google Patents

Conteneur pour fecondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en co2 Download PDF

Info

Publication number
WO1987002879A1
WO1987002879A1 PCT/FR1986/000378 FR8600378W WO8702879A1 WO 1987002879 A1 WO1987002879 A1 WO 1987002879A1 FR 8600378 W FR8600378 W FR 8600378W WO 8702879 A1 WO8702879 A1 WO 8702879A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
tube
container
container according
oocytes
round
Prior art date
Application number
PCT/FR1986/000378
Other languages
English (en)
Inventor
Claude Ranoux
Original Assignee
Claude Ranoux
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Claude Ranoux filed Critical Claude Ranoux
Priority to AT86906357T priority Critical patent/ATE57603T1/de
Priority to SU4203032/14A priority patent/RU2068253C1/ru
Priority to DE8686906357T priority patent/DE3675206D1/de
Priority to JP61505927A priority patent/JPH082360B2/ja
Priority to UA4203032A priority patent/UA18716A1/uk
Publication of WO1987002879A1 publication Critical patent/WO1987002879A1/fr
Priority to DK349487A priority patent/DK349487D0/da

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
    • A61B17/42—Gynaecological or obstetrical instruments or methods
    • A61B17/425—Gynaecological or obstetrical instruments or methods for reproduction or fertilisation
    • A61B17/435—Gynaecological or obstetrical instruments or methods for reproduction or fertilisation for embryo or ova transplantation
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B50/00—Containers, covers, furniture or holders specially adapted for surgical or diagnostic appliances or instruments, e.g. sterile covers

Definitions

  • This invention relates to a completely new process for fertilizing human oocytes using a device which we will describe.
  • This process consists of fertilization in the absence of air enriched in CO2 from human oocytes using a sealed tube completely filled with culture medium and placed in the vaginal cavity which then acts as an oven. As soon as the oocytes are punctured, the time of which has been delayed (in order to do without the oocyte maturation phase), these are placed in the container as well as the spermatozoa necessary for fertilization and which have been previously prepared. Then the device, with its compression mode, is placed in the vaginal cavity where it will not be removed until after 44 to 48 hours in order to immediately replace the eggs in the uterine cavity using a "Frydman" catheter.
  • the blind end of the tube is rounded (5).
  • the upper end in relation to the neck is flat (6) and presents in its center a round orifice of approximately 4mm in diameter (7). It is through this orifice that the oocytes and sperm tozoids necessary for fertilization will be deposited.
  • the dimensions of the orifice are voluntarily reduced relative to the diameter of the tube in order to limit the exchanges of the culture medium with the ambient air and therefore to minimize disturbances.
  • a hermetic closure of the tube will be achieved by a thin membrane (9) covering the orifice.
  • This membrane will be made in such a way that it can rupture very easily when the oocytes and spermatozoa are deposited in the tube using a glass "Pasteur pipette" or a plastic pipette tip. for single use.
  • Other sealing methods can be used such as a system fitted with a valve.
  • the culture medium can be one of those conventionally used and marketed.
  • the one we use is the medium "I.N.R.A. de ⁇ enezo" marketed under the name of "B2" by "A.P.I. System”. Only a small gas volume of about 200 ⁇ l (10) will persist between the surface of the medium and the membrane, corresponding to the volume of the oocytes and sperm transferred.
  • the internal walls of the tube must be perfectly smooth and rounded (11) in order to avoid that one of the eggs remains hooked when they are removed and replaced in the uterine cavity.
  • the plug (12) about 1cm high and 1.5cm in diameter, will be screwed onto the neck of the tube to close the orifice. After rupture of the membrane, a perfect tightness of the tube is however necà ⁇ re in order to avoid disturbances of the medium and possible conta ⁇ minations resulting from its installation in the vaginal cavity. This seal will be ensured by 2 seals, one in a ring enclosing the neck of the tube (13) with a thickness of approximately 1mm; the other flat and round (14) lining the bottom of the stopper and of an identical thickness. To complete the sealing of the bottom plug has in its mid place a relief (15) whose diameter is substantially that of the ori ⁇ fice and which, during the screwing of the cap, to correctly apply the seal in the tube hole light.
  • the external wall of the plug has rounded edges (16).
  • the material used for the production will be a rigid plastic with high mechanical resistance (in the event of trauma) of the polypropylene type, non-toxic for cell cultures.
  • a compression device for holding the tube in the vaginal cavity is shown in Figure II.
  • This device consists of a flexible ring, itself consisting of a metal blade (17) rubber sheathed (18) to which is attached a small rubber pocket (19) the size of the tube and which allows drag it there.
  • the diameter of this ring will be determined, as for a diaphragm, for each patient according to the size of her uterine cavity and her uterine cervix during a consultation before in vitro fertilization.
  • This device makes it possible to hold the tube in the posterior vaginal sac without risk for the patient to lose it or to create cooling of the culture medium in relation to a position too close to the orifice seen.
  • the approach that allowed us to achieve this technical process and its device is based on findings and research work.
  • the first of these observations observed for 6 months is that a fraction of the medium kept in a sterile hermetically sealed tube, without air interposition as far as possible, allows it to be kept for more than 10 days without disturbance and without its use does not modify the results conventionally obtained.
  • the second observation is based on fertilization studies of 3 oocytes placed in the same box pad, ie in 1 ml of medium; it shows that a percentage of cleavage identical to that obtained conventionally when a single oocyte is cultivated per plot is obtained. Also the fact that if an egg is left in the same pad during 48 hours necessary for its fertilization, this would not interfere in ri ', has on its stage of development.
  • a first study involving 8 patients who presented an egg number greater than 4 per puncture was carried out. About half of the eggs obtained were cultivated in a conventional manner, the other half cultivated in a hermetically closed tube for -48 hours in an oven. No difference in the cleavage rate was observed. Two patients started a pregnancy, which corresponds to the percentage of success conventionally obtained.

Abstract

Conteneur pour fécondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en CO2 pouvant se faire à l'étuve à 37o ou dans la cavité vaginale. Ce conteneur de forme cylindrique, présente des parois externes lisses et arrondies (1) dont l'épaisseur est de 2mm au corps du cyclindre (2) pour ne plus être que de 1mm au col (3). Sur la paroi externe du col on observe un pas de vis (4) permettant un vissage externe du bouchon (12) dont les bords sont lisses et arrondis. L'extrémité borgne du conteneur est arrondie (5), l'autre est plate (6) et présente un orifice rond (7), orifice fermé par une fine membrane (9) permettant un hermétisme du tube afin d'éviter les perturbations du milieu de culture (8), présent dans le conteneur dès sa fabrication. Au-dessus du liquide subsiste 200ul environ de gaz (10). Les parois internes sont lisses et arrondies (11). Après dépose des ovocytes et des spermatozoides nécessaires à la fécondation et donc rupture de la membrane, l'hermétisme sera réalisé après vissage du bouchon par 2 joints un circulaire au col du tube (13), l'autre plat et rond (14) au fond du bouchon qui sera écrasé sur l'orifice du tube (7) par un relief situé au fond du bouchon (15) et dont le diamètre est sensiblement celui de l'orifice. Le conteneur sera maintenu dans le cul de sac postérieur de la cavité vaginale par un anneau flexible constitué d'une lame métallique (17) gainée de caoutchouc (18) auquel est fixée une poche de caoutchouc (19), dans laquelle on place le conteneur. Ce dispositif permet ainsi la fécondation intra-vaginale des ovocytes humains en absence d'air enrichi en CO2, la cavité vaginale venant remplacer l'étuve classiquement utilisée.

Description

CONTENEUR POUR FECONDATION DES OVOCYTES HUMAINS EN ABSENCE D'AIR ENRICHI EN C02
Cette invention concerne un procédé totalement nouveau de féconda¬ tion des ovocytes humains faisant appel à un dispositif que nous dé¬ crirons.
La fécondation in vitro des ovocytes humains est une technique très complexe qui a permis de solutionner des cas de stérilité du couple jusqu'alors irréversibles. Depuis la première naissance, en 1978, de Louise Bro n, réalisée par l'équipe d'Edwards en Angleterre, des milliers d'enfants sont nés par cette technique à travers le monde
Le souci majeur de l'ensemble des équipes de fécondation in vitro a toujours été d'obtenir une simplification de la technique tout en conservant ou en améliorant les résultats. C'est ainsi que sur le plan clinique sont apparus :
- la stimulation, afin d'obtenir plusieurs ovocytes et d'augmenter ainsi les chances de succès,
- d'autres modes de ponction que celui sous contrôle coelioscopique, notamment ceux effectués sous contrôle échographique transvésical puis transvaginal et enfin transurétral, qui permettent de se passer de l'anesthésie générale et d'éviter la toxicité éventuelle du C02. Sur le plan biologique la congélation des embryons surnuméraires a permis une amélioration des résultats. Seule l'étape biologique de la fécondation proprement dite n'a subi que de très minimes modi¬ fications.
Cette étape biologique demeurait jusqu'à ce jour très complexe. Classiquement elle correspondait à une culture des embryons aérobie et stérile en boite ou en tube à 37° et sous b% de C02. Ce qui néces¬ site des boites et tubes non hermétiques, avec un risque de contamina¬ tion par le milieu ambiant. D'où la nécessité de disposer d'une étuve à C02 ou d'une couveuse (mise au point par "Testart"), parfaitement équilibrée à 37° et en C02. Celles-ci sont des matériels lourds et chers.
De même initialement après la ponction, on procédait à une phase de maturation de 1 à 4 heures des ovocytes dans le milieu de culture complémenté le plus souvent en sérum humain et après ce délai à la fécondation des ovocytes après changement de milieu; 18 à 24 heures après une dénudation des oeufs était effectuée. (Cette dénudation correspond à retirer de façon mécanique les cellules du cumulus entou¬ rant l'oeuf afin d'apprécier son stade de développement). L'oeuf était alors transféré dans un nouveau milieu, qui, 20 à 24 heures après était à nouveau changé avant la replacement dans la cavité utérine, ce qui correspondait à l'utilisation de plus de 3ml de milieu de cul¬ ture par oeuf et à de nombreuses manipulations échelonnées sur 48 heures, pouvant créer une toxicité pour ces oeufs.
Le procédé que nous avons mis au point et dont nous vous résume¬ rons la démarche scientifique qui nous y a conduit est caractérisé par sa simplicité et son économie aussi bien en temps que financière¬ ment.
Ce procédé consiste en une fécondation en absence d'air enrichi en C02 des ovocytes humains à l'aide d'un tube étanche entièrement rempli de milieu de culture et placé dans la cavité vaginale qui joue alors rôle d'étuve. Dès la ponction des ovocytes, dont l'heure a été retardée (afin de se passer de la phase de maturation ovocytaire), ceux-ci sont placés dans le conteneur ainsi que les spermatozoïdes nécessaires à la fécondation et qui ont été préalablement préparés. Puis le dispositif, avec son mode de contention sont placés dans la cavité vaginale où ils ne seront retirés qu'après 44 à 48 heures afin de replacer immédiatement les oeufs dans la cavité utérine à l'aide d'un cathéter de "Frydman".
Nous allons vous décrire un modèle du conteneur qui constitue le dispositif (fig. I).
- C'est un tube cylindrique de faibles dimensions, aux parois externes lisses et arrondies (1) afin d'éviter tout traumatisme de la muqueuse vaginale. Ses dimensions sont d'environ 4cm de long pour un. iamètre externe de 1,5cm; l'épaisseur des parois est de 2mm sur le corps du cylindre (2) sauf au niveau du col où elle n'est plus que de 1mm (3), ce qui donne une cavité interne de 1,1cm de diamètre sur 3,8cm de long avec un volume utile d'environ 3,2cm3. Ce volume convient à la culture de 4 à 5 embryons. Pour un nombre d'embryons supérieur à 5. le volume de milieu utilisé peut être augmenté à 5cm3, les dimen¬ sions externes sont alors de 4,5cm de long sur 1,7cm de diamètre ex¬ terne, l'épaisseur des parois restant inchangée. De même d'autres formes, autre que la forme cylindrique, peuvent être envisagées: piriforme, ronde ou arciforme en fonction de la plastique du vagin.
- Sur la paroi externe du corps du tube, une surface d'inscription pour le nom de la patiente doit être prévue. Sur la paroi externe du bouchon ce qui limite les fautes d'aseptie. - En raison de la diminution d'épaisseur de la paroi du col, le bord externe du bouchon, une fois vissé, ne déborde pas de la paroi du tube.
- L'extrémité borgne du tube est arrondie (5).
- L'extrémité supérieure en rapport avec le col est plate (6) et pré¬ sente en son centre un orifice rond de 4mm de diamètre environ (7). C'est par cet orifice que seront déposés les ovocytes et les sperma¬ tozoïdes nécessaires à la fécondation. Les dimensions de l'orifice sont volontairement réduites par rapport au diamètre du tube afin de limiter les échanges du milieu de culture avec l'air ambiant et donc d'en minimiser les perturbations.
- Pour diminuer encore les risques septiques, les perturbations du milieu et réduire les temps de manipulations, il nous est apparu bon de concevoir des conteneurs dans lesquels le milieu de culture est placé dans le tube dès sa fabrication (8).
- Pour éviter que des perturbations biochimiques du milieu ou qu'une contamination ne surviennent durant le délai séparant sa fabrication et son utilisation, une fermeture hermétique du tube sera réalisée par une fine membrane (9) venant couvrir l'orifice. Cette membrane sera réalisée de telle sorte qu'elle puisse se rompre très facilement lors de la dépose des ovocytes et spermatozoïdes dans le tube à l'aide d'une "pipette Pasteur" en verre ou d'un embout de pipette en plasti¬ que à usage unique. D'autres modes de fermeture étanche peuvent être utilisés tel un système muni d'une valve.
- Le milieu de culture peut être un de ceux classiquement utilisé et commercialisé. Celui que nous utilisons est le milieu "I.N.R.A. de ^enezo" commercialisé sous le nom de "B2" par "A.P.I. Système". Il ne persistera qu'un faible volume gazeux d'environ 200ul (10) entre la surface du milieu et la membrane, correspondant au volume des ovo¬ cytes et spermatozoïdes transférés.
- Les parois internes du tube doivent être parfaitement lisses et arrondies (11) afin d'éviter qu'un des oeufs ne reste accroché lors¬ qu'on les prélèvera pour les replacer dans la cavité utérine.
- Le bouchon (12) d'environ 1cm de haut sur 1,5cm de diamètre viendra se visser sur le col du tube pour en fermer l'orifice. Après rupture de la membrane une parfaite étancheité du tube est cependant nécessai¬ re afin d'éviter les perturbations du milieu et les éventuelles conta¬ minations résultant de sa mise en place dans la cavité vaginale. Cette étanchéité sera assurée par 2 joints, l'un en couronne enserrant le col du tube (13) d'une épaisseur d'environ 1mm; l'autre plat et rond (14) venant tapisser le fond du bouchon et d'une épaisseur identique. Pour en parfaire l'étanchéité le fond du bouchon présente en son mi- lieu un relief (15) dont le diamètre est sensiblement celui de l'ori¬ fice et qui permet, lors du vissage du bouchon, de bien appliquer le joint dans la lumière de l'orifice du tube.
- La paroi externe du bouchon présente des bords arrondis (16).
- Le matériau utilisé pour la réalisation sera un plastique rigide présentant une grande résistance mécanique (en cas de traumatisme) de type polypropylène non toxique pour les cultures cellulaires.
- Le tube et le milieu stériles seront emballés de façon individuelle sous emballage stérile, style papier cellophane; lors de L'emballage le bouchon ne sera pas totalement vissé afin d'éviter une rupture de la membrane. Un dispositif de contention permettant de maintenir le tube dans la cavité vaginale est représenté par la figure II. Ce dispositif se compose d'un anneau flexible, lui-même constitué d'une lame métallique (17) gainée de caoutchouc (18) à laquelle se trouve attachée une petite poche de caoutchouc (19) de la taille du tube et qui permet de l'y glisser. Le diamètre de cet anneau sera détermi¬ né, comme pour un diaphragme, pour chaque patiente en fonction de la taille de sa cavité utérine et de son col utérin lors d'une consul¬ tation avant fécondation in vitro. Ce dispositif permet de maintenir le tube dans le cul de sac vaginal postérieur sans risque pour la patiente de le perdre ou de créer des refroidissements du milieu de culture en rapport avec une position trop proche de l'orifice vuivai- re.
La démarche qui nous a permis d'aboutir à ce procédé technique et à son dispositif est basée sur des constatations et travaux de recherche. La première de ces constatations observée pendant 6 mois est qu'une fraction du milieu conservée dans un tube stérile herméti¬ quement fermé, sans interposition d'air dans la limite du possible, permet de la conserver plus de 10 jours sans perturbation et sans que son utilisation ne modifie les résultats classiquement obtenus. La deuxième constatation repose sur des études de fécondation de 3 ovocytes placés dans le même plot de boite, soit dans 1ml de milieu; elle montre l'obtention d'un pourcentage de clivage identique à celui obtenu classiquement lorsqu'un seul ovocyte est cultivé par plot. Le fait aussi que si un oeuf est laissé dans le même plot durant les 48 heures nécessaires à sa fécondation, ceci n'interférerait en ri', a sur son stade de développement.
Enfin des études multiples dont celles effectuées par "Nenezo" "V. ont montré des modifications très minimes du milieu de culture avant et après fécondation. m L'ensemble de ces constatations nous ont conduit à pratiquer des études préliminaires qui, bien que le nombre de patientes, le nombre des ovocytes et des oeufs concernés soient faibles nous ont incité à progresser, les résultats initiaux étant très encourageants.
Une première étude portant sur 8 patientes qui présentaient un nombre d'ovocytes supérieur à 4 par ponction a été réalisée. Environ la moitié des oeufs obtenus ont été cultivés de façon classique, l'au¬ tre moitié cultivée en tube hermétiquement fermé durant -48 heures à l'étuve. Aucune différence dans le taux de clivage n'a été observée. Deux patientes ont débuté une grossesse, ce qui correspond au pour¬ centage de succès classiquement obtenu.
Une deuxième série de 8 patientes présentant toujours plus de 4 ovocytes à la ponction, dont environ la moitié ont été cultivé de façon classique, l'autre moitié par la mise en pLace intra-utérin d'un tube contenant les oeufs. Là encore, les pourcentages de clivage étaient sensiblement équivalents et même légèrement supérieurs pour la technique de culture en intra-vaginale. 5 de ces patientes ont débuté une grossesse.
Bien que ces groupes soient trop petits pour pouvoir les comparer statistiquement et donc qu'il soit trop tôt pour en tirer des conclu¬ sions, ces résultats se montrent très encourageants et tout en conti¬ nuant une étude comparative du mode de culture classique et de celui s'effectuant dans la cavité vaginale, nous avons débuté des cultures intra-vaginales pures avec deux premières tentatives, l'une d'entre elle s'est soldée par une grossesse débutante.
Les intérêts de cette technique sont multiples et considérables: * > économie de temps et de manipulations diminuant ainsi les risques septiques et la toxicité vis à vis des oeufs. Economie financière ^ importante en rapport avec l'utilisation d'une moins grande quantité de milieu et de petit matériel de laboratoire. Et surtout ne nécessi¬ tant plus une étuve à C02 ou une couveuse, matériels lourds et chers. Simplicité d'utilisation permettant la formation très rapide d'une laborantine expérimentée et permettant ainsi une plus grande diffusion de la technique. Apport psychologique fondamental, la patiente se sentant plus directement concernée par la fécondation de ses oeufs. Il est peut-être trop tôt pour l'envisager, mais les bons résultats d'emblée obtenus sont peut-être en rapport avec une culture s'effec¬ tuant à une température qui varie dans le nycthémère et qu'aucune étuve ne peut reproduire actuellement. Cette variation thermique pou¬ vant jouer de façon tout à fait hypothétique un rôle important dans le développement de l'oeuf. Ce procédé permet aussi le transport des ovocytes et des embryons par la patiente elle-même ou dans un récep¬ tacle spécialement conçu pour une température stabilisée à 37e.

Claims

REVENDICATIONS
1) Conteneur permettant la fécondation des ovocytes et la culture des embryons humains en absence d'air enrichi en C02 dans la cavité vaginale de façon stérile, en diminuant les étapes de manipulations cause de toxicité, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un tube fermé, étanche.
2) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par une forme cylindrique mais qui pourra être piriforme ou ronde en fonction de la plastique vaginale, aux parois externes lisses et arrondies (1) évitant ainsi toute irritation de la muqueuse vaginale, qui présen¬ tent une surface rectangulaire permettant d'inscrire le nom de la patiente à laquelle appartient les oeufs, aux parois internes égale¬ ment lisses et arrondies (11) afin d'éviter qu'un oeuf puisse y rester accroché.
3) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par un volume et une taille faibles afin de ne pas être gênant dans la cavité vagi¬ nale, ces tailles et volumes pouvant augmenter en raison d'un nombre d'ovocytes plus important à cultiver.
4) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par le milieu de culture (8) stérile présent dès sa fabrication, dont la stabilité est maintenue par une fine membrane (9) qui vient fermer hermétique¬ ment l'orifice du tube et qui peut être facilement rompue par une pipette en verre ou un embout de pipette stérile lors de la féconda¬ tion, ou par l'intermédiaire d'une petite valve.
5) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par un bouchon (.121 aux parois externes lisses et arrondies qui se visse sur le tube à l'aide d'un pas de vis (4) situé sur la paroi externe du col évitant ainsi les fautes d'aseptie, dont le fond présente un relief (15) de diamètre sensiblement identique à celui de l'orifice (7). ό) Conteneur selon les revendications 1 et 5 caractérisé par sa fermeture étanche, après rupture de son hermétisme suite à la dépose des ovocytes et des spermatozoïdes dans le tube, réalisée par le bou¬ chon vissé (12) par les deux joints de caoutchouc l'un au fond du bouchon (14) l'autre en couronne autour du col du tube (13) et par le relief (15) au fond du tube qui comprime le joint de caoutchouc à l'orifice (7) du tube.
7) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par un orifice (7) de faible diamètre et réduit par rapport au diamètre interne du tube afin d'éviter le plus possible les perturbations biochimiques du milieu de culture créées par le milieu ambiant lors de la dépose des ovocytes et spermatozoïdes après rupture de la membrane qui l'obs¬ truait (9).
8) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par le matériau qui le constitue, plastique rigide de type polypropylène très résis¬ tant d'un point de vue mécanique sans danger pour la cavité vaginale en cas de rupture, non toxique pour les embryons.
9) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par son disposi¬ tif de contention (Fig. II) permettant de le maintenir dans le cul de sac postérieur de la cavité vaginale sans risque de le perdre ou de perturber la culture, dispositif composé d'un anneau flexible com¬ prenant une lame métallique (17) gainée de caoutchouc (18) et auquel est fixée une poche de caoutchouc (19) aux dimensions adaptées pour recevoir le conteneur.
10) Conteneur selon la revendication 1 caractérisé par un emballa¬ ge individuel stérile, type poche de cellophane.
11) Utilisation du dispositif selon les revendications précédentes prises dans leur ensemble pour la fécondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en C02, de façon stérile, dans la cavité vaginale ou en étuve et pour leur transport.
PCT/FR1986/000378 1985-11-08 1986-11-07 Conteneur pour fecondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en co2 WO1987002879A1 (fr)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT86906357T ATE57603T1 (de) 1985-11-08 1986-11-07 Behaelter zur befruchtung menschlicher eizellen in c02-freier luft.
SU4203032/14A RU2068253C1 (ru) 1985-11-08 1986-11-07 Контейнер для оплодотворения яйцеклеток
DE8686906357T DE3675206D1 (de) 1985-11-08 1986-11-07 Behaelter zur befruchtung menschlicher eizellen in d12-freier luft.
JP61505927A JPH082360B2 (ja) 1985-11-08 1986-11-07 Ｃｏ▲下２▼に富む空気の不存在の場合のヒト卵細胞の受精用容器
UA4203032A UA18716A1 (uk) 1985-11-08 1986-11-07 Коhтейhер для заплідhеhhя яйцеклітиh
DK349487A DK349487D0 (da) 1985-11-08 1987-07-07 Beholder til fertilisation af ovocyter

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR8516558A FR2589879B1 (fr) 1985-11-08 1985-11-08 Conteneur pour culture anaerobie d'embryons humains
FR85/16558 1985-11-08

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO1987002879A1 true WO1987002879A1 (fr) 1987-05-21

Family

ID=9324630

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/FR1986/000378 WO1987002879A1 (fr) 1985-11-08 1986-11-07 Conteneur pour fecondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en co2

Country Status (9)

Country Link
US (1) US4902286A (fr)
EP (1) EP0245332B1 (fr)
JP (1) JPH082360B2 (fr)
AU (1) AU594991B2 (fr)
DE (1) DE3675206D1 (fr)
FR (1) FR2589879B1 (fr)
RU (1) RU2068253C1 (fr)
UA (1) UA18716A1 (fr)
WO (1) WO1987002879A1 (fr)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2617864A1 (fr) * 1987-07-10 1989-01-13 Instr Medecine Veterinaire Receptacle de confinement d'un liquide biologique

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2614626B1 (fr) * 1987-04-30 1989-07-21 Ranoux Claude Conteneur pour fecondation des ovocytes et replacement des embryons chez l'homme et l'animal
FR2614899B1 (fr) * 1987-05-07 1989-08-11 Ranoux Claude Dispositif pour preparation selection et capacitation des spermatozoides humains et animaux par filtration
DK119490D0 (da) * 1990-05-14 1990-05-14 Unes As Apparat til fremstilling af et koncentrat af koagulationsfaktorer, saasom fibrinogen, fra en blodportion
DK167517B1 (da) * 1991-11-11 1993-11-15 Squibb & Sons Inc Beholder til optagelse og adskillelse af en vaeske, fortrinsvis blodplasma, i dennes bestanddele
US5928935A (en) * 1995-09-26 1999-07-27 Reuss, Jr.; William Alexander Biological specimen containment and incubation device
US6050935A (en) * 1997-05-09 2000-04-18 Biofertec Container assembly for intravaginal fertilization and culture and embryo transfer and method of intravaginal fertilization and culture employing such a container
EP1336682A3 (fr) * 2002-02-18 2004-01-02 Carl Freudenberg KG Procédé pour réduire le boulochage
ES2295275T3 (es) 2002-10-04 2008-04-16 Becton Dickinson And Company Frasco de cultivo.
US7759115B2 (en) * 2003-02-10 2010-07-20 Bio X Cell, Inc. Incubation and/or storage container system and method
WO2005121321A2 (fr) 2004-05-17 2005-12-22 The General Hospital Corporation Compositions comprenant des cellules souches germinales femelles et leurs procedes d'utilisation
EP2697365A4 (fr) 2011-04-14 2014-07-23 Gen Hospital Corp Compositions et méthodes de transfert d'énergie autologue des mitochondries dans les cellules germinales
EP3495470A1 (fr) 2011-06-29 2019-06-12 The General Hospital Corporation Procédés in vivo permettant d'améliorer l'état bioénergétique dans des cellules germinales femelles
US20210145560A1 (en) * 2019-11-20 2021-05-20 Invo Bioscience, Inc. Intravaginal culture incubation container and method

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2456607A (en) * 1946-08-14 1948-12-14 Shaffer Stewart Liner lid for containers
FR2194453A1 (fr) * 1972-08-04 1974-03-01 Alter Richard
US4380997A (en) * 1981-04-07 1983-04-26 Rio Vista International, Inc. Embryo transfer method and apparatus
EP0131166A1 (fr) * 1983-06-14 1985-01-16 Fertility And Genetics Research, Inc. Dispositif non-chirurgical pour transplantation d'un embryon humain

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US1877766A (en) * 1931-05-13 1932-09-20 James W Kennedy Dilator
GB558998A (en) * 1942-08-24 1944-01-31 William Simon Freeman Improvements in or relating to stoppers for bottles and other containers
US2707471A (en) * 1952-12-12 1955-05-03 Fred W Koff Surgical appliance
US2818064A (en) * 1954-06-22 1957-12-31 Leff Morris Cervical shield
US3239429A (en) * 1963-02-25 1966-03-08 Nicholas J Menolasino Apparatus for testing the effectiveness of sterilization by heat
US3875012A (en) * 1974-01-30 1975-04-01 Wadley Res Inst & Blood Bank Apparatus and method for the detection of microbial pathogens
US4300544A (en) * 1978-09-05 1981-11-17 Dia-Sert Corp. Disposable female contraceptive
US4598045A (en) * 1982-08-25 1986-07-01 Hana Biologics, Inc. Triphasic mycoplasmatales detection method
US4427477A (en) * 1983-03-11 1984-01-24 Milex Products, Incorporated Method for making a lipped vaginal contraceptive diaphragm
US4533345A (en) * 1983-06-14 1985-08-06 Fertility & Genetics Associates Uterine catheter
US4579823A (en) * 1983-09-27 1986-04-01 Ryder International Corporation Sterilization indicator
CH665611A5 (de) * 1984-04-25 1988-05-31 Rainer Scholzen Behaelter zum versenden eines praeparates unter anaeroben bedingungen.
US4555037A (en) * 1984-06-07 1985-11-26 Rhees John T Tamper evident inner seal for containers
US4761379A (en) * 1984-08-09 1988-08-02 Becton, Dickinson And Company Biological specimen collection device
US4747500A (en) * 1985-01-22 1988-05-31 Sunbeam Plastics Corporation Tamper indicating transparent closure

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2456607A (en) * 1946-08-14 1948-12-14 Shaffer Stewart Liner lid for containers
FR2194453A1 (fr) * 1972-08-04 1974-03-01 Alter Richard
US4380997A (en) * 1981-04-07 1983-04-26 Rio Vista International, Inc. Embryo transfer method and apparatus
EP0131166A1 (fr) * 1983-06-14 1985-01-16 Fertility And Genetics Research, Inc. Dispositif non-chirurgical pour transplantation d'un embryon humain

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2617864A1 (fr) * 1987-07-10 1989-01-13 Instr Medecine Veterinaire Receptacle de confinement d'un liquide biologique
US5006117A (en) * 1987-07-10 1991-04-09 Instruments Medecine Veterinaire Container for biological liquids

Also Published As

Publication number Publication date
RU2068253C1 (ru) 1996-10-27
UA18716A1 (uk) 1997-12-25
EP0245332A1 (fr) 1987-11-19
DE3675206D1 (de) 1990-11-29
JPS63501272A (ja) 1988-05-19
AU6620586A (en) 1987-06-02
US4902286A (en) 1990-02-20
FR2589879A1 (fr) 1987-05-15
AU594991B2 (en) 1990-03-22
JPH082360B2 (ja) 1996-01-17
EP0245332B1 (fr) 1990-10-24
FR2589879B1 (fr) 1989-05-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0245332B1 (fr) Conteneur pour fecondation des ovocytes humains en absence d'air enrichi en co 2?
CA2406363C (fr) Assemblage de conteneur utilise pour la culture, la fertilisation et le transfert d'embryons et procede de fertilisation et de culture au moyen dudit conteneur
US9565854B2 (en) Systems and methods for cryopreservation of cells
US8936905B2 (en) Systems and methods for cryopreservation of cells
Stachecki et al. A new safe, simple and successful vitrification method for bovine and human blastocysts
CA2656139C (fr) Dispositifs et procedes pour la cryoconservation de cellules
US20060147894A1 (en) Jacketed vessel for holding semen for sex biasing mammals through artificial insemination and systems and methods for enhancing the probability of sex biasing using the same
CA2090721C (fr) Procede de fecondation en cycle spontane
JP2009148221A (ja) 生殖細胞凍結保存容器及び生殖細胞凍結保存方法
US5135865A (en) Container for fertilization of human ovocytes in the absence of CO2 -enriched air
EP0205358A1 (fr) Dispositif de fécondation "in vivo-in vitro"
US20160120133A1 (en) System for Plant Development
CN207411377U (zh) 一种适于组织保存的冻存袋
WO2021102473A1 (fr) Récipient amélioré d'incubation de culture intravaginale et procédé associé
AU2009200073B2 (en) Systems and methods for cryopreservation of cells
JP3203186U (ja) 密度勾配遠心分離法用精子洗浄濃縮キット
US20220135920A1 (en) Gas permeable intravaginal culture device
RU2250757C2 (ru) Узел контейнера для оплодотворения, культивирования и переноса эмбриона, а также способ оплодотворения и культивирования с использованием такого контейнера
CN202112210U (zh) 一种精子冷冻装置
Fuller et al. Preparation of Mouse Feeder Cells for Fusion and Cloning
Karp Novel mechanisms of reproduction: preimplantational ectogenesis

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AU BR DK FI JP KP KR MC MG NO SD SU US

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AT BE CF CG CH CM DE FR GA GB IT LU ML MR NL SE SN TD TG

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 1986906357

Country of ref document: EP

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 1986906357

Country of ref document: EP

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 1986906357

Country of ref document: EP