WO2002095385A1 - Biocapteur - Google Patents

Biocapteur Download PDF

Info

Publication number
WO2002095385A1
WO2002095385A1 PCT/JP2002/004826 JP0204826W WO02095385A1 WO 2002095385 A1 WO2002095385 A1 WO 2002095385A1 JP 0204826 W JP0204826 W JP 0204826W WO 02095385 A1 WO02095385 A1 WO 02095385A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
filter
sample liquid
holding
liquid supply
biosensor
Prior art date
Application number
PCT/JP2002/004826
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Miwa Hasegawa
Tomohiro Yamamoto
Motokazu Watanabe
Takahiro Nakaminami
Shin Ikeda
Toshihiko Yoshioka
Shiro Nankai
Original Assignee
Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. filed Critical Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.
Priority to US10/924,334 priority Critical patent/USRE39390E1/en
Priority to EP02771728A priority patent/EP1318396B1/en
Priority to US10/363,589 priority patent/US6706232B2/en
Publication of WO2002095385A1 publication Critical patent/WO2002095385A1/ja

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/001Enzyme electrodes

Definitions

  • the present invention relates to a biosensor, particularly a cholesterol sensor, which can quickly, highly sensitively and easily measure a specific component in a sample.
  • an electrode system including at least a measurement electrode and a counter electrode is formed on an insulating substrate by a method such as screen printing, and a hydrophilic polymer, an oxidoreductase, and an electronic media are formed on the electrode system.
  • a glucose sensor obtained by forming an enzyme reaction layer including overnight.
  • Glucose oxidase is used as the oxidoreductase, and metal complex-organic compounds such as potassium pheiliocyanide, phenoctene derivatives, and quinone derivatives are used in the electron mediator.
  • a buffer is added to the enzyme reaction layer as needed.
  • the enzyme reaction layer dissolves, the enzyme reacts with the substrate, and the electron media is reduced along with this reaction.
  • the substrate concentration in the sample solution can be determined from the oxidation current value at which the reduced electron media is electrochemically oxidized.
  • the reduced form of the electron media generated as a result of the enzyme reaction is oxidized at the electrode, and the glucose concentration is determined from the oxidation current value.
  • Such a biosensor uses an enzyme that uses the substance to be measured as a substrate.
  • measurement of various substances is possible in principle. For example, if cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase is used as an oxidoreductase, it is possible to measure the cholesterol level in serum used as a diagnostic guide in various medical institutions.
  • the reaction system contains a surfactant
  • the surfactant has an adverse effect on blood cells, so that it is impossible to measure whole blood itself as with a glucose sensor.
  • the hematocrit value (red blood cell volume ratio) differs depending on the sample solution, and the degree of expansion of the filter also changes due to this. If the distance between the upper and lower portions of the holding portion is set to be large assuming the thickness of the initially expanded fill, the fill may be shifted during the storage period. Furthermore, if the thickness of the filter is made thinner than in the past to reduce the amount of sample solution, the end of the primary part of the filter as in the conventional method (Japanese Patent Application No. 2000-3990956) is required. Simply sucking the sample liquid from the section will reduce the amount of sample liquid that can be absorbed within a certain period of time.
  • the outflow rate of plasma from the secondary side of the filter becomes slower, and the speed of saturation of plasma in the sensor, especially in the sample solution supply path, becomes slower, which increases the measurement time.
  • the suction area is increased to increase the amount of sample solution that can be absorbed within a certain period of time, and the sample solution is dropped from the top of the filter, the sample solution fills the filter faster than the sample liquid permeates the filter.
  • the speed that flows over the surface is faster. Therefore, the sample liquid flowing on the surface of the filter flows into the sample liquid supply path from the opening of the sample liquid supply path connecting the sample liquid supply path and the filter, and causes a measurement error.
  • An object of the present invention is to provide an improved biosensor that eliminates the above-mentioned inconveniences and improves blood cell-filtered plasma to quickly reach an electrode system.
  • An object of the present invention is to provide a cholesterol sensor having high accuracy and excellent responsiveness and measuring whole blood. Disclosure of the invention
  • the biosensor of the present invention comprises: an insulating substrate; an electrode system having a working electrode and a counter electrode provided on the substrate; a reagent including at least an oxidoreductase and an electron mediator; and the electrode system and the reagent.
  • a sample liquid supply path having an air hole on the end side, a sample liquid supply section, and a filter provided between the sample liquid supply path and the sample liquid supply section for filtering blood cells.
  • FIG. 1 is an exploded perspective view of a biosensor according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a perspective view of the biosensor according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 3 is a schematic longitudinal sectional view of the biosensor shown in FIG.
  • FIG. 4 is an enlarged cross-sectional view near the electrode system of a biosensor according to another embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is a diagram showing response characteristics of the cholesterol sensor according to the example of the present invention. BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
  • the present invention relates to a filter for filtering blood cells, which is provided between a sample liquid supply path including an electrode system and a reagent and having an air hole at a terminal end side, and a sample liquid supply section.
  • a biosensor in which plasma from which blood cells have been filtered by the filter is sucked into the sample liquid supply path by capillary action, wherein a first holding portion for holding a primary portion of the filter from below. .
  • the “primary part” of a filter refers to a part closer to a sample supply unit to which a sample is supplied
  • the “secondary part” of a filter refers to a sample on which an electrode system is provided. Refers to the part closer to the supply path.
  • the board side of the board is “bottom” and the opposite side of the board is “up”.
  • the first holding part contacts only the lower side, so that the filter can expand upward when the sample liquid is sucked.
  • the third pressing portion is in contact only with the upper side, so that the filter can expand downward when the sample liquid is sucked.
  • the filter that has sucked the sample liquid can expand even in the gap that surrounds the filter between the second pressing part and the third pressing part. If there is no gap surrounding the filter, blood cells that have passed through the filter holding part without passing through the filter may flow into the electrode system. In this way, the member that holds the filter can minimize the portion that hinders the dimensional change of the filter due to expansion, thereby freely changing the pore size of the filter and performing filtration without breaking blood cells.
  • the first pressing part is in contact only with the lower side, an opening is provided in the upper part to expose the primary part to the outside of the biosensor. This allows the sample liquid to be dropped directly on the filter.
  • the third holding portion located above the central portion of the filter functions as a weir that prevents the sample liquid dropped from the opening from flowing on the upper surface of the filter. This can prevent the sample liquid from entering the sample liquid supply path without going through the filtration step.
  • a redox compound having an electron transfer ability with an oxidoreductase such as cholesterol oxidase can be selected.
  • An oxidoreductase is an enzyme that uses a measurement target as a substrate, and a sensor that uses glucose as a measurement target uses glucose oxidase.
  • a sensor that uses glucose as a measurement target uses glucose oxidase.
  • cholesterol oxidase an enzyme that catalyzes the cholesterol oxidation reaction, or an enzyme that catalyzes the process of converting cholesterol dehydrogenase and cholesterol ester into cholesterol Cholesterol esterase is used. Since the progress of the cholesterol esterase enzymatic reaction is very slow, the addition of a suitable surfactant can improve the activity of cholesterol esterase and reduce the time required for the entire reaction.
  • an electrode system may be formed by mixing a reagent and a conductive material constituting an electrode.
  • a sensor having a cover member which is combined with a substrate provided with an electrode system to form a sample liquid supply path for supplying a sample liquid to the electrode system between the substrate and the substrate, a portion exposed to the sample liquid supply path or a sample Open liquid supply path It can be provided at the mouth or the like.
  • the reagent can be easily dissolved by the introduced sample solution and reach the electrode system.
  • a hydrophilic polymer layer is formed in contact with the electrode system in order to protect the electrodes and prevent the formed reagent from peeling off.
  • a hydrophilic polymer layer is formed as a base for forming the reagent, or that the lowermost layer of the reagent contains a hydrophilic polymer.
  • the layer containing the electronic media is preferably separated from the surfactant in order to enhance the solubility.
  • a lipid-containing layer is formed so as to cover a layer formed on an electrode system or the like so that a sample solution can be easily introduced into a reagent (for example, see Japanese Patent Application Laid-open No. 2—0629252 publication).
  • a part of the reagent is formed by a freeze-drying method (for example, Japanese Patent Application No. 2000-018384) or the surface of a cover member. It is preferable to impart hydrophilicity by treating with a surfactant or plasma irradiation. With such a configuration, the lipid layer may not be provided.
  • hydrophilic polymer examples include water-soluble cellulose derivatives, in particular, ethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, carboxymethyl cellulose, polybierpyrrolidone, polybier alcohol, gelatin, agarose, polyacrylic acid and salts thereof. , Starch and derivatives thereof, polymers of maleic anhydride and salts thereof, polyacrylamides, methacrylate resins, poly-1-hydroxyethyl methacrylate, and the like.
  • water-soluble cellulose derivatives in particular, ethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, carboxymethyl cellulose, polybierpyrrolidone, polybier alcohol, gelatin, agarose, polyacrylic acid and salts thereof.
  • Starch and derivatives thereof polymers of maleic anhydride and salts thereof, polyacrylamides, methacrylate resins, poly-1-hydroxyethyl methacrylate, and the like.
  • surfactant for example, n-year-old / 3-D-thiodarkosi , Polyethylene glycol monododecyl ether, sodium cholate, dodecyl-jS-maltoside, diucrose monolaurate, sodium deoxycholate, sodium taurodeoxycholate, N, N-bis (3-D-dalconamid) Dipropyl) amide and polyoxyethylene (10) octyl phenyl ether.
  • amphiphilic lipids such as phospholipids such as lecithin, phosphatidylcholine, and phosphatidylethanolamine are preferably used.
  • a method for measuring the oxidation current there are a two-electrode method using only the measurement electrode and the counter electrode, and a three-electrode method including a reference electrode.
  • the three-electrode method enables more accurate measurement.
  • FIG. 1 is an exploded perspective view of a biosensor according to a preferred embodiment.
  • the insulating substrate 1 is made of an insulating resin such as polyethylene terephthalate.
  • An electrode system including a working electrode 2 and a counter electrode 3 is formed on the left side of the substrate 1 in FIG. 1 by forming a palladium thin film by sputtering or vapor deposition and performing laser trimming. The area of the electrode is determined according to the width of a slit 9 formed on the spacer 6 described later. Further, a hole 4 is formed in the substrate 1.
  • the spacer 6 combined with the substrate 1 has an auxiliary slit 7 for accommodating the filter 5, a slit 9 forming a sample liquid supply path 9 ′, and an opening 8 communicating from the auxiliary slit 7 to the slit 9. Are formed.
  • the cover 10 is provided with a hole 11 and an air hole 12, and the auxiliary plate 13 is provided with a hole 14 for supplying a sample liquid to the filter 5.
  • a hole 15 and a partition 18 serving as a third holding portion are formed. Have been.
  • the auxiliary upper cover 16 is formed with a hole 17 constituting a sample liquid supply unit for dropping the sample liquid to the filter 5, and the auxiliary lower cover 20 is formed of a flat plate.
  • the right lower part of the auxiliary slit 7 in FIG. 1 When the components shown in FIG. 1 are integrated, the right lower part of the auxiliary slit 7 in FIG. 1, the right part of the hole 11 formed in the cover 10 and the auxiliary plate 13 are formed.
  • the hole 14 formed in the auxiliary upper cover 16 and the hole 17 formed in the auxiliary upper cover 16 communicate with each other.
  • the filter (blood cell filtration unit) 5 is made of glass fiber filter paper and has a shape of an isosceles triangle with a base of 3 mm and a height of 5 mm as shown in Fig. 1 when projected on the same plane as the substrate 1. Having. A semicircular portion (not shown) having a radius of 0.4 mm is formed at the tip of the secondary side portion.
  • the thickness of the filter 5 is about 300 to 400 m.
  • this sensor To assemble this sensor, first, place the board 1 on the auxiliary lower cover 20 in the positional relationship shown by the dashed line in FIG. 1, and make sure that the right edge of the auxiliary lower cover 20 and the board 1 match. Then, a combined substrate A is obtained.
  • the combined substrate B is obtained by combining the parts corresponding to the base side of the isosceles triangle formed in the slit 7 so as to match.
  • a reaction layer is formed on a portion of the cover 10 facing the slit 9, that is, on an upper portion of the sample supply passage 9 ′ as described later.
  • a combined board A consisting of the board 1 and the auxiliary cover 20 and a combined board B consisting of the cover 10 and the spacer 6 are combined in a positional relationship as shown by a dashed line in FIG.
  • the right end (bottom side) of the primary part of the filter 5 having an isosceles triangular shape is A filter 5 is installed so as to coincide with the hole 11 and the right end of the auxiliary slit 7.
  • the filter 5 is disposed on the substrate 1 and is fitted into the auxiliary slit 7 of the spacer 6 and the hole 11 of the cover 10.
  • the tip of the secondary part of the filter 5 enters the sample supply path 9 ′ formed by the slit 9, is sandwiched between the substrate 1 and the cover 10, and this part constitutes a second holding part. The details will be described later.
  • FIG. 2 is a schematic perspective view of the biosensor of the present invention obtained as described above.
  • Fig. 3 shows the cross-sectional structure.
  • FIG. 3 is a schematic longitudinal sectional view of the biosensor of the present invention, and corresponds to the XX sectional view shown in FIG.
  • holes 15 and 4 are formed so that the filter 5 and other members are not in contact with each other.
  • a hole (gap) 15 surrounding the filter 5 is formed between the third pressing portion c for holding the central portion of the filter from above and the second pressing portions b and b 'and the third pressing portion c.
  • a cavity exists in a portion below the filler 5 and below the third holding portion c, which forms a hole (void) 4 connected to the hole 15. ing.
  • FIG. 4 is a schematic longitudinal sectional view showing still another embodiment of the biosensor of the present invention.
  • the reaction layer and electrode system are omitted in Fig. 2, Fig. 4 shows the reaction Figure 2 shows layers and electrode systems.
  • the other members shown in FIG. 4 are the same as those shown in FIG. 3.
  • the biosensor of the present invention shown in FIGS. Although manufactured, the auxiliary upper cover 16 and the auxiliary plate 13 may be formed of one member, or these and the cover 10 may be formed of one member. Furthermore, the auxiliary cover 20 and the substrate 1 may be composed of one member.
  • the sample liquid is supplied from the sample liquid supply section composed of the holes 17 of the auxiliary upper cover 16 to the portion (sample supply section) holding the filter 5.
  • Supply blood The blood supplied here penetrates from the upper surface of the primary part of the filter 5 into the inside of the filter. ⁇ In the filter 5, the blood cells penetrate at a lower rate than the liquid component plasma, and the plasma Exudes from the end of the secondary part of the filter 5.
  • the exuded plasma is formed by a slit 9 extending to the vicinity of the electrode system and further to the air hole 12 while dissolving the reaction layer carried on the position covering the electrode system and / or the back surface of the cover 10. Fills the entire sample liquid supply path 9 '.
  • the filter 5 has a sufficient flow rate between the plasma and the blood cells to such an extent that the blood cells do not reach the secondary side of the filter 5 even though a sufficient amount of plasma has passed through the sample liquid supply channel 9 ′. It must be designed to have a difference in resistance.
  • a dives filter having a hole diameter of about 1 to 7 m is suitable.
  • the thickness of the filter is preferably 300 to 400 m.
  • FIG. 4 shows an example of the arrangement of reaction layers in the vicinity of the electrode system of the sample liquid supply path 9 '.
  • a layer 21 of a hydrophilic polymer such as a sodium salt of carboxymethylcellulose (hereinafter simply referred to as “CMC”) and a reaction layer containing a reaction reagent such as an electron mediator are provided on the electrode system of the substrate 1.
  • CMC carboxymethylcellulose
  • 22 a is formed on the electrode system of the substrate 1
  • a reaction layer 22b containing an oxidoreductase is formed on the back surface of the cover member combining the cover 10 and the spacer 6 on the surface exposed to the sample liquid supply passage 9 '.
  • the cross-sectional area of the sample liquid supply path 9 ′ formed by the slit 9 in the direction perpendicular to the liquid flow direction is smaller than the cross-sectional area of the primary part of the filter 5.
  • a portion 1 mm from the secondary side of the filter 5 is compressed and installed near the opening 8 of the sample liquid supply passage 9 '.
  • the compressed portion of the filter 5 be about 1 mm from the end of the secondary part in the case of the suction force of the sensor size in the embodiment of the present invention.
  • the degree of compression of the secondary part of Filler 5 it was only necessary to compress the secondary part to be about 1/4 to 1 Z3 of the primary part.
  • the reaction layer generally has a portion that is easily dissolved and a portion that is hardly dissolved.
  • the dissolving portion is difficult to dissolve at the edge of the sample liquid supply passage 9 ′, that is, at the portion along the wall surface of the slit 9 of the spacer 6 and at the center in the liquid flow direction. Since the sample liquid that has passed through the filter 5 flows preferentially along the spacer 6, the sample liquid may block the air holes even though the central part is not completely melted. . Since the central part of the secondary part of the filter 5 protrudes into the sample liquid supply path 9 ′ from both left and right ends, it flows preferentially through the central part of the sample liquid supply path 9 ′. Plasma can quickly flow into the sensor without leaving air bubbles in the center of the sample liquid supply passage 9 '.
  • the electrode system is a noble metal electrode.
  • the width of the sample liquid supply path is preferably 1.5 mm or less, so that the accuracy of determining the electrode area is inferior for a printing electrode using a screen.
  • precious metal electrodes can be laser-trimmed with a width of 0.1 mm, and the accuracy of determining the electrode area is high.
  • a cholesterol sensor having the structure shown in FIGS. 1 to 4 was prepared, in which the reaction layer 22a contained electron media and the reaction layer 22b contained cholesteryl oxidase, cholesterol esterase, and a surfactant.
  • a CMC layer 21 was formed on the electrode system of the substrate 1 by dropping 51 drops of a 0.5: 1% aqueous solution of CMC in a hot air dryer at 50 ° C for 10 minutes. did.
  • a surfactant polyoxyethylene (10) octylphenyl was added to an aqueous solution containing cholesterol oxidase derived from Nocardia (EC1.1.3.6) and cholesterol esterase derived from Pseudomonas (EC3.1.1.13). Ether (TritonX-100) was added.
  • This mixed solution 0.641 is dropped into the slit 9 (sample supply path 9 ') formed by integrating the cover 10 and the spacer 6, and the liquid nitrogen at -196 ° C is added.
  • the width of the slit 9 was 0.8 mm, and the length of the slit 9 (the length from the opening of the sample liquid supply passage 9 ′ to the air hole) was 4.5 mm.
  • the thickness of the spacer 6 (the distance between the substrate 1 and the cover 10) was 100 m.
  • Filter 5 is made of glass fiber filter paper about 370 m thick. An isosceles triangle with a base of 3 mm and a height of 5 mm was used. The tip of the secondary part (the part that comes into contact with the opening 8 of the sample liquid supply path 9 ') is rounded, and the combined substrate A consisting of the substrate 1 and the auxiliary lower cover 20 is covered with the cover 10 It was installed between the united substrates B composed of the spacers 6.
  • FIG. 5 is a graph showing the relationship between total cholesterol concentration and response current.
  • the blood cell which is an interfering substance is removed without hemolysis by a filter, and even if the filter is thin, the plasma after a blood cell removal can be rapidly supplied to an electrode system. Therefore, a chemical biosensor having excellent response characteristics can be provided.

Description

明 細 書
パイォセンサ 技術分野
本発明は、 試料中の特定成分について、 迅速、 高感度、 かつ簡便に定 量することができるバイオセンサ、 特にコレステロールセンサに関する, 背景技術
従来のバイォセンサの例を、 グルコースセンサについて説明する。 代表的なものとして、 絶縁性の基板上にスクリーン印刷などの方法に より、 少なくとも測定極および対極を含む電極系を形成し、 この電極系 上に、 親水性高分子、 酸化還元酵素および電子メデイエ一夕を含む酵素 反応層を形成して得られるグルコースセンサがある。 酸化還元酵素には グルコースォキシダーゼが、 また電子メディエー夕にはフエリシアン化 カリウム、 フエ口セン誘導体、 キノン誘導体などの金属錯体ゃ有機化合 物などがそれぞれ用いられる。 酵素反応層には、 必要に応じて緩衝剤が 加えられる。
このバイォセンサの酵素反応層上に、 基質を含む試料液を滴下すると. 酵素反応層が溶解して、 酵素と基質が反応し、 この反応に伴い電子メデ イエ一夕が還元される。 酵素反応終了後、 この還元された電子メデイエ 一夕を電気化学的に酸化する酸化電流値から試料液中の基質濃度を求め ることができる。
このタイプのグルコースセンサでは、 酵素反応の結果生じた電子メデ ィエー夕の還元体を電極で酸化し、 その酸化電流値からグルコース濃度 を求める。
このようなバイォセンサは、 測定対象物質を基質とする酵素を用いる ことで、 様々な物質に対する測定が原理的には可能である。 例えば、 酸 化還元酵素にコレステロールォキシダーゼまたはコレステロールデヒド ロゲナーゼを用いれば、 各種医療機関で診断指針に用いられる血清中の コレステロール値を測定することができる。
コレステロールエステラーゼの酵素反応の進行は非常に遅いので、 適 切な界面活性剤を添加することにより、 コレステロールエステラーゼの 活性を向上させ、 全体の反応に要する時間を短縮することができる。
しかし、 反応系に界面活性剤が含まれることから、 界面活性剤が血球 に悪影響を及ぼすため、 グルコースセンサのように全血そのものを測定 することは不可能である。
そこで、 血球をろ過した血漿のみを迅速にセンサ内に供給するために. 試料液供給路の開口部付近にフィルタ (血球ろ過部) を設ける提案がな されている。 しかし、 センサ内へのフィル夕の組み込み方が適していな いと、 フィルタ内に捕捉される血球が破壌され、 ヘモグロビンが溶出し てしまう。 ヘモグロビン程度にまで小さくなると、 血球成分をフィルタ でろ過することが困難となり、 試料液供給路内にヘモグロビンが流入し. 測定誤差の原因となってしまう。
これは、 試料液を吸収する前のフィルタの厚みと、 試料液を吸収した 後に膨張したフィル夕の厚みとの差が、 フィル夕を上下から保持してい る押さえ部の間隔と適合していない点に原因があると考えられる。 フィ ル夕を上下から保持している押さえ部の間隔が、 膨張したフィルタの厚 みに対して狭すぎると、 フィルタの膨張が妨げられる。 そして、 膨張が 妨げられたフィルタの孔径は十分に広がることができず、 浸透してきた 血球を破壊してしまうのである。
これに対し、 試料液によってそのへマトクリット値 (赤血球容積比) が異なり、 これに起因してフィルタの膨張の程度も異なるため、 あらか じめ膨張したフィル夕の厚みを想定して前記押さえ部の上下の間隔を広 めに設定すると、 保存期間中にフィル夕がずれてしまうおそれがある。 さらに、 試料液の量を低減するために従来よりもフィルタの厚みを薄 くすると、 従来法 (特願 2 0 0 0— 3 9 9 0 5 6号) のようにフィルタ の一次側部分の端部から試料液を吸引させただけでは、 一定時間内に吸 収できる試料液の量が減ってしまう。 そのため、 フィル夕の二次側部分 から出る血漿の流出速度が遅くなり、 センサ内、 特に試料液供給路内が 血漿で飽和する速度が遅くなることから、 測定時間が長くなつてしまう', これに対し、 一定時間内に吸収できる試料液の量を増やすために吸引 面積を広くし、 フィルタの上部から試料液を滴下すると、 フィルタに試 料液が浸透する速度よりも試料液がフィル夕の表面を流れる速度の方が 速くなる。 そのため、 フィルタの表面を流れた試料液が、 試料液供給路 とフィルタを接続する試料液供給路の開口部から、 試料液供給路内へ流 入し、 測定誤差を引き起こす原因となってしまう。
本発明は、 上記のような不都合をなくし、 血球をろ過された血漿が迅 速に電極系に達するように改良したバイオセンサを提供することを目的 とする。
本発明は、 高精度で応答性に優れ、 全血を測定対象とするコレステロ ールセンサを提供することを目的とする。 発明の開示
本発明のバイオセンサは、 絶縁性の基板、 前記基板上に設けられた作 用極と対極を有する電極系、 少なくとも酸化還元酵素と電子メディェ一 夕を含む試薬、 前記電極系と前記試薬とを含み、 終端部側に空気孔を有 する試料液供給路、 試料液供給部、 および前記試料液供給路と試料液供 給部との間に設けられた、 血球をろ過するフィルタを具備し、 前記フィ ルタで血球をろ過された血漿が毛細管現象によって前記試料液供給路内 に吸引されるようにしたバイオセンサであって、 前記フィル夕の一次側 部分を下から保持する第一押さえ部、 前記フィルタの二次側部分を上下 から保持する第二押さえ部、 前記フィル夕の中央部分を上から保持する 第三押さえ部、 および前記第二押さえ部と第三押さえ部との間において 前記フィル夕を囲む空隙部を有することを特徴とする。
前記フィル夕の一次側部分が、 バイォセンサの上面から外部に露出し ているのが有効である。 また、 前記フィル夕の二次側部分と前記作用極 とが非接触であるのが有効である。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の一実施の形態に係るバイオセンサの分解斜視図であ る。
図 2は、 本発明の一実施の形態に係るバイオセンサの斜視図である。 図 3は、 図 2に示すバイオセンサの概略縦断面図である。
図 4は、 本発明の他の実施の形態に係るバイオセンサの電極系付近の 拡大断面図である。
図 5は、 本発明の実施例のコレステロールセンサの応答特性を示す図 である。 発明を実施するための最良の形態
上述のように、 本発明は、 電極系と試薬とを含み、 終端部側に空気孔 を有する試料液供給路と、 試料液供給部との間に設けられた、 血球をろ 過するフィル夕を具備し、 前記フィルタで血球をろ過された血漿が毛細 管現象によって前記試料液供給路内に吸引されるようにしたバイォセン サにおいて、 前記フィルタの一次側部分を下から保持する第一押さえ部. 前記フィル夕の二次側部分を上下から保持する第二押さえ部、 前記フィ ル夕の中央部分を上から保持する第三押さえ部、 および前記第二押さえ 部と第三押さえ部との間において前記フィルタを囲む空隙部を具備する ことを特徴とする。 この構成により、 フィルタを上下から保持する押さ え部の間隔が、 膨張したフィルタの厚みに適合しなくても、 フィルタの 膨張が妨げられることにより起こる血球破壊を防止することができる。 また、 試料液を直接フィル夕に滴下することにより、 血球がフィルタの 表面を流れて試料液供給路内に流入して生じる測定誤差を抑制すること ができる。
本明細書において、 フィルタの 「一次側部分」 とは、 試料が供給され る試料供給部に近い方の部分のことを指し、 フィルタの 「二次側部分」 とは、 電極系が設けられる試料供給路に近い方の部分のことを指す。 ま た、 フィル夕の基板側を 「下」 、 フィル夕の基板と反対側を 「上」 とす る。
すなわち、 前記フィルタの一次側部分では、 第一押さえ部が下側にの み接しているため、 前記フィルタは、 試料液を吸引した際に上側に膨張 することができる。 また、 前記フィルタの中央部分においては、 第三押 さえ部が上側にのみ接しているため、 前記フィルタは、 試料液を吸引し た際に下側に膨張することができる。 さらに、 前記第二押さえ部と第三 押さえ部との間において前記フィルタを囲むように存在する空隙部にお いても、 試料液を吸引したフィルタが膨張することができる。 かつ、 フ ィルタを囲む空隙部がないと、 フィルタを通過せずにフィルタ押さえ部 を伝わった血球が電極系へ流入する可能性がある。 このように、 フィル 夕を保持する部材が、 膨張によるフィル夕の寸法変化を妨げる部分を極 力減らすことにより、 フィルタの孔径を自由に変化させ、 かっ血球破壊 のないろ過が可能になる。 また、 本発明のバイォセンサにおける前記フィル夕の 1次部側部分で は、 第一押さえ部が下側にのみ接しているため、 上部に開口部を設けて 一次側部分をパイォセンサの外部へ露出させることができ、 これにより . 試料液を直接フィルタに滴下させることができる。
さらに、 前記フィルタの中央部分の上側に存在する第三押さえ部は、 前記開口部から滴下された試料液がフィル夕の上側の表面を流れること を防止する堰のような役割を果たす。 これにより、 試料液がろ過工程を 経ずに試料液供給路へ侵入することを防止することができる。
本発明に用いる電子メディェ一タとしては、 フェリシアン化カリウム の他、 コレステロールォキシダ一ゼなどの酸化還元酵素との電子伝達能 を有するレドックス化合物から選択することができる。
酸化還元酵素は、 測定対象物を基質とする酵素であり、 グルコースを 測定対象とするセンサでは、 グルコースォキシダーゼを用いる。 診断指 針に用いられる血清中のコレステロール値を測定するには、 コレステロ ールの酸化反応を触媒する酵素であるコレステロールォキシダーゼまた はコレステロールデヒドロゲナーゼとコレステロールエステルをコレス テロールに変化させる過程を触媒する酵素であるコレステロールエステ ラーゼを用いる。 コレステロールエステラーゼの酵素反応の進行は非常 に遅いので、 適切な界面活性剤を添加することにより、 コレステロール エステラーゼの活性を向上させ、 全体の反応に要する時間を短縮するこ とができる。
これらは、 センサ内の電極系上またはその近傍の位置に反応層として 配置する。 または、 電極を構成する導電性材料と試薬とを混合して、 電 極系を形成してもよい。 電極系を設けた基板に組み合わされて基板との 間に電極系に試料液を供給する試料液供給路を形成するカバ一部材を有 するセンサでは、 前記試料液供給路に露出する部分や試料液供給路の開 口部などに設けることができる。 いずれの位置であっても、 導入された 試料液によって試薬が容易に溶解して電極系に到達できることが好まし い。 電極を保護し、 形成される試薬の剥離を抑制するために、 電極系上 に接して親水性高分子層が形成されることが好ましい。 また、 電極系以 外でも、 試薬を形成する際の下地として親水性高分子層が形成されるか, または最下層の試薬に親水性高分子が含まれることが好ましい。
電子メデイエ一夕を含む層は、 溶解性を高めるために、 界面活性剤と 分離することが好ましい。 また、 保存安定性のために、 コレステロール の酸化反応を触媒する酵素コレステロールォキシダーゼおよびコレステ ロールエステラーゼと分離することが好ましい。
血糖値を測定するバイオセンサでは、 試料液が容易に試薬へ導入され るように、 電極系上に形成された層などを被覆すべく、 脂質を含む層を 形成する例がある (例えば特開平 2— 0 6 2 9 5 2号公報) 。 本発明の コレステロールを測定するバイオセンサにおいては、 試薬の一部を凍結 乾燥法により形成すること (例えば特願 2 0 0 0— 0 1 8 8 3 4号明細 書) 、 またはカバ一部材の表面に、 界面活性剤またはプラズマ照射など により処理して、 親水性を付与することが好ましい。 このような構成を とると、 脂質層は設けなくてもよい。
親水性高分子としては、 例えば、 水溶性セルロース誘導体、 特にェチ ルセルロース、 ヒドロキシプロピルセルロース、 カルボキシメチルセル ロースの他、 ポリビエルピロリ ドン、 ポリビエルアルコール、 ゼラチン, ァガロース、 ポリアクリル酸およびその塩、 デンプンおよびその誘導体, 無水マレイン酸の重合体およびその塩、 ポリアクリルアミ ド、 メタクリ レート樹脂、 ポリ一 2—ヒドロキシェチルメタクリレートなどを用いる ことができる。
界面活性剤としては、 例えば、 n—才クチルー /3—D—チォダルコシ ド、 ポリエチレングリコールモノ ドデシルエーテル、 コール酸ナトリウ ム、 ドデシルー jS—マルトシド、 ジユークロースモノラウレート、 デォ キシコ一ル酸ナトリウム、 タウロデオキシコール酸ナトリウム、 N , N 一ビス ( 3— D—ダルコンアミ ドプロピル) デォキシコ一ルアミ ドおよ びポリオキシエチレン ( 1 0 ) ォクチルフエ二ルエーテルなどがあげら れる。
脂質としては、 使用する場合、 レシチン、 ホスファチジルコリン、 ホ スファチジルエタノールアミン等のリン脂質で、 両親媒性脂質が好適に 用いられる。
酸化電流の測定方法としては、 測定極と対極のみの二電極方式と、 参 照極を加えた三電極方式があり、 三電極方式の方がより正確な測定が可 能である。
以下'、 具体的な実施の形態により本発明を詳細に説明する。
図 1は、 好ましい実施の形態に係るバイオセンサの分解斜視図である < 絶縁性の基板 1は、 例えばポリエチレンテレフ夕レートなどの絶縁性 樹脂からなる。 図 1における基板 1上の左側部分には、 スパッタまたは 蒸着にて、 パラジウム薄膜を形成し、 かつレーザ一トリミングすること により、 作用極 2と対極 3を含む電極系が形成されている。 電極の面積 は、 後述するスぺーサ 6の上に形成されるスリッ ト 9の幅に対応して決 定される。 また、 基板 1には孔 4が形成されている。
前記基板 1に組み合わせるスぺーサ 6には、 フィルタ 5を収納する補 助スリッ ト 7、 試料液供給路 9 ' を構成するスリット 9、 および補助ス リッ ト 7からスリッ ト 9に通じる開口部 8が形成されている。
また、 カバー 1 0には、 孔 1 1および空気孔 1 2が形成されており、 補助板 1 3には、 フィル夕 5に試料液を供給するための孔 1 4が形成さ れ、 さらに、 孔 1 5、 および第 3の押さえ部となる仕切り部 1 8が形成 されている。
補助上カバー 1 6には、 試料液をフィルタ 5に滴下するための試料液 供給部を構成する孔 1 7が形成されており、 補助下カバー 2 0は、 平板 で構成されている。
図 1に示される各部材を一体化した際には、 図 1における補助スリッ ト 7の右俯部分、 カバ一 1 0に形成されている孔 1 1の右側部分、 補助 板 1 3に形成されている孔 1 4、 および補助上カバー 1 6に形成されて いる孔 1 7は連通する。
フィルタ (血球ろ過部) 5は、 ガラス繊維ろ紙からなり、 基板 1 と同 じ平面への投影図において、 図 1に示すように、 底辺が 3 m m、 高さが 5 m mの二等辺三角形の形状を有する。 そして、 二次側部分の先端には 半径 0 . 4 m mの半円部 (図示せず。 ) が形成されている。 フィルタ 5の 厚みは約 3 0 0〜 4 0 0 mである。
このセンサを組み立てるには、 まず、 図 1に示す一点鎖線で示すよう な位置関係で、 補助下カバー 2 0上に基板 1をのせ、 補助下カバ一 2 0 および基板 1の右端が一致するようにして、 合体基板 Aを得る。
つぎに、 カバ一 1 0およびスぺーサ 6を、 図 1に示す一点鎖線で示す ような位置関係で、 それぞれの右側、 すなわち基板 1と同じ平面への投 影図において、 孔 1 1および補助スリッ ト 7に形成された二等辺三角形 状の底辺側に相当する部分が一致するように組み合わせ、 合体基板 Bを 得る。 このとき、 カバー 1 0のスリッ ト 9に面する部分、 すなわち試料 供給路 9 ' の上側部分に、 後述するように反応層を形成する。
さらに、 基板 1および補助下カバ一 2 0からなる合体基板 Aとカバ一 1 0およびスぺ一サ 6からなる合体基板 Bを、 図 1に示す一点鎖線で示 すような位置関係で組み合わせ、 基板 1と同じ平面への投影図において、 二等辺三角形状を有するフィルタ 5の一次側部分の右端 (底辺側) が、 前記孔 1 1および補助スリッ ト 7の右端部分と一致するように、 フィル 夕 5を設置する。 換言すると、 フィルタ 5は、 基板 1上に配置され、 か っスぺーサ 6の補助スリッ ト 7およびカバー 1 0の孔 1 1にはめ込まれ た状態になる。
また、 フィルタ 5の二次側部分の先端は、 スリット 9によって形成さ れる試料供給路 9 ' に入り込み、 基板 1とカバー 1 0とに挟まれ、 この 部分が第二押さえ部を構成する。 なお、 詳細は後述する。
最後に、 カバー 1 0の上に、 図 1に示す破線で示すような位置関係で. 孔 1 4および孔 1 7の右端が、 力パー 1 0の孔 1 1およびスぺーサ 6の 補助スリット 7の右端と一致するように、 補助板 1 3および補助上カバ — 1 6を力パー 1 0の上に配置する。
以上のようにして得られる本発明のバイォセンサの概略斜視図を図 2 に示す。 また、 その断面構造を図 3に示す。 図 3は、 本発明のバイオセ ンサの概略縦断面図であり、 図 2に示す X— X線断面図に相当する。 図 2に示す本発明のバイオセンサにおいては、 図 3に示すように、 フィル 夕 5と他の部材とが非接触となる孔 1 5および 4が形成される。
すなわち、 図 3に示すように、 フィル夕 5の一次側部分を下から保持 する第一押さえ部 a、 フィルタ 5の二次側部分を上下から保持する第二 押さえ部 bおよび b ' 、 フィルタ 5の中央部分を上から保持する第三押 さえ部 c、 ならびに第二押さえ部 bおよび b ' と第三押さえ部 c との間 においてフィルタ 5を囲む孔 (空隙部) 1 5が形成される。 そして、 さ らにフィル夕 5の下側であって第三押さえ部 cの下側に相当する部分に は、 空洞が存在し、 これが孔 1 5とつながった孔 (空隙部) 4を形成し ている。
ここで、 図 4は、 本発明のバイオセンサのさらに別の態様を示す概略 縦断面図である。 図 2では反応層および電極系を省いたが、 図 4は反応 層および電極系を示している。 基板 1の電極系 (2および 3 ) 上に、 親 水性高分子の層 2 1 と反応層 2 2 aが形成されている。 また、 試料液供 給路の天井に相当するカバー 1 0の下面側に反応層 2 2 bが形成されて いる。 なお、 図 4に示すその他の部材は、 図 3に示すものと同じである, 図 1〜 4に示す本発明のバイオセンサは、 その構造をわかりやすく説 明するために、 6種類の部材から作製されているが、 補助上カバ一 1 6 と補助板 1 3とが一つの部材で構成されていてもよく、 また、 これらと カバー 1 0が一つの部材で構成されていてもよい。 さらに、 補助下カバ 一 2 0と基板 1がーつの部材から構成されていてもよい。
このセンサを用いて血液中のコレステロールを測定するには、 補助上 カバー 1 6の孔 1 7で構成される試料液供給部から、 フィルタ 5を保持 する部分 (試料供給部) へ試料液である血液を供給する。 ここに供給さ れた血液は、 フィル夕 5の一次側部分の上表面からその内部へ浸透する < フィルタ 5内では、 血球の浸透速度は液体成分である血漿の浸透速度よ り遅いので、 血漿がフィルタ 5の二次側部分の端部からしみ出す。 そし てしみ出した血漿は、 電極系を覆う位置および/またはカバー 1 0の裏 面に担持された反応層を溶解しながら、 電極系近傍、 さらに空気孔 1 2 の部分まで延びるスリット 9で構成される試料液供給路 9 ' 全体を満た す。 試料液供給路 9 ' 全体が液体で満たされると、 フィルタ 5内の液体 の流動も停止し、 その時点で、 血球はフィル夕 5の二次側部分の端部に 到達せず、 フィル夕 5内に残る。 したがって、 フィル夕 5は、 試料液供 給路 9 ' 全体を満たすだけの量の血漿が通過してもなお血球がフィル夕 5の二次側部分に達しない程度に、 血漿と血球との流通抵抗に差を有す るように設計する必要がある。 本発明のフィル夕としては、 孔径 1〜 7 m程度のディブスフィルタが好適である。 また、 本発明の実施例の場 合、 フィル夕の厚みは 3 0 0〜4 0 0 mであるのがよい。 このような血球ろ過の過程を経て、 血漿により溶解された反応層と血 漿中の測定成分 (コレステロールセンサであればコレステロール) との 化学反応が生じ、 一定時間経過後、 電極反応により電流値を測定し、 血 漿中の成分を定量することができる。
図 4は、 試料液供給路 9 ' の電極系近傍における反応層の配置の例を 示す。 基板 1の電極系上には、 カルボキシメチルセルロースのナトリウ ム塩 (以下、 単に 「C M C」 と表す) などの親水性高分子の層 2 1、 お よび例えば電子メディエー夕などの反応試薬を含む反応層 2 2 aが形成 されている。 また、 カバー 1 0とスぺ一サ 6を組み合わせたカバー部材 の裏面には、 試料液供給路 9 ' に露出する面に、 酸化還元酵素を含む反 応層 2 2 bが形成されている。
¾ 1〜 4に示すように、 スリッ ト 9が構成する試料液供給路 9 ' の、 液体が流通する方向に垂直な方向における断面積は、 フィルタ 5の一次 側部分の断面積に比べて小さくしてあるが、 フィルタ 5の二次側部分か ら l mmの部分は、 試料液供給路 9 ' の開口部 8付近に圧縮して設置さ れている。 ここで、 フィルタ 5の圧縮される部分は、 本発明の実施例に おけるセンササイズの吸引力の場合は、 二次側部分の端部から約 1 mm 程度までであるのが好ましかった。 また、 フィル夕 5の二次側部分を圧 縮する程度については、 二次側部分が一次側部分の約 1 / 4〜 1 Z 3に なるように圧縮すればよかった。 この圧縮条件において、 センサの吸引 力を数値で表すことは困難であるが、 スぺーサ厚が 1 0 0 mの場合、 フィルタ厚 3 7 0 mの測定結果 (流入速度) が良好であった。 なお、 フィルタ厚 3 1 0 m以下の場合は、 流入速度が遅かった。
このように、 試料液供給路 9 ' の断面積をフィルタ 5の一次側部分の 断面積よりも小さくすることにより、 フィル夕 5で血球をろ過された血 漿が毛細管現象によって、 試料液供給路 9 ' 内に迅速に吸引させること ができる。
反応層には、 一般に溶解しやすい部分と溶解し難い部分がある。 溶解 しゃすい部分は、 試料液供給路 9 ' の縁、 すなわちスぺーサ 6のスリツ ト 9の壁面に沿う部分や、 液体の流れ方向における中央部分は溶解しに くい。 フィル夕 5を通過した試料液は、 スぺーサ 6に沿って優先的に流 れるため、 中央部分が完全に溶け終わっていないにもかかわらず、 試料 液が空気孔を塞いでしまうことがある。 フィルタ 5の二次側部分の中央 部分が、 左右両端部より試料液供給路 9 ' 内へ突出していることにより、 試料液供給路 9 ' 内の中央部分を優先的に流れ、 これによつて気泡を試 料液供給路 9 ' の中央部分に残すことなく、 速やかにセンサ内に血漿を 流入させることができる。
測定の際、 試料液である血液を補助上カバー 1 6の孔 1 7で構成され る試料液供給部からフィルタ 5へ供給すると、 血液はフィルタ 5の一次 側部分の上表面からその内へ浸透する。 このとき、 仕切りとなる第三押 さえ部 cがあるため、 試料液をフィルタ 5の表面に滴下しても、 試料液 がフィルタ 5の表面を優先的に流れて試料液供給路 9内に直接流れ込む ことはない。 また、 基板 1 と同じ平面における投影図において、 第三押 さえ部 cと第一押さえ部 aの位置は一致していないため、 フィルタ 5の 膨張を妨げることがなく、 血球が破壊される恐れもない。
前記電極系は、 貴金属電極であることが好ましい。 前記試料液供給路 の幅が、 好ましくは 1 . 5 mm以下であるため、 スクリーンを用いた印刷 電極では電極面積を決定する精度が劣るからである。 これに対し、 貴金 属電極は、 0 . 1 mm幅でレーザートリミングすることが可能であり、 電極面積を決定する精度が高い。
以下に、 本発明の実施例を説明するが、 本発明はこれらのみに限定さ れるものではない。 実施例
反応層 22 aには電子メディェ一夕が含まれ、 反応層 22 bにはコレ ステロ一ルォキシダーゼ、 コレステロールエステラーゼおよび界面活性 剤が含まれる、 図 1〜 4の構成を有するコレステロールセンサを作製し た。
まず、 基板 1の電極系上に、 CMCの 0. 5 1: %水溶液を 5 1滴 下し、 5 0°Cの温風乾燥機中で 1 0分間乾燥させることにより CMC層 2 1を形成した。
つぎに、 フェリシアン化カリウム水溶液 4 1 (フェリシアン化カリ ゥム 7 0 mM相当) を CMC層 2 1上に滴下し、 50°Cの温風乾燥機中 で 1 0分間乾燥させることにより、 フェリシアン化カリウムを含む反応 層 1 8 aを形成した。
ノカルジァ由来のコレステロールォキシダ一ゼ (EC1.1.3.6) およびシ ユードモナス由来のコレステロールエステラーゼ (EC3.1.1.13) を溶解 した水溶液に、 界面活性剤であるポリオキシエチレン ( 1 0 ) ォクチル フエニルエーテル (TritonX- 100) を添加した。 この混合液 0. 6 4 1 を、 カバー 1 0とスぺーサ 6を一体化して形成されるスリッ ト 9の部分 (試料供給路 9 ' ) に滴下し、 — 1 9 6 °Cの液体窒素にて予備凍結した 後、 凍結乾燥機で 2時間乾燥させることにより、 5 7 0 U/m 1 コレス テロールォキシダーゼ、 1 4 2 5 U/m 1 コレステロールエステラーゼ および 2 w t %界面活性剤を含む反応層 22 bを形成した。
スリット 9の幅は 0. 8 mm、 スリッ ト 9の長さ (試料液供給路 9 ' の 開口部から空気孔までの長さ) は 4. 5mmとした。 また、 スぺーサ 6の 厚さ (基板 1とカバ一 1 0の間の距離) は 100 mとした。
フィルタ 5としては、 厚さ約 370 mのガラス繊維ろ紙からなり、 底辺 3 mm、 高さ 5 mmの二等辺三角形状のものを用いた。 二次側部分 の先端 (試料液供給路 9 ' の開口部 8と接触する部分) の角は丸く加工 し、 基板 1および補助下カバー 2 0からなる合体基板 Aとカバ一 1 0お よびスぺーサ 6からなる合体基板 Bの間に設置した。
この後、 合体基板 Aと合体基板 Bの間にフィルタ 5を設置してなる部 材と、 補助板 1 3と補助上カバー 1 6を一体化してなる部材とを接着す ることにより、 図 1、 2および 4で示される構造のコレステロールセン サを作製した。
このセンサの試料液供給部に、 試料液として全血 1 0 1 を導入し、 3分後に対極を基準にして測定極にァノ一ド方向へ + 0 . 2 Vのパルス電 圧を印加し、 5秒後に作用極と対極との間に流れる電流値を測定した。 その結果を図 5に示した。 図 5は、 総コレステロール濃度と応答電流の 関係を示すグラフである。
図 5から明らかなように、 本発明のセンサによれば、 コレステロール 濃度と応答電流の値との間に良好な直線性が得られた。 図 5において、 Xは赤血球容積比 0 %の血漿、 〇は赤血球容積比 3 5 %の全血、 口は赤 血球容積比 6 0 %の全血の結果である。 産業上の利用の可能性
本発明によれば、 妨害物質である血球をフィル夕により溶血すること なく除去し、 フィル夕の厚みが薄くても血球除去後の血漿を迅速に電極 系へ供給することができる。 したがって、 応答特性に優れた化学的バイ ォセンサを提供することができる。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 絶縁性の基板、 前記基板上に設けられた作用極と対極を有する電 極系、 少なくとも酸化還元酵素と電子メデイエ一夕を含む試薬、 前記電 極系と前記試薬とを含み、 終端部側に空気孔を有する試料液供給路、 試 料液供給部、 および前記試料液供給路と試料液供給部との間に設けられ た、 血球をろ過するフィルタを具備し、 前記フィル夕で血球をろ過され た血漿が毛細管現象によって前記試料液供給路内に吸引されるようにし たバイォセンサであって、
前記フィル夕の一次側部分を下から保持する第一押さえ部、 前記フィ ル夕の二次側部分を上下から保持する第二押さえ部、 前記フィルタの中 央部分を上から保持する第三押さえ部、 および前記第二押さえ部と第三 押さえ部との間において前記フィルタを囲む空隙部を有することを特徴 とするバイォセンサ。
2 . 前記フィル夕の一次側部分が、 バイオセンサの上面に露出してい ることを特徴とする請求の範囲第 1項記載のバイオセンサ。
3 . 前記フィルタの二次側部分と前記作用極とが非接触であることを 特徴とする請求の範囲第 1項または第 2項記載のパイォセンサ。
PCT/JP2002/004826 2001-05-22 2002-05-17 Biocapteur WO2002095385A1 (fr)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US10/924,334 USRE39390E1 (en) 2001-05-22 2002-05-17 Biosensor
EP02771728A EP1318396B1 (en) 2001-05-22 2002-05-17 Biosensor
US10/363,589 US6706232B2 (en) 2001-05-22 2002-05-17 Biosensor

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001152868A JP4213361B2 (ja) 2001-05-22 2001-05-22 バイオセンサ
JP2001-152868 2001-05-22

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2002095385A1 true WO2002095385A1 (fr) 2002-11-28

Family

ID=18997478

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2002/004826 WO2002095385A1 (fr) 2001-05-22 2002-05-17 Biocapteur

Country Status (5)

Country Link
US (2) US6706232B2 (ja)
EP (1) EP1318396B1 (ja)
JP (1) JP4213361B2 (ja)
CN (1) CN1207563C (ja)
WO (1) WO2002095385A1 (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1482307A1 (en) * 2002-03-01 2004-12-01 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biosensor
US7550290B2 (en) 2003-05-15 2009-06-23 Panasonic Corporation Sensor

Families Citing this family (87)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6036924A (en) 1997-12-04 2000-03-14 Hewlett-Packard Company Cassette of lancet cartridges for sampling blood
US6391005B1 (en) 1998-03-30 2002-05-21 Agilent Technologies, Inc. Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth
US20050103624A1 (en) 1999-10-04 2005-05-19 Bhullar Raghbir S. Biosensor and method of making
US8641644B2 (en) 2000-11-21 2014-02-04 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means
JP4183902B2 (ja) * 2000-12-27 2008-11-19 松下電器産業株式会社 バイオセンサ
DE60238119D1 (de) 2001-06-12 2010-12-09 Pelikan Technologies Inc Elektrisches betätigungselement für eine lanzette
US7699791B2 (en) 2001-06-12 2010-04-20 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for improving success rate of blood yield from a fingerstick
US7316700B2 (en) 2001-06-12 2008-01-08 Pelikan Technologies, Inc. Self optimizing lancing device with adaptation means to temporal variations in cutaneous properties
US9226699B2 (en) 2002-04-19 2016-01-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface
US7025774B2 (en) 2001-06-12 2006-04-11 Pelikan Technologies, Inc. Tissue penetration device
US7749174B2 (en) 2001-06-12 2010-07-06 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for lancet launching device intergrated onto a blood-sampling cartridge
EP1404232B1 (en) 2001-06-12 2009-12-02 Pelikan Technologies Inc. Blood sampling apparatus and method
US7981056B2 (en) 2002-04-19 2011-07-19 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
US9427532B2 (en) 2001-06-12 2016-08-30 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US9795747B2 (en) 2010-06-02 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Methods and apparatus for lancet actuation
US8337419B2 (en) 2002-04-19 2012-12-25 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
EP1452857A4 (en) 2001-11-14 2006-05-24 Matsushita Electric Ind Co Ltd BIOSENSOR
JPWO2003042679A1 (ja) 2001-11-14 2005-03-10 松下電器産業株式会社 バイオセンサ
US7674232B2 (en) 2002-04-19 2010-03-09 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7909778B2 (en) * 2002-04-19 2011-03-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7547287B2 (en) 2002-04-19 2009-06-16 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7648468B2 (en) 2002-04-19 2010-01-19 Pelikon Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7976476B2 (en) 2002-04-19 2011-07-12 Pelikan Technologies, Inc. Device and method for variable speed lancet
US8579831B2 (en) 2002-04-19 2013-11-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US8372016B2 (en) 2002-04-19 2013-02-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US7713214B2 (en) 2002-04-19 2010-05-11 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with optical analyte sensing
US8784335B2 (en) 2002-04-19 2014-07-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling device with a capacitive sensor
US7229458B2 (en) 2002-04-19 2007-06-12 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7291117B2 (en) 2002-04-19 2007-11-06 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US9314194B2 (en) 2002-04-19 2016-04-19 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US7491178B2 (en) 2002-04-19 2009-02-17 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8267870B2 (en) 2002-04-19 2012-09-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation
US7371247B2 (en) 2002-04-19 2008-05-13 Pelikan Technologies, Inc Method and apparatus for penetrating tissue
US8360992B2 (en) 2002-04-19 2013-01-29 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US8702624B2 (en) 2006-09-29 2014-04-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Analyte measurement device with a single shot actuator
US7901362B2 (en) 2002-04-19 2011-03-08 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US9795334B2 (en) 2002-04-19 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7892183B2 (en) 2002-04-19 2011-02-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US8221334B2 (en) 2002-04-19 2012-07-17 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7175642B2 (en) 2002-04-19 2007-02-13 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
US7297122B2 (en) 2002-04-19 2007-11-20 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7717863B2 (en) 2002-04-19 2010-05-18 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US9248267B2 (en) 2002-04-19 2016-02-02 Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh Tissue penetration device
US7232451B2 (en) 2002-04-19 2007-06-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7331931B2 (en) 2002-04-19 2008-02-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7265881B2 (en) * 2002-12-20 2007-09-04 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Method and apparatus for measuring assembly and alignment errors in sensor assemblies
US8574895B2 (en) 2002-12-30 2013-11-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels
US8262614B2 (en) 2003-05-30 2012-09-11 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for fluid injection
US7850621B2 (en) 2003-06-06 2010-12-14 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
WO2006001797A1 (en) 2004-06-14 2006-01-05 Pelikan Technologies, Inc. Low pain penetrating
US7645373B2 (en) 2003-06-20 2010-01-12 Roche Diagnostic Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
US8058077B2 (en) 2003-06-20 2011-11-15 Roche Diagnostics Operations, Inc. Method for coding information on a biosensor test strip
US8148164B2 (en) 2003-06-20 2012-04-03 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for determining the concentration of an analyte in a sample fluid
US8071030B2 (en) 2003-06-20 2011-12-06 Roche Diagnostics Operations, Inc. Test strip with flared sample receiving chamber
US8206565B2 (en) 2003-06-20 2012-06-26 Roche Diagnostics Operation, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
US7718439B2 (en) 2003-06-20 2010-05-18 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
KR100785670B1 (ko) 2003-06-20 2007-12-14 에프. 호프만-라 로슈 아게 폭이 좁은 균질한 시약 시트립을 제조하는 방법 및 시약
US7452457B2 (en) 2003-06-20 2008-11-18 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for analyte measurement using dose sufficiency electrodes
US7645421B2 (en) 2003-06-20 2010-01-12 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
WO2005033659A2 (en) 2003-09-29 2005-04-14 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for an improved sample capture device
EP1680014A4 (en) 2003-10-14 2009-01-21 Pelikan Technologies Inc METHOD AND APPARATUS PROVIDING A VARIABLE USER INTERFACE
US20050153309A1 (en) 2003-12-22 2005-07-14 David Hoon Method and apparatus for in vivo surveillance of circulating biological components
US7553625B2 (en) * 2003-12-22 2009-06-30 John Wayne Cancer Institute Method and apparatus for in vivo collection of circulating biological components
US8668656B2 (en) 2003-12-31 2014-03-11 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture
US7822454B1 (en) 2005-01-03 2010-10-26 Pelikan Technologies, Inc. Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration
JP2005202893A (ja) * 2004-01-19 2005-07-28 Hitachi Ltd 記憶デバイス制御装置、ストレージシステム、プログラムを記録した記録媒体、情報処理装置、及びストレージシステムの制御方法
WO2006011062A2 (en) 2004-05-20 2006-02-02 Albatros Technologies Gmbh & Co. Kg Printable hydrogel for biosensors
US9775553B2 (en) * 2004-06-03 2017-10-03 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for a fluid sampling device
EP1765194A4 (en) 2004-06-03 2010-09-29 Pelikan Technologies Inc METHOD AND APPARATUS FOR MANUFACTURING A DEVICE FOR SAMPLING LIQUIDS
US7569126B2 (en) 2004-06-18 2009-08-04 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for quality assurance of a biosensor test strip
GB0414550D0 (en) * 2004-06-29 2004-08-04 Oxford Biosensors Ltd Electrochemical sensing method
US8652831B2 (en) 2004-12-30 2014-02-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for analyte measurement test time
US7725148B2 (en) 2005-09-23 2010-05-25 Medtronic Minimed, Inc. Sensor with layered electrodes
KR100735898B1 (ko) * 2006-08-25 2007-07-04 한국기계연구원 휴대용 미세 혈액 분리기
JP5456483B2 (ja) * 2006-12-21 2014-03-26 コーニンクレッカ フィリップス エヌ ヴェ 溝を有した開口バイオセンサ
EP2176651B1 (en) * 2007-07-26 2015-09-09 Agamatrix, Inc. Electrochemical test strips
EP2265324B1 (en) 2008-04-11 2015-01-28 Sanofi-Aventis Deutschland GmbH Integrated analyte measurement system
US9375169B2 (en) 2009-01-30 2016-06-28 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system
US8965476B2 (en) 2010-04-16 2015-02-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
WO2012171560A1 (en) * 2011-06-15 2012-12-20 Pfaff Tim Plasma or serum separator
JP2013257310A (ja) * 2012-05-18 2013-12-26 Arkray Inc バイオセンサ
TW201437636A (zh) * 2013-03-22 2014-10-01 Ichia Tech Inc 生物液體的測試片製作方法及其結構
US20140318278A1 (en) * 2013-04-24 2014-10-30 Honeywell International Inc. Particle imaging utilizing a filter
CN104569088B (zh) * 2014-12-25 2017-06-13 北京怡成生物电子技术股份有限公司 电化学法血液检测试纸条及其制造方法
SG10202012275PA (en) 2016-06-09 2021-01-28 Haimachek Inc Collector for detection and reversible capturing of cells from body fluids in vivo
CN112055813B (zh) * 2018-04-25 2023-03-10 Bbb有限公司 血液分析装置
JP7243994B2 (ja) * 2018-04-25 2023-03-22 ビービービー インコーポレイテッド 血液分析装置

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6358149A (ja) * 1986-08-28 1988-03-12 Matsushita Electric Ind Co Ltd バイオセンサ
US5609749A (en) * 1993-12-29 1997-03-11 Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. Electrochemical assay method with novel p-phenylenediamine compound
WO2002010734A1 (fr) * 2000-07-31 2002-02-07 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biocapteur
WO2002054054A1 (fr) * 2000-12-27 2002-07-11 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biocapteur

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2502666B2 (ja) 1988-01-29 1996-05-29 松下電器産業株式会社 バイオセンサ及びその製造方法
DE69720391T2 (de) 1996-12-20 2004-02-12 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd., Kadoma Cholesterinsensor und Verfahren zu seiner Herstellung
JP3487410B2 (ja) * 1998-05-29 2004-01-19 松下電器産業株式会社 バイオセンサ

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6358149A (ja) * 1986-08-28 1988-03-12 Matsushita Electric Ind Co Ltd バイオセンサ
US5609749A (en) * 1993-12-29 1997-03-11 Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. Electrochemical assay method with novel p-phenylenediamine compound
WO2002010734A1 (fr) * 2000-07-31 2002-02-07 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biocapteur
WO2002054054A1 (fr) * 2000-12-27 2002-07-11 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biocapteur

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP1318396A4 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1482307A1 (en) * 2002-03-01 2004-12-01 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biosensor
EP1482307A4 (en) * 2002-03-01 2006-05-03 Matsushita Electric Ind Co Ltd BIOSENSOR
US7550290B2 (en) 2003-05-15 2009-06-23 Panasonic Corporation Sensor

Also Published As

Publication number Publication date
CN1463360A (zh) 2003-12-24
US20030183519A1 (en) 2003-10-02
EP1318396A4 (en) 2006-05-24
USRE39390E1 (en) 2006-11-14
JP2002340839A (ja) 2002-11-27
US6706232B2 (en) 2004-03-16
JP4213361B2 (ja) 2009-01-21
CN1207563C (zh) 2005-06-22
EP1318396B1 (en) 2012-08-29
EP1318396A1 (en) 2003-06-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2002095385A1 (fr) Biocapteur
US7056425B2 (en) Biosensor
US6977032B2 (en) Biosensor
JP4184074B2 (ja) バイオセンサ
JP4183902B2 (ja) バイオセンサ
JP4184073B2 (ja) バイオセンサ
CA2481425C (en) Disposable sensor with enhanced sample port inlet
CA2481426C (en) Disposable sub-microliter volume biosensor with enhanced sample inlet
EP1482307B1 (en) Biosensor
WO2003048756A1 (fr) Biocapteur
JP3856438B2 (ja) バイオセンサ
JP3856436B2 (ja) バイオセンサ
JP3856437B2 (ja) バイオセンサ
JP2004325384A (ja) バイオセンサ
JP4100196B2 (ja) バイオセンサ
Hasegawa et al. Biosensor

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): CN US

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 028018044

Country of ref document: CN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10363589

Country of ref document: US

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2002771728

Country of ref document: EP

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2002771728

Country of ref document: EP